Fluorescência dupla In situ Hibridação nas Seções cérebro fresco
Summary
Este protocolo envolve um não-radioativo<em> In-situ</em> Processo de hibridação que permite a identificação simultânea de duas espécies de transcrição, com uma resolução única célula, em seções finas do cérebro dos vertebrados.
Abstract
Aqui nós descrevemos uma versão modificada de uma dupla de fluorescência<em> In situ</em> Hibridação método (dFISH) otimizado para a detecção de dois mRNAs de interesse em novas seções cérebro congelado. Nosso grupo tem utilizado com sucesso esta abordagem para o estudo de genes co-regulação. Mais especificamente, temos utilizado este método dFISH para explorar a organização anatômica, propriedades neuroquímicos, eo impacto da experiência sensorial no centro de circuitos sensoriais, em resolução única célula. Este protocolo foi validado no tecido cerebral de camundongos, ratos e pássaros, mas é esperado para ser facilmente adaptável a outras espécies de vertebrados, bem como para uma matriz de não-tecidos neurais. Neste filme, nós fornecemos uma demonstração detalhada dos principais passos deste procedimento.
Protocol
Discussion
Nós temos usado esse protocolo para estudar como o cérebro dos vertebrados é neuroquimicamente e funcionalmente organizado, e para determinar como comportamentalmente relevante impacto estímulos sensoriais as máquinas genômica de neurônios no cérebro adulto 80-10. Temos utilizado com sucesso este método em tecido cerebral de camundongos, ratos e pássaros, mas antecipamos que este protocolo será facilmente adaptável às seções do cérebro obtidas a partir de uma variedade de espécies de vertebra…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Trabalho suportado por concessões de NIH / NIDCD ea Fundação Schmitt para RP.
Materials
| Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| DEPC | VWR | IC15090225 | toxic substance | |
| PCR purification kit | QIAgen | 28104 | ||
| Formaldehyde | VWR | BDH0506-4LP | toxic substance | |
| T3 RNA polymerase | Roche | 11031163001 | ||
| T7 RNA polymerase | Roche | 10881767001 | ||
| Tris-HCl (1 M, pH 7.5) | VWR | IC816124 | ||
| MgCl2 (1 M) | Sigma | 449172 | ||
| Spermidine (1 M) | Sigma | S0266 | ||
| DIG RNA labeling mix | Roche | NC9380805 | ||
| Biotin RNA labeling mix | Roche | NC9440104 | ||
| RNasin | Promega | N2111 | ||
| BSA | Sigma | 05491 | ||
| DTT | Sigma | D5545 | ||
| Sephadex G50 | VWR | 95016-772 | ||
| EDTA | VWR | 101384-758 | ||
| SDS | Sigma | L4390 | ||
| Transfer (t)RNA | Invitrogen | 15401011 | ||
| 10X MOPS | VWR | 14221-398 | toxic substance | |
| Paraformaldehyde | VWR | AAAL04737-36 | toxic substance | |
| Sodium phosphate monobasic | Sigma | S3139 | ||
| Sodium phosphate dibasic | Sigma | S3264 | ||
| NaOH | VWR | SX0600-1 | ||
| Triethanolamine | VWR | IC15216391 | ||
| Acetic anhydride | VWR | MK242002 | toxic substance | |
| SSPE | VWR | 82021-488 | ||
| Formamide | VWR | JT4028-1 | toxic substance | |
| Poly A | Invitrogen | POLYA.GF | ||
| Mineral oil | VWR | IC15169491 | ||
| Chloroform | VWR | BDH1109 | organic solvent | |
| Deionized formamide | Sigma | F9037 | toxic substance | |
| Hydrogen peroxide | VWR | VW36901 | toxic substance | |
| Tween 20 | Sigma | P1379 | ||
| Triton X-100 | J. T. Baker | X198-05 | ||
| Anti-DIG HRP | Roche | 11093274910 | ||
| Anti-biotin peroxidase | Vector | SP3010 | ||
| TSA Alexa Fluor 594 | Invitrogen | T20935 | ||
| TSA Alexa Fluor 488 | Invitrogen | T20932 | ||
| Hoechst | VWR | 200025-538 | ||
| Vectashield | Vector | H-1000 | ||
| embedding mold | VWR | 15160-157 | ||
| cryostat | Leica | CM 1850 | ||
| Superfrost plus slide | VWR | 89033-052 |
Solutions
- Column washing buffer: 10 mM Tris-HCl, 0.15 M NaCl, 0.05 mM EDTA, 50 μg/μl tRNA, 0.1% SDS in 50 ml DEPC-treated water.
- Column blocking buffer: 10 mM Tris-HCl, 50 mM NaCl, 0.1 mM EDTA in 50 ml DEPC-treated water.
- TNT buffer: 60 ml of 1 M Tris-HCl, 18 ml of 5 M NaCl and 1.8 ml of Triton X-100 in 600 ml of DEPC-treated water.
- TNB buffer: 100 mM Tris-HCl, 8.3 μg/μl BSA, 0.15 M NaCl and 3% Triton X-100 in DEPC-treated water.
- TE buffer: 10 mM Tris-HCl, pH 7.5 plus 1 mM EDTA, pH 7.5.
- Acetylation solution: 2.7 ml of triethanolamine plus 0.5 ml of acetic anhydride in 200 ml of DEPC-treated water.
- Hybridization solution: 50% formamide, 2X SSPE, 2 μg/μl tRNA, 1 μg/μl BSA and 1 μg/μl poly A in DEPC-treated water. It needs 16 l per section.
References
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