Summary

DNA-Stabiele Isotopen sondering (DNA-SIP)

Published: August 02, 2010
doi:

Summary

DNA-stabiele isotoop sonderen is een teelt-onafhankelijke methode voor het identificeren en karakteriseren van actieve gemeenschappen van micro-organismen die in staat zijn gebruik te maken van specifieke substraten. Assimilatie van de ondergrond verrijkt met zware isotoop leidt tot opname van gelabelde atomen in de microbiële biomassa. Dichtheidsgradiënt ultracentrifugatie haalt gelabeld DNA voor de downstream-moleculaire analyses.

Abstract

DNA-stabiele isotoop indringende (DNA-SIP) is een krachtige techniek voor het identificeren van actieve micro-organismen die bepaalde koolstofsubstraten en voedingsstoffen te assimileren in cellulaire biomassa. Als zodanig is deze teelt-onafhankelijke-techniek is een belangrijke methode voor het toewijzen van metabolische functie om de diverse gemeenschappen bewoont een breed scala van terrestrische en aquatische milieus. Na de incubatie van een milieu-monster met een stabiele isotoop-gelabelde stoffen, wordt gewonnen nucleïnezuur onderworpen aan dichtheidsgradiënt ultracentrifugatie en de daaropvolgende helling fractionering aan nucleïnezuren van verschillende dichtheden scheiden. Zuivering van DNA van cesium chloride ophaalt gelabeld en ongelabelde DNA voor verdere moleculaire karakterisering (bijvoorbeeld vingerafdrukken, microarrays, kloon bibliotheken, metagenomica). Deze video Jove protocol biedt visuele stap-voor-stap uitleg van het protocol voor de dichtheidsgradiënt ultracentrifugatie, gradiënt fractionering en herstel van gelabelde DNA. Het protocol bevat ook proeven van SIP-gegevens en belicht belangrijke tips en waarschuwingen die moeten worden beschouwd als een succesvolle DNA-SIP-analyse te garanderen.

Protocol

1. Voorbereiding van de reagentia DNA-SIP vereist het gebruik van de reagentia die moeten worden voorbereid op voorhand van de werkelijke procedure. De aanwijzingen voor het bereiden van elk reagens worden in deze sectie en zijn gewijzigd van een vorige SIP-protocol 1. Cesium chloride (CSCL) oplossing voor het bereiden van SIP hellingen – Voorbereiden van een 7.163 M oplossing CsCl door geleidelijk aan het oplossen van 603,0 g CsCl in gedestilleerd en gedeïoniseerd wat…

Discussion

Goed ontwerp van stabiele isotoop-probing experimenten is van cruciaal belang voor het verkrijgen van het label DNA boven de achtergrond ongelabelde gemeenschap. Overwegingen met betrekking tot incubatietijden, substraatconcentraties, incubatieomstandigheden (bv. voedingsstoffen, bodemvocht), cross-voeding en replicatie monster zijn elders 10,18 besproken en adviseren wij de lezer deze publicaties bij het ​​ontwerpen van een SIP-incubatie. Gerelateerd aan de huidige protocol, is het de moeite waard commen…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door Strategic Project en Discovery Subsidies voor JDN van het Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Bromophenol Blue Reagent Fisher Scientific BP115-25  
Cesium chloride Reagent Fisher Scientific BP210-500  
Ethanol, reagent grade Reagent Sigma-Aldrich 652261  
Ethidium bromide Reagent Sigma-Aldrich E1510  
Hydrochloric acid Reagent Fisher Scientific 351285212  
Linear polyacrylamide Reagent Applichem A6587  
Polyethylene Glycol 6000 Reagent VWR CAPX1286L-4  
Potassium Chloride Reagent Fisher Scientific AC42409-0010  
Sodium Chloride Reagent Fisher Scientific S2711  
Sodium Hydroxide pellets Reagent Fisher Scientific S3181  
Tris base Reagent Fisher Scientific BP1521  
Dark Reader Equipment Clare Chemical DR46B  
Microcentrifuge Equipment Eppendorf 5424 000.410  
Nanodrop 2000 Equipment Fisher Scientific 361013650  
Infusion pump Equipment Braintree Scientific N/A Model Number: BSP
See www.braintreesci.com for ordering details.
Tube sealer Equipment Beckman-Coulter 358312  
Ultracentrifuge Equipment Beckman-Coulter    
Ultracentrifuge rotor Equipment Beckman-Coulter 362754  
Ultraviolet light source Equipment UVP Inc. 95-0017-09 Any UV source will suffice
Ultraviolet light face shield Equipment Fisher Scientific 114051C  
Butyl rubber stoppers, gray Material Sigma-Aldrich 27232  
Centrifuge tubes Material Beckman-Coulter 342412  
Hypodermic needle, 23 gauge, 2” length Material BD 305145  
Microfuge tubes, 1.5 mL Material DiaMed AD151-N500  
Open center seals, 20 mm diameter Material Sigma-Aldrich 27230-U  
Pasteur pipettes, glass Material Fisher Scientific 13-678-6C  
Pipet tips Material DiaMed BPS340-1000 Catalogue number is for 200 μl tips. 10 or 20 μl tips may be purchased from the same source
Pump tubing 1.5 mm bore x 1.5 mm wall Material Appleton Woods    
Screw-cap tubes, 15 mL Material DiaMed AD15MLP-S  
Serum vials, 125 mL volume Material Sigma-Aldrich Z114014  
Syringe, 60 mL Material BD 309653  

