Summary

Tillverkning av biologiskt härledda Injicerbara Material Myocardial Tissue Engineering

Published: December 20, 2010
doi:

Summary

Metoder för att förbereda ett injicerbart matris gel från decellularized vävnad och injiceras i råtta hjärtmuskeln<em> In vivo</em> Beskrivs.

Abstract

Detta protokoll innehåller metoder för beredning av ett injicerbart extracellulärt matrix (ECM) gel för hjärtinfarkt applikationer tissue engineering. Kortfattat är decellularized vävnad frystorkad, malts, enzymatiskt smälta, och sedan tagit till fysiologiska pH. Den frystorkning tar bort allt vatten innehåll från vävnaden, vilket resulterar i torra ECM som kan malas till ett fint pulver med en liten kvarn. Efter fräsning är ECM pulvret kokas med pepsin för att bilda en injicerbara matris. Efter justering till pH 7,4, kan det flytande matrisen materialet sprutas in i hjärtmuskeln. Resultat av tidigare karakterisering analyser har visat att matrisen geler produceras från decellularized perikardiell och hjärtinfarkt vävnad behålla infödda ECM-komponenter, inklusive olika proteiner, peptider och glykosaminoglykaner. Eftersom användningen av detta material för tissue engineering, in vivo karakterisering är särskilt användbart, här, (LV) en metod för att utföra en intramural injektion i vänster kammare fri vägg presenteras som ett sätt att analysera värd reaktion på matrisen gelen i ett litet djur modell. Tillgång till brösthålan erhålls genom membranet och injektionen görs något över apex i LV fria väggen. Den biologiskt härledda schavotten kan visualiseras genom biotin-märkning före injektion och sedan färgning vävnadssnitt med pepparrot peroxidaskonjugerade neutravidin och visualisera via Diaminobenzidin (DAB) färgning. Analys av injektionen regionen kan också göras med histologiska och immunhistokemisk färgning. På detta sätt var de tidigare undersökt perikardiell och hjärtinfarkt matris geler visat att bilda fibrer, porösa nätverk och främja kärlnybildning inom injektionen regionen.

Protocol

1. Förbehandling Tissue Förberedelser Innan du använder detta protokoll måste en redan decellularized vävnaden val. I det här exemplet är fräscha svin och humanprov hjärtsäck decellularized med hypoton och hyperton sköljningar i avjoniserat (DI) vatten och natriumdodecylsulfat (SDS). Närmare bestämt, först tvätta svin hjärtsäck i DI vatten i 30 minuter, rör kontinuerligt i 1% SDS i fosfatbuffrad saltlösning (PBS) i 24 timmar, följt av en 5 timmars DI-vatten skölja…

Discussion

Denna metod gör det möjligt för produktion av biologiskt framställda, injicerbara ställningar för hjärtinfarkt tissue engineering. Även om dessa metoder ursprungligen utvecklade för tillverkning och in vivo test av en hjärtinfarkt matris gel och presenteras här med en perikardiell matris gel, kan detta protokoll anpassas för användning med någon vävnad, förutsatt att vävnaden kan lämpligen decellularized. Decellularization ska utföras och verifieras innan användningen av dessa metoder, före…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna forskning stöds delvis av NIH direktörens Nya Innovator Award Program, en del av NIH färdplanen för medicinsk forskning genom bidrag nummer 1-DP2-OD004309-01. SBS-N. vill tacka NSF för en Graduate Research Fellowship.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Reagents:        
Pepsin   Sigma-Aldrich p6887-1G Lyophilized
Biotin   Thermo Scientific 21217  
Neutravidin-HRP   Thomas Scientific 21130  
Equipment:        
Wiley Mini Mill   Thomas Scientific 3383L10  
Labconco Lyophilizer   Labconco, Inc 7670520  
Surgical supplies:        
Betadine   Purdue Products, L.P. 67618-154-16  
Lactated Ringers Solution   MWI 003966  
KY Jelly   MWI 28658  
Lidocaine, 2%   MWI 17767  
Buprenorphine hydrochloride   Reckitt Benckiser Healthcare (UK) Ltd. 12496-0757-1  
Artificial tear ointment   Fisher NC9860843  
Triple antibiotic ointment   Fisher 19082795  
Isoflurane   MWI 60307-120-25  
Otoscope   MWI 008699  
Stop cock   MWI 006245  
3-0 Vicrile suture   MWI J327H  
5-0 Proline suture   MWI s-1173  
Reverse cutting (RC) needle   Ethicon 8684G  
Microhemostats   Fine Science Tools 13013-14  
Rat tooth microforceps   Fine Science Tools 11084-07  
No. 10 scalpel   Fine Science Tools 10110-01  
Blunt scissors   Fine Science Tools 14108-09  
Sharp, curved scissors   Fine Science Tools 14085-08  
Large, serrated forceps   Fine Science Tools 1106-12  
PE160 suction tubing   BD 427430  
Clippers   MWI 21608  
Skin staples/stapler   Ethicon PRR35  
General supplies:        
Stir plates        
0.1 M HCl        
1 M NaOH        
10x PBS        
1x PBS        
70% Ethanol        
0.1 mL syringes        
10 mL syringe        
Q-tips        
Surgical glue        
Surgical drape        
Towel clamps        
Small hand-held vacuum        

