Summary

Mänskliga Pancreatic Islet Isolering: Del I: Matsmältning och Insamling av pankreas vävnad

Published: May 26, 2009
doi:

Summary

Uppnå hög kvalitet och lämplig mängd mänskliga skär är en av de framstående förutsättningarna för en framgångsrik ö-transplantation. I denna video beskriver vi steg för steg förfarandena för mänskliga bukspottkörteln holme isolering (del I: matsmältningen och samling av bukspottskörteln vävnad) med hjälp av en modifierad automatiserad metod.

Abstract

Hantering av typ 1 diabetes är betungande, både för individen och samhället, kostar över 100 miljarder dollar årligen. Trots den utbredda användningen av glukos övervakning och nya formuleringar insulin, många individer utvecklar fortfarande förödande sekundära komplikationer. Pankreas ö-transplantation kan återställa nära normal blodsockerkontroll hos diabetespatienter<sup> 1</sup>, Utan risk för allvarliga hypoglykemiska episoder som är förknippade med intensiv insulinbehandling. Ger tillräcklig holme massan är viktig för en framgångsrik ö-transplantation. Men donator karakteristiska, tillvaratagandet av organ och konservering påverkar isoleringen resultatet<sup> 2</sup>. Vid University of Illinois i Chicago (UIC) har vi utvecklat ett framgångsrikt isolering protokoll med en förbättrad rening gradient<sup> 3</sup>. Programmet startade i januari 2004, och mer än 300 isoleringar utfördes fram till november 2008. Den pancreata sändes i kallt konserveringslösningar (UW, University of Wisconsin-eller HTK, histidin-Tryptofan ketoglutarat)<sup> 4-7</sup> Till cellen Isolering Laboratory vid UIC för holme isolering. Pankreasöarna var isolerade med UIC-metoden, som är en modifierad version av den metod som ursprungligen beskrevs av Ricordi<em> Et al</em><sup> 8</sup>. Kortfattat, efter rengöring bukspottkörteln från den omgivande vävnaden, det var perfusion med enzymet lösning (Serva kollagenas + Neutrala Protease eller Sigma V enzym). Den utspänd bukspottkörteln överfördes därefter till Ricordi rötkammaren, kopplad till en modifierad, sluten cirkulation slangsystem och värmts upp till 37 ° C. Under matsmältningen, var kammaren skakas försiktigt. Prover tas kontinuerligt för att övervaka matsmältningen framsteg. När fria holmar upptäcktes under mikroskop var matsmältningen stoppas genom att spola kallt (4 ° C) RPMI utspädning lösning (Mediatech, Herndon, VA) i cirkulationssystem för att späda ut enzymet. Efter att samlas in och tvättas i M199 media kompletteras med humant albumin, var vävnaden provtas för pre-rening räkna och inkuberas med UW-lösning före reningen. Reningsprocessen kommer att beskrivas i Del II: Rening och kultur för mänskliga holmar.

Protocol

1. Facility installation Mänskliga holme isolering är en känslig tid förfarande som innebär lagarbete, och därmed är fyra personer som behövs för detta förfarande. Teamet leds av kirurgen, som dissekerar och cannulates bukspottkörteln. Den holme isolering börjar minut laget kommer in i UIC anläggningen holme isolering. Gruppmedlemmarna säkerställa att alla nödvändiga instrument, liksom centrifug, kontrolleras och påslagen. De ser också till att sanera alla huvor och ytor. <li…

Discussion

Det finns en mängd olika faktorer som påverkar isoleringen resultatet 9,10. Bland dem spelar nedbrytning av bukspottkörtelns vävnad en framträdande roll. Baserat på våra egna mänskliga holme isolering erfarenhet, vi sammanfatta följande kritiska punkter, som skulle kunna påverka holmen avkastning och kvalitet.