References

  1. Neufeld, J. D. DNA stable-isotope probing. Nat. Protocols. 2, 860-866 (2007).
  2. Neufeld, J. D., Boden, R., Moussard, H., Schäfer, H., Murrell, J. C. Substrate-specific clades of active marine methylotrophs associated with a phytoplankton bloom in a temperate coastal environment. Appl. Environ. Microbiol. 74, 7321-7328 (2009).
  3. Nercessian, O., Noyes, E., Kalyuzhnaya, M. G., Lidstrom, M. E., Chistoserdova, L. Bacterial populations active in metabolism of C1 compounds in the sediment of Lake Washington, a freshwater lake. Appl. Environ. Microbiol. 71, 6885-6899 (2005).
  4. Padmanabhan, P. Respiration of 13C-labelled substrates added to soil in the field and subsequent 16S rRNA gene analysis of 13C-labelled soil DNA. Appl. Environ. Microbiol. 69, 1614-1622 (2003).
  5. Bernard, L. Dynamics and identification of soil microbial populations actively assimilating carbon from 13C-labelled wheat residue as estimated by DNA- and RNA-SIP techniques. Environ. Microbiol. 9, 752-764 (2007).
  6. Haichar, e. l. Z. a. h. a. r., F, . Identification of cellulolytic bacteria in soil by stable isotope probing. Environ. Microbiol. 9, 625-634 (2007).
  7. Addison, S., McDonald, I., Lloyd-Jones, G. Stable isotope probing: Technical considerations when resolving 15N-labelled RNA in gradients. J. Microbiol. Meth. 80, 70-75 (2009).
  8. Buckley, D. H., Huangyutitham, V., Hsu, S. -. F., Nelson, T. A. Stable isotope probing with 15N achieved by disentangling the effects of genome G + C content and isotope enrichment on DNA density. Appl. Environ. Microbiol. 73, 3189-3195 (2007).
  9. Schwartz, E. Characterization of growing microorganisms in soil by stable isotope probing with H218O. Appl. Environ. Microbiol. 73, 2541-2546 (2007).
  10. Neufeld, J. D., Dumont, M. G., Vohra, J., Murrell, J. C. Methodological considerations for the use of stable isotope probing in microbial ecology. Microb. Ecol. 53, 435-442 (2007).
  11. Martineau, C., Whyte, L., Greer, C. Development of a SYBR safe technique for the sensitive detection of DNA in cesium chloride density gradients for stable isotope probing assays. J. Microbiol. Meth. 73, 199-202 (2008).
  12. Bartram, A. K., Poon, C., Neufeld, J. D. Nucleic acid contamination of glycogen used in nucleic acid precipitation and assessment of linear polyacrylamide as an alternative co-precipitant. Biotechniques. 47, 1019-1022 (2009).
  13. Chen, Y. Revealing the uncultivated majority: combining DNA stable-isotope probing, multiple displacement amplification and metagenomic analyses of uncultivated Methylocystis in acidic peatlands. Environ. Microbiol. 10, 2609-2622 (2008).
  14. Neufeld, J. D., Chen, Y., Dumont, M. G., Murrell, J. C. Marine methylotrophs revealed by stable-isotope probing, multiple displacement amplification and metagenomics. Environ. Microbiol. 10, 1526-1535 (2008).
  15. Kalyuzhnaya, M. High-resolution metagenomics targets specific functional types in complex microbial communities. Nat. Biotechnol. 26, 1029-1034 (2008).
  16. Binga, E. K., Lasken, R. S., Neufeld, J. D. Something from (almost) nothing: the impact of multiple displacement amplification on microbial ecology. ISME J. 2, 233-241 (2008).
  17. Green, S. J., Leigh, M. B., Neufeld, J. D., Timmis, K. N. . Microbiology of Hydrocarbon and Lipid Microbiology. , 4137-4158 (2010).
  18. Neufeld, J. D., Wagner, M., Murrell, J. C. Who eats what, where and when? Isotope-labelling experiments are coming of age. ISME J. 1, 103-110 (2007).
  19. Gallagher, E., McGuinness, L., Phelps, C., Young, L. Y., Kerkhof, L. J. DNA shortens the incubation time needed to detect benzoate-utilizing denitrifying bacteria by stable-isotope probing. Appl. Environ. Microbiol. 71, 5192-5196 .
check_url/kr/2027?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Dunford, E. A., Neufeld, J. D. DNA Stable-Isotope Probing (DNA-SIP). J. Vis. Exp. (42), e2027, doi:10.3791/2027 (2010).

View Video