References

  1. Seif-Naraghi, S. B., Salvatore, M. A., Magoffin-Schup, P. J., Hu, D. P., Christman, K. L. Design and characterization of an injectable pericardial matrix gel: A potentially autologous scaffold for cardiac tissue engineering. Tissue Engineering. , (2009).
  2. Freytes, D. O., Martin, J., Velankar, S. S., Lee, A. S., Badylak, S. F. Preparation and rheological characterization of a gel form of the porcine urinary bladder matrix. Biomaterials. 29, 1630-1630 (2008).
  3. Gilbert, T. W., Sellaro, T. L., Badylak, S. F. Decellularization of tissues and organs. Biomaterials. 27, 3675-3675 (2006).
  4. Liao, J., Joyce, E. M., Sacks, M. S. Effects of decellularization on the mechanical and structural properties of the porcine aortic valve leaflet. Biomaterials. 29, 1065-1065 (2008).
  5. Singelyn, J. M., DeQuach, J. A., Seif-Naraghi, S. B., Littlefield, R. B., Schup-Magoffin, P. J., Christman, K. L. Naturally derived myocardial matrix as an injectable scaffold for cardiac tissue engineering. Biomaterials. 30, 5409-5409 (2009).
  6. Christman, K. L., Vardanian, A. J., Fang, Q., Sievers, R. E., Fok, H. H., Lee, R. J. Injectable fibrin scaffold improves cell transplant survival, reduces infarct expansion, and induces neovasculature formation in ischemic myocardium. J Am Coll Cardiol. 44, 654-654 (2004).
  7. Christman, K. L., Fok, H. H., Sievers, R. E., Fang, Q., Lee, R. J. Fibrin glue alone and skeletal myoblasts in a fibrin scaffold preserve cardiac function after myocardial infarction. Tissue Eng. 10, 403-410 (2004).
  8. Huang, N. F., Sievers, R. E., Park, J. S., Fang, Q., Li, S., Lee, R. J. A rodent model of myocardial infarction for testing the efficacy of cells and polymers for myocardial reconstruction. Nat Protoc. (1), 1596-1609 (2006).
  9. Ott, H. C., Matthiesen, T. S., Goh, S. K., Black, L. D., Kren, S. M., Netoff, T. I. Perfusion-decellularized matrix: using nature’s platform to engineer a bioartificial heart. Nat Med. 14, 213-221 (2008).
  10. Badylak, S. F. The extracellular matrix as a biologic scaffold material. Biomaterials. 28, 3587-3593 (2007).
check_url/kr/2109?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Seif-Naraghi, S., Singelyn, J., DeQuach, J., Schup-Magoffin, P., Christman, K. Fabrication of Biologically Derived Injectable Materials for Myocardial Tissue Engineering. J. Vis. Exp. (46), e2109, doi:10.3791/2109 (2010).

View Video