  1. Den koktiden är olika när olika typer av enzymer utnyttjas.
  2. Så snart som 40-50% av de holmar helt skild från acinar vävnad, bör matsmältningen stoppas omedelbart genom att l…

Acknowledgements

Med stöd av medel från University of Illinois i Chicago samt Islet Cell Resource Center NIH bidrag (RFA-RR 05-003), den Christopher Foundation, Efroymson Foundation och Tellabs stiftelsen.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Ice Slush Machine equipment Taylor Company K4036546 make sterile ice
Centrifuge equipment Beckman Coulter 424803  
MZ6 Inverted Microscopy TLBD4.1 equipment Leica Diagnostic Instrument Co 4103  
Cell Culture Dish with 2 mm Grid equipment Nunc Brand Products 174926 islet counting
Digital Water Bath EX7 equipment NesLab 105361058  
Thermometer equipment IBI:IR 60444  
MonoBloc Balance AB 104-S equipment Metler Toledo 1119430864 measure pancreas weight
MasterFlex II Speed Controller equipment Cole Parmer Instrument Co J00006445 adjust flow speed during degestion
Digital Sight DS L1 equipment Nikon 217267  
Perfusion Unit equipment Custom Made/Swiss n/a  
Cooler for perfusion unit equipment Fisher Scientific 3013P  
Ricordi Chamber equipment University of Miami n/a  
RPMI dilution solution reagent Mediatech Inc 99783024  
University of Wisconcin (UW) solution reagent DURAMED 1000-46-06  
Hank’s Buffered Salt Solution (HBSS) reagent Mediatech Inc 99-597-CM  
25% Human Albumin reagent GRIFOLS NDC 61953-0002-2  
M199 media (wash solution) reagent Mediatech Inc 99-784-CM  
Collagenase NB1 GMP grade reagent SERVA Electrophoresis N0002937  
Neutral Protease NB1 GMP grade reagent SERVA Electrophoresis N0002936  
Betadine reagent Cardinal Health 29906-004  
Cefazolin reagent West-Ward Pharmaceutical NDC 0143-9924-90  
Dithizone reagent Sigma D5130  

References

  1. Shapiro, A. M., et al. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. N Engl J Med. 343, 230-238 (2000).
  2. Nano, R., et al. Islet isolation for allotransplantation: variables associated with successful islet yield and graft function. Diabetologia. 48, 906-912 (2005).
  3. Barbaro, B., et al. Improved human pancreatic islet purification with the refined UIC-UB density gradient. Transplantation. 84, 1200-1203 (2007).
  4. Lakey, J. R., Rajotte, R. V., Warnock, G. L., Kneteman, N. M. Human pancreas preservation prior to islet isolation. Cold ischemic tolerance. Transplantation. 59, 689-694 (1995).
  5. Fridell, J. A., et al. Comparison of histidine-tryptophan-ketoglutarate solution and University of Wisconsin solution for organ preservation in clinical pancreas transplantation. Transplantation. 77, 1304-1306 (2004).
  6. Potdar, S., et al. Initial experience using histidine-tryptophan-ketoglutarate solution in clinical pancreas transplantation. Clin Transplant. 18, 661-665 (2004).
  7. Salehi, P., et al. Human islet isolation outcomes from pancreata preserved with Histidine-Tryptophan Ketoglutarate versus University of Wisconsin solution. Transplantation. 82, 983-985 (2006).
  8. Ricordi, C., Lacy, P. E., Scharp, D. W. Automated islet isolation from human pancreas. Diabetes. 38, 140-142 (1989).
  9. Hanley, S. C., Paraskevas, S., Rosenberg, L. Donor and isolation variables predicting human islet isolation success. Transplantation. 85, 950-955 (2008).
  10. Toso, C., et al. Factors affecting human islet of Langerhans isolation yields. Transplant Proc. 34, 826-827 (2002).
check_url/kr/1125?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Qi, M., Barbaro, B., Wang, S., Wang, Y., Hansen, M., Oberholzer, J. Human Pancreatic Islet Isolation: Part I: Digestion and Collection of Pancreatic Tissue. J. Vis. Exp. (27), e1125, doi:10.3791/1125 (2009).

View Video