Summary

العزلة واشتقاق خلايا الفأر الجنينية بيرشوت

Published: October 22, 2009
doi:

Summary

قدرة الخلايا الجنينية جرثومي على التمايز إلى خلايا جرثومي البدائية خلال مراحل النمو المبكر هو نموذج مثالي لمعالجة فرضيتنا حول السرطان والعقم. هذا البروتوكول يوضح كيفية عزل خلايا جرثومي البدائية من المناسل النامية في الأجنة 10،5-11،5 أيام آخر coitum الماوس.

Abstract

قدرة الخلايا الجنينية جرثومي (مصر) على التمايز إلى خلايا بدائية جرثومي (PGCs) ولاحقا في الأمشاج خلال مراحل النمو المبكرة هو نموذج مثالي لمعالجة فرضيتنا حول السرطان والعقم. هذا البروتوكول يوضح كيفية عزل خلايا جرثومي البدائية من المناسل النامية في آخر أيام 10،5-11،5 الأجنة coitum الماوس (DPC). النامية التلال الغدد التناسلية من أجنة الفئران (C57BL6J) تم فصلها عن اضطراب الميكانيكية مع كولاجيناز ، ثم في مطلي بطبقة جنين الفأر تغذية الخلايا الليفية (MEF – CF1) الذي كان سابقا مع المعطل mitotically C mitomycin في حضور وسائل الإعلام وتستكمل مع خروج المغلوب المانع اللوكيميا عامل (LIF) ، عامل نمو الخلايا الليفية الأساسية (bFGF) ، والخلية الجذعية عامل (SCF). باستخدام هذه الأساليب الأمثل لتحديد PCG ، والعزلة ، وتهيئة الظروف ثقافة تصاريح الثقافات على المدى الطويل من الخلايا المصري لأكثر من 40 يوما. وأظهرت خطوط الخلايا الجنينية جرثومي النمط الظاهري الجنينية والتعبير عن علامات مشتركة تستخدم الدولة المحفزة. العزلة واشتقاق خلايا جرثومي في الثقافة توفير أداة لفهم تنميتها في المختبر ، وتتيح الفرصة لرصد الأضرار المتراكمة على المستويات الجينية واللاجينية بعد التعرض لالاكسدة.

Protocol

الجزء 1 : الحوامل البطن ماوس خلع به عنق الرحم ، والموت ببطء ماوس C57BL6J الإناث الحوامل في DPC 10،5-11،5. تنظيف البطن مع الصابون المضادة للميكروبات ، ثم حلقها. بعد الحلاقة ،…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

فإن الكتاب أن نعترف مساعدة لا تقدر بثمن من : الدكتور نيل الأولى ويلكنسون Kourtney للتحرير المخطوط ، والدكتورة لوسي سنتر ، والدكتور Willeford بريجيت ومايك Basett للمساعدة في تدريب ورعاية الحيوان في جامعة ولاية ميشيغان مرفق ALAC الماوس المعتمدة ، والدكتور دواين وايز للحصول على المساعدة مع المجهري والتقاط الصور ؛ سيزار مونروي ، Swoope هانا ، وبوبي هدلستون لمساعدتها في إنتاج الفيديو في جامعة ولاية ميشيغان. وقد تم تمويل هذا البحث من قبل مكتب البحوث المؤسسية وإدارة العلوم البيولوجية في جامعة ولاية ميسيسيبي.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
10.5 – 11.5 dpc pregnant C57BL6J female mouse crossed with the same background male mouse.        
Mouse Fibroblast MEF-CF1 ATCC     SCRC-1040  
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS)   Invitrogen 14190/086  
Collagenase /Dispase Solution   Roche 269638  
Gelatin   Sigma G1890  
Mitomycin C   Sigma M4287  
Trypsin EDTA   Invitrogen 25200-072  
MEF Medium: Dulbecco Medium Eagle Modified (D-MEM) GLUTAMAX High glucose   Invitrogen 10566024  
10% Fetal Bovine Serum   Invitrogen 16000/044  
1% of antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096  
Knockout Media: 80% knockout D-MEM   Invitrogen 10829/018  
20% Knockout serum Invitrogen Cat. No. 1028/028, 200mM L-glutamine Invitrogen     25130/081 with β-mercaptoethanol Sigma Catalogue Number: M7522
1X non essential amino acid solution   Invitrogen 11140/050  
1% antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096 supplemented with grow factor as 2500 U of Leukemia inhibitory factor (mLIF-ESGRO) Millipore Catalogue Number: ESG1106
40 ng/ml of Recombinant Murine Stem Cell Factor (SCF) ReproTech     250-03  
20 ng/ml of Basic Fibroblast Growth factor (bFGF)   Invitrogen 13256-029  
Corning center well culture dish 60mm   Fisher 07-200-79 1.5 ml eppendorf tube, and 15 ml falcon tubes
Forceps No. 14 and 15, scalpel 35 mm, dissection scissors, surgical fields, antimicrobial soap, saline solution 0.9 %, gauze, ice foam container, razor blade, scalpel 35 mm, fine forceps No. 4 and 5, fine teasing needle with handle, filter paper sheets, and pulled glass pipettes.

Equipment: dissecting stereomicroscope, light source Schott Fostec, inverted microscope, micropipette 10 and 200ul, centrifuge, bio safety Cabinet.

References

  1. DeFelici, M. . Cell Biology: A laboratory Handbook. 1, 73-85 (1998).
  2. Donovan, P. J., De Miguel, M. P. Turning Germ Cells into Stem Cells. Current Opinion in Genetics and Development. 13, 463-471 (2003).
  3. Labosky, P. A., Hogan, B. L. M., Sharp, P. T., Mason, I. Part 12: Mouse Primordial Germ Cells: isolation and in vitro culture. Molecular embryology: methods and protocols. 97, (1999).
  4. Mc Laren, A., Southee, D. Entry of Mouse Embryonic Germ Cells into Meiosis. 발생학. 187, 107-113 (1997).
  5. Yoshimizu, T., Obinata, M., Matsui, Y. Stage-specific tissue and cell interactions play key roles in mouse germ cell specification. Development. 128, 481-490 (2001).
  6. Zhang, J., Hhvorostov, I., Teitell, M. From MEFs to Matrigel I: Passaging hESCs in the Presence of MEFs. J Vis Exp. , (2008).
check_url/kr/1635?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Moreno-Ortiz, H., Esteban-Perez, C., Badran, W., Kent-First, M. Isolation and Derivation of Mouse Embryonic Germinal Cells. J. Vis. Exp. (32), e1635, doi:10.3791/1635 (2009).

View Video