Summary

Yumuşak Kas-iskelet Dokular Kök Hücre Yalıtımlı

Published: July 05, 2010
doi:

Summary

Balona hücre bağlılık hızına göre kas-iskelet yumuşak dokulardan Yalıtımlı yetişkin kök hücreleri.

Abstract

Yetişkin kök hücreleri uzun rejeneratif tıp uygulama ile ilgili olarak ele alınmıştır. Yetişkin kök hücreleri, çok soyundan hücre farklılaşması ve kendi kendini yenileme yeteneği geçmesi etkileyici yetenekleri nedeniyle yaralı ve hastalıklı dokuların tedavisi için büyük bir heyecan yarattı. En önemlisi, bu niteliklere otolog hücre nakli tedavileri kullanmak için onları avantajlı hale getirmiştir. Geçerli protokol, kas-iskelet sistemi, örneğin, tendon ve kas, yumuşak doku 1 değiştirilmiş preplate tekniğini okuyucularına tanıtacak<sup> St</sup> Orta kollajen kaplı şişelerde yerleştirilen enzimatik olarak ayrışmış ve sonra. Orta ve kalan yüzen hücreler oluşur süpernatant, seri, yeni şişeler için günlük transfer edilir. Kök hücreler (seri transferleri veya preplates) genellikle 5-7 gün sürer şişeler uymak için en yavaş. Bu tekniği kullanarak, yetişkin kök hücreler bu dokuların mevcut oldukça non-invaziv prosedürler yoluyla kolayca hasat edilebilir.

Protocol

Genel olarak, komple değiştirilmiş preplate prosedürü hazırlık 1-2 gün, 1 hafta teknik yordamı gerçekleştirmeden, 2-3 gün hücre immünsitokimya kimlik, kök hücre nüfus büyümesi ek bir 2-3 hafta gerektirir. Kök hücre kültürü için gerekli ekipman, bir tezgah üstü santrifüj, CO2 inkübatör, Laminer akış doku kültürü kaputu ve floresans ve bir dijital kamera ile donatılmış bir inverted mikroskop içeren diğer hücre kültür sistemleri bu benzer . Izole edilen kök hücreler d…

Discussion

Bu, bazı yetişkin dokularda çok kök hücreler içerdiğini kabul edilmiştir. Çalışmanın son birkaç yıl içinde, kök hücre, iskelet kas ve tendon gibi yumuşak kas-iskelet dokuları, tespit edilmiştir. Tendon ve iskelet kası yetişkin kök hücreleri izole etmek için başarılı bir laboratuvarda kullanılan olmuştur değiştirilmiş preplate tekniği olarak bilinen bu akım protokol detaylarının bir prosedür. Hücreleri yukarıda açıklanan değiştirilmiş preplate tekniği kullanarak çeşitli pop…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar, güncel film ve slayt düzenleme hakkında yardım için Sayın Kyle Holden ve Sayın Jonathan Lucas için hücre izolasyonu, teknik yardım, Bayan Haiying Pan ve Bay Ian Bellayr büyük takdir. Dr: Geçtiğimiz yıllarda modifiye preplate tekniklerinin geliştirilmesi ile ilgili olan kişilerin aşağıdaki listeye çok teşekkürler. Burhan Gharaibeh, Baohong Cao, Deasy Bridget, Thomas R. Payne, Aiping Lu, Hairong Peng, Hideki Oshima, Bo Zeng, Xiaodong Mu, Kimimasa Tobita Ron Jankowski, Makato Ikezawa. James H. Cummins, Ryan Pruchnic, Joseph Feduska, Rebecca C. Schugar, Haiying Pan ve Jessica Tebbets teknik yardım için teşekkür ediyoruz. Yazar ayrıca Müsküler Distrofi Derneği (MDA), Ulusal Sağlık Enstitüleri (NIH), Savunma Bakanlığı (DOD), UPMC, Pittsburgh Çocuk Hastanesi, Anabilim Dalı Bu çalışma için mali destek kabul etmek gibi. Ortopedi ve Travmatoloji ve Pittsburgh Üniversitesi.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
DMEM   Invitrogen #11995-073  
FBS   Invitrogen #10437-028  
Heat-inactivated horse serum   Invitrogen #26050-088  
Chick embryo extract   Accurate Chemical #CE650T-10  
100U ml penicillin/streptomycin   Invitrogen #15140-122  
Dulbecco’s PBS   Invitrogen #14190-250  
Hank’s Buffered Salt Solution   Invitrogen #24020-117  
Collagenase type XI 0.2%(wt/vol)   Sigma-Aldrich #C7657  
Dispase2.4U ml   Invitrogen #17105-041  
Trypsin-EDTA0.5%(wt/vol) (10x;5g liter trypsin (1:250)   Invitrogen #15400-054  
Collagen for coating flask : Type I collagen derived from calf skin 0.1 g liter   Sigma-Aldrich #C-9791  
DMSO   Sigma #D-2650  

References

  1. Gharaibeh, B. Isolation of a slowly adhering cell fraction containing stem cells from murine skeletal muscle by the preplate technique. Nat Protoc. 3, 1501-1509 (2008).
  2. Qu-Petersen, Z. Identification of a novel population of muscle stem cells in mice: potential for muscle regeneration. J Cell Biol. 157, 851-864 (2002).
  3. Li, Y. &. a. m. p. ;. a. m. p., Huard, J. Differentiation of muscle-derived cells into myofibroblasts in injured skeletal muscle. Am J Pathol. 161, 895-907 (2002).
  4. Watt, D. J., Lambert, K., Morgan, J. E., Partridge, T. A. &. a. m. p. ;. a. m. p., Sloper, J. C. Incorporation of donor muscle precursor cells into an area of muscle regeneration in the host mouse. J Neurol Sci. 57, 319-331 (1982).
  5. Lu, A. Isolation of myogenic progenitor populations from Pax7-deficient skeletal muscle based on adhesion characteristics. Gene Ther. 15, 1116-1125 (2008).
  6. Lee, J. Y. Clonal isolation of muscle-derived cells capable of enhancing muscle regeneration and bone healing. J Cell Biol. 150, 1085-1100 (2000).
  7. Cao, B. The role of receptors in the maturation-dependent adenoviral transduction of myofibers. Gene Ther. 8, 627-637 (2001).
  8. Cao, B. Muscle stem cells differentiate into haematopoietic lineages but retain myogenic potential. Nat Cell Biol. 5, 640-646 (2003).
  9. Huard, J. Regenerative medicine based on muscle stem cells. J Musculoskelet Neuronal Interact. 8, (2008).
  10. Gates, C. B., Karthikeyan, T., Fu, F. &. a. m. p. ;. a. m. p., Huard, J. Regenerative medicine for the musculoskeletal system based on muscle-derived stem cells. J Am Acad Orthop Surg. 16, 68-76 (2008).
check_url/kr/2011?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Li, Y., Pan, H., Huard, J. Isolating Stem Cells from Soft Musculoskeletal Tissues. J. Vis. Exp. (41), e2011, doi:10.3791/2011 (2010).

View Video