Summary

In-vivo-Mikro-Zirkulation Measurement im Skelettmuskel von Intra-vital-Mikroskopie

Published: May 28, 2007
doi:

Summary

Eine neue vielseitige Methode zur Beobachtung der Mikrozirkulation wird vorgestellt. Es gilt als geeignet für eine langfristige Beobachtung und für die Kombination mit pharmacophysiological oder molekularbiologische Eingriffe.

Abstract

HINTERGRUND: regulatorische Faktoren und detaillierte Physiologie der In-vivo-Mikrozirkulation geblieben nicht in vollem Umfang nach vielen verschiedenen Modalitäten der Bildgebung erfunden geklärt. Während viele makroskopischer Parameter des Blutflusses Strömungsgeschwindigkeit, Änderungen in der Geschwindigkeit des Blutflusses und der roten Blutkörperchen (RBC) spiegeln Fluss nicht halten lineare Beziehung in die mikroskopischen Beobachtungen. Es gibt Berichte über Diskrepanz zwischen RBC Geschwindigkeit und RBC flux, flux RBC und Plasma-Volumenstrom und der räumlichen und zeitlichen Heterogenität der Durchflussregelung in den peripheren Geweben in mikroskopischen Beobachtungen, eine wissenschaftliche Grundlage für die Anforderung von detaillierteren Studien in der Mikrozirkulation der Verordnung über Intravitalmikroskopie.

Methoden: Wir modifizierten Jeff Lichtman Methode der in vivo mikroskopische Beobachtung der Maus Kopfnicker Muskeln. Mäuse sind betäubt, belüftet, und injiziert mit PKH26L-fluoreszenzmarkierten Erythrozyten zur mikroskopischen Beobachtung.

ERGEBNIS & FAZIT: Fluoreszenz-markierte Erythrozyten werden erkannt und auch durch eine breite-Mikroskop aus. Muskelkontraktion durch elektrische Stimulation induzierte Zunahme RBC Flusses hervorgerufen. Quantifizierung von anderen Parametern, einschließlich RBC Geschwindigkeit und Kapillardichte möglich waren. Mäuse gut vertragen die Operation, Injektion von gefärbten roten Blutkörperchen, mikroskopische Beobachtung und elektrischer Stimulation. Kein Muskel-oder Blutgefäß beschädigt wurde beobachtet, was darauf hindeutet, dass unsere Methode relativ weniger invasive und geeignet für Langzeit-Beobachtungen ist.

Protocol

RBC Membranfärbung Maus roten Blutkörperchen wurden aus dem gleichen Mausstamm mit Heparinisierung korrigiert. Maus RBC wurden mit PKH26 Farbstoff (; Rot fluoreszierende Zelle Linker Kit, Sigma, USA 551/567 nm) gefärbt. RBC wurden in PBS gewaschen und mit 2 um Lösung des PKH26 Farbstoff für 5 Minuten bei Raumtemperatur. Die Reaktion wurde durch Zugabe von Plasma (Hitze für 1 Stunde bei 65 ° C vorher inaktiviert) und für 1 Minute gestoppt. Die Kirchenfenster RBC wurden 5 ma…

Discussion

Wichtige techinical Punkte sind wie folgt: (1) Wartung der physiologische Zustand des Tieres (Lüftung, pH-Wert der Lösung perfusative, Körpertemperatur), (2) Injektionsvolumen des gefärbten RBC, und (3) Bedingungen für die Beobachtung (optimale Linse Auswahl-, Fluoreszenz-Intensität). Mögliche zukünftige Anwendungen sind wie folgt: (a) Kombination mit pharmacophysiological und / oder molekularbiologische Eingriffe, (b) langfristige Beobachtung der arterio / arteriolo-Sklerose und Gefäßneubildung.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir bedanken uns bei JW Lichtman für seine Beratung in in vivo Beobachtung der Muskeln.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
PKH26 dye   Sigma   551/567 nm; Red fluorescent cell linker kit
C57BL/10 mice Animal     Three to six month old males
pentobarbital       anesthetic, 50mg/kgBW, i.p.

References

  1. Lichtman, J. W., Magrassi, L., Purves, D. Visualization of neuromuscular junctions over periods of several months in living mice. J Neurosci. 7, 1215-1222 (1987).
check_url/kr/210?article_type=t

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Cite This Article
Asai, A., Sahani, N., Ouchi, Y., Martyn, J., Yasuhara, S. In vivo Micro-circulation Measurement in Skeletal Muscle by Intra-vital Microscopy. J. Vis. Exp. (4), e210, doi:10.3791/210 (2007).

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