1. Schematisk översikt: Denna video visar de olika stegen i utförandet av LIPS-analysen. Antigener uttrycks i Cos1 celler som rekombinant Renilla luciferas (RUC)-antigen fusioner och råa extrakt framställs och används utan rening. LIPS analys initieras genom inkubering crud e Ruc-antigen extrakt med patient sera i mikrotiter brunnar. Den antikropp-antigen blandningen överförs sedan till en 96-väl filterplattan innehåller protein A / G pärlor att fånga IgG-molekyler. Efter tvättning filterplattan innehåller protein A / G pärlor, antikropp bunden Ruc-antigen genom tillsats av coelenterazine substrat och enheter ljus mäts med en luminometer. DEL 1: transfektion av Plasmids för produktion av Renilla-Antigen fusionsproteiner Set-up: Cos1 celler odlas i DMEM-10% FCS med standardprotokoll vävnadskultur. Plasmider för Renilla luciferas fusioner har beskrivits tidigare 1. DNA för dessa plasmider är beredd att använda ett Midiprep kit från Qiagen. Avkastningen bör vara ungefär 1 -3 mg. Mät DNA-koncentration och lagrar som en 1000 mikrogram / ml stamlösning vid -20 ° C. Förfarande: En dag innan transfektion, split Cos-1 celler i nya 100 x 20 mm rätter på ca 2 X 10 6 per platta och inkubera vid 37 ° C. Dagen därpå ska Cos-1 celler 80-95% konfluenta. Etikett 1,5 ml polypropylen mikrofugrör rör för varje plasmid-DNA till transfekterades. Låt FuGENE-6 transfektion reagens, som förvaras vid 4 ° C, värmas upp till rumstemperatur. Tillsätt 94 ìl av Opti-MEM media till varje mikrofugrör. Tillsätt därefter 6 ìl FuGENE 6 till Opti-MEM media utan att röra sidovägg. Inkubera blandningen i 5 minuter i rumstemperatur. Lägg 1-2 mikrogram (från 1mg/ml DNA lump) av plasmiden för Renilla luciferas antigen fusion konstruktion. Blanda och sedan inkuberas blandningen i 15 minuter i rumstemperatur. Överför DNA-FuGENE 6-Opti-MEM lösning på cellerna genom droppade det jämnt i medierna av Cos1 celler. DEL 2: Skörd Renilla-antigen Fusions Två dagar efter transfektion, är de Cos-1 celler skördas. Detta initieras genom att ta bort media och sedan skölja cellerna med 6 ml PBS. Efter dekantering PBS, pipett bort eventuella rester av PBS från vävnadsodling skålen. Tillsätt 1,4 ml kall lyseringsbuffert består av 50 mM Tris, pH 7,5, 100 mM NaCl, 5 mm MgCl 2, 1% Triton X-100, 50% glycerol och proteashämmare (2 tabletter av kompletta miniprotease hämmare cocktail per 50 ml lyseringsbuffert). Harvest celler med en cell Scrapper och snabbt överföra hälften av lysat vardera till två 1,5 rör ml mikrofugrör på is. En Branson Sonifier 150 används för att bryta celler öppna. Placera mikrocentrifugrör innehåller cellen lysat på is och puls i 5 sek, 5 sek och 5 sek med sonication inställningar av 2, 2 och 4, respektive. Centrifugera cellen lysat vid 12.500 rpm för två 4 minuter snurrar vid 4 ° C. Efter första spin, vänd försiktigt rören för att ta bort löst bifogade skräp från sidoväggen av röret. Efter den andra spin försiktigt Överför supernatanten, utan att störa pelleten, från de två rören till en ny mikrofugrör på is. Beräkna ljuset enheter (DE) per ìl lysat. För att mäta LU, späd 1 ìl lysat med 8 l PBS i en ny mikrofugrör. Direkt lägga till 100 l 1X coelenterazine substrat till den utspädda blandningen och omedelbart mäta luminiscens i röret med hjälp av ett rör luminometer (20/20 n Turner vetenskapligt) med en 5 sekunders läsa. Förvara Ruc-antigen lysat vid -20 ° C i 1-2 dagar eller butik för längre tider i alikvoter vid -80 ° C. DEL 3: Förbereda en Sera Mästare tavla Gör ett serum mästare tallrik genom att först lägga 450 l av buffert A (50 mM Tris, pH 7,5, 100 mM NaCl, 5 mm MgCl 2, 1% Triton X-100) i varje brunn på en 96-djup-och polypropylen mikrotiterplattan . I detta steg kan ett färgämne, Fenolrött, också att finnas i buffert A (slutlig koncentration är 0,2 mikrogram / ml i buffert A) för att fungera som ett spårämne för att övervaka framtida serum tillsats av provet och andra åtgärder på läpparna analysen. Tillsätt därefter 50 ìl av serum från varje prov till de olika brunnar med 450 l