In diesem Video zeigen wir die Isolierung der Maus Blastozysten und die Ableitung der Trophoblast-Stammzellen aus Blastozysten. Wir beschreiben auch Bedingungen für die Wartung der Stammzell-Eigenschaft sowie die Induktion der Differenzierung in Kultur.
Abstract
Spezifikation der Trophektoderm ist eine der frühesten Differenzierung Veranstaltungen von Säugetier-Entwicklung. Der Trophoblast Linie aus dem Trophektoderm vermittelt Implantation abgeleitet und generiert die fetalen Teil der Plazenta. Als Ergebnis ist die Entwicklung dieser Linie wichtig für den Embryo Überleben. Herleitung der Trophoblasten Stammzellen (TS)-Zellen von Maus Blastozysten wurde zuerst von Tanaka beschrieben<em> Et al.</em> 1998. Die Fähigkeit der TS-Zellen, die Trophoblasten spezifische Eigenschaft und ihre Expression von Bühnen-und Zelltyp-spezifische Marker nach entsprechender Stimulation erhalten eine wertvolle Modellsystem, um die Trophoblasten Abstammung Entwicklung zu untersuchen, wobei Rekapitulation frühen Plazentation Veranstaltungen. Darüber hinaus sind Trophoblastzellen einer der wenigen somatische Zelltypen unterziehen natürliche Genome Amplification. Obwohl die zugrunde liegenden molekularen Mechanismen Trophoblasten Polyploidisierung begonnen haben, zu entwirren, bleibt die physiologische Rolle und der Vorteil der Trophoblast Genomamplifikationstechnik weitgehend ungeklärt. Die Entwicklung der diploiden Stammzellen in polyploiden Trophoblast-Zellen in Kultur macht diese<em> Ex vivo</em> System das perfekte Werkzeug für die Aufklärung der regulatorischen Mechanismus der Genom-Replikation und Instabilität in Gesundheit und Krankheit. Hier beschreiben wir ein Protokoll über die früheren Berichte mit Modifikationen in Chiu veröffentlichten<em> Et al.</em> 2008.
Protocol
In diesem Protokoll, beschreiben wir die Herstellung von Maus-Blastozysten und die Einrichtung von TS-Zelllinien. Allgemeine Maus Manipulationen vor der Sammlung von Blastozysten, einschließlich der Einrichtung für die natürliche Paarung und die Induktion von Super Eisprung folgen grundsätzlich dem Standard-Protokoll von Nagy et al dargestellt. 2003 (pp146-150). Ableitung und Wartung von TS-Zellen Setup-Zucht Kreuzung zwischen Mäusen von Interesse. Bereiten…
Discussion
In diesem Video zeigen wir, den Prozess zu E3.5 Blastozysten aus uteri und experimentellen Verfahren zu sammeln, um TS-Zelllinien zu etablieren. Wir beschreiben auch die Voraussetzung für die Stammzell-Seins der TS-Zellen zu erhalten und deren Differenzierung in differenzierten Zellen zu induzieren. Zwei entscheidende Schritte zur reinen TS-Zelllinien zu erhalten sind das Timing für Auswuchs Disaggregation (Schritt 9) und die Verarbeitung der ersten Passage (Schritt 11). Es wurde berichtet, dass primitive Endoderm-abg…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Die Autoren danken Janet Rossant für das ursprüngliche Protokoll. Diese Studie wurde vom National Institute of Health gewähren CA106308 zu WH unterstützt.
Materials
Reagents
TS medium: RPMI-1640, 20% FBS, 1 mM sodium pyruvate, 100 mM beta-mercaptoethanol and 100 mg/ml penicillin-streptomycin.
Mitomycin C: Dissolve 2 mg mitomycin C (Sigma M-0503) in 2 ml PBS and add this 2 ml mixture into 200 ml TS medium (10 ng/ml). Make 20 aliquots (10 ml) and store at -20°C until use. Add one aliquot per 100 mm plate.
Mouse embryonic fibroblast-condition medium (MEF-CM): Plate MEFs in 100 mm plates (1 x 106/plate). Next day, add 10 ml TS medium per dish and continue to culture for 48 hours. Collect the culture medium, filter them (0.45 mm) and store at -20°C in 35 ml aliquots. Thaw each aliquot when needed which can be stored at 4°C. The MEFs can be used to prepare for two more batches of CM before they become confluent.
PBS/BSA: Dissolve BSA, fraction V (Sigma A3311, 0.1% (w/v)) in PBS (10 ml), filter through a 0.45 mm syringe filter and make 1 ml aliquots in 1.5 ml tubes. Store at -70°C and thaw one tube when needed to prepare FGF4.
FGF4 (1000x): Resuspend lyophilized FGF4 (Sigma F8424, 25 mg) with 1 ml of the PBS/BSA solution. Mix well and make 10 aliquots (100 ml) into 1.5 ml tubes and store at -70°C. Thaw each tube when needed and store the remaining at 4°C, do not re-freeze. Dilute 1000 times in TS medium to obtain 1x FGF4 (25 ng/ml).
Heparin (1000x): Resuspend heparin (Sigma H3149, 10,000 units) in PBS to a final concentration of 1 mg/ml (1000x). Make 100 ml aliquots into 1.5 ml tubes and store at -70°C. Thaw aliquots when needed and store the remaining at 4°C, do not re-freeze. Dilute 1000 time in TS medium to obtain 1x heparin (1 ng/ml).