av buffert A. Obs detta är en 1:10 spädning av serum i buffert A. Normalt serum läggs inte till de sista två brunnar av befälhavaren plattan eftersom Detta är reserverad för bufferten blanksteg. Innan du använder befälhavaren plattan, är det i stor utsträckning skakas (1-2 timmar) på en rotator plattform. Serumet i master plattan staBLE i minst 1 månad (eller längre) vid 4 ° C, om den förvaras på rätt sätt för att förhindra avdunstning. Som beskrivs nedan, ger denna mästare tallrik 10 ìl av utspätt serum som ska upprepade gånger bort för profilering av serum mot flera antigener. Större och mindre behärska plattor kan också användas. Täta plattan bra med Parafilm när den inte används. DEL 4: LIPS assay Polypropylen 96-grunt väl mikrotiterplattor används för att testa serum. I det första steget, tillsätt 40 ìl av buffert A till varje brunn på 96-brunnar med hjälp av en 8 kanals mikropipetten. Nästa tar 10 ìl utspätt serum (1 l serum motsvarande) från befälhavaren plattan och lägg till det direkt i varje brunn i arbetsgruppen plattan med hjälp av en 8 kanals mikropipetten. En Master Mix med RUC-antigenet utdraget nästa utformas så att 1 x 10 7 ljus enheter (LU) läggs i 50 ìl av buffert A till varje brunn. Lägre ingångar (så lite som 1 x 10 6) kan också användas, men resulterar i ett lägre dynamiskt omfång. Gör detta mästare blandningen och pipett 50 ìl Ruc-antigen blandning i varje brunn. Inkubera plattan på en rotationsskak under 1 timme i rumstemperatur. Under inkubationen, tillsätt 5 ìl av en 30% suspension av ULTRALINK protein A / G pärlor (Pierce Bioteknik, Rockford, IL) i PBS till botten av varje brunn i en ny 96 och filtret HTS platta (Millipore, Bedford, MA) . Efter 1 timme inkubation, överföra 100 l Ruc-antigen blandning antikroppsreaktion till 96 och filtrera HTS plattor som innehåller protein A / G pärlor med hjälp av en 8 kanals mikropipetten. Inkubera 96-bra filterplattan på en rotationsskak för en extra timme i rumstemperatur. Därefter tvättas filtret plattan på ett vakuum fördelare. Varje brunn tvättas 8 gånger med 100 ìl Buffer A, följt av två gånger med 100 l PBS. Detta kan utföras manuellt eller med en robot pipettera arbetsstation. Efter den sista tvättningen är vakuum avstängd. Ta bort filtret plattan och blot det torrt med en bunt pappershanddukar eller filterpapper och se till att avlägsna fukt på toppen och botten av plattan. DEL 5: Mätning Luminescence och dataanalys Set-up: En Berthold LB 960 Centro mikrotiterplatta luminometer används för att bestämma luminiscens i varje brunn med en enda spridare. När maskinen är påslagen, skölj injektorn med destillerat H 2 O med injektorn tvättprogram. Coelenterazine substrat är beredd att använda Promega kitet Renilla substrat som beskrivs av tillverkaren. Normalt 6 ml 1X coelenterazine substrat mix (dvs 60 l coelenterazine lager plus 6 ml 1X buffert) är förberett för grundmålning maskinen och kör en full 96-brunnar. Innan analysera plattan är Berthold LB 960 Centro mikroplattan luminometer primas med 1X coelenterazine substrat. Öppna ett program fil som innehåller inställningen för att injicera substrat och läsa plattan. För dessa mätningar är 50 ìl av coelenterazine substrat injiceras är plattan skakas i 2 sek, följt av en 5 sek läsa av luminiscens. Även om plattan luminometer har kapacitet att läsa hela plattan, kan en partiell läsa av plattan också väljas (under läs-menyn). Starta programmet, som initierar läsning av plattan. Efter körningen, ta bort plattan mikroteststrips filtret snabbt för att förhindra spill i luminometer. Exportera data som genereras med MikroWin programmet till en Excel-format för analys. Vi rekommenderar att utvärdera serum från två oberoende körningar. Uppgifterna används sedan i genomsnitt för att generera LU titer värden för varje prov. Dessa värden kan ytterligare anpassas till subtrahera buffert blanksteg. Ytterligare analys av data, såsom att bestämma gränsvärdet kan beräknas genom att ta medelvärdet plus 3 eller 5 standardavvikelser av kontrollen värden.