Summary

Intrakraniell Injektion av Adeno-associerad virala vektorer

Published: November 17, 2010
doi:

Summary

Här presenterar vi de intrakraniella injektion av AAV vektorer för fluorescerande märkning av nervceller och Glia i syncentrum.

Abstract

Intrakraniell injektion av virala vektorer konstruerad för att uttrycka en fluorescerande proteinet är en mångsidig märkning teknik för visualisering av specifika undergrupper av celler i olika områden i hjärnan både in vivo och i hjärnan sektioner. Till skillnad från injektion av fluorescerande färger, erbjuder virus märkning inriktning av enskilda celltyper och är billigare och tidskrävande än upprättandet transgen mus linjer. Med den här tekniken är en Adeno-associerad viral (AAV) vektor injiceras intracranially med stereotaxic koordinater, en mikropipett och en automatisk pump för exakt leverans av AAV till önskat område med minimal skada på omgivande vävnad. Injektion parametrar kan skräddarsys för enskilda experiment genom att anpassa djuret ålder vid injektion, injektionen plats, volym injektion, infusionshastighet, AAV serotyp och initiativtagaren körning genuttryck. Beroende på vald förhållanden kan viralt inducerad transgenen uttryck tillåter visualisering av grupper av celler, enskilda celler eller fina cellulära processer, ner till nivån Dendritutskotten. Experimentet visas här skildrar en injektion av dubbel-strängat AAV uttrycker grönt fluorescerande protein för märkning av nervceller och Glia i musens primära syncentrum.

Protocol

1. Virus Hantering och lagring Lämpligt skydd och tekniker hantering bör väljas utifrån biosäkerhetsnivån av viruset som ska användas. Dessa metoder kan hittas i biosäkerhet i mikrobiologiska och biomedicinska laboratorier 5: e upplagan, tillgänglig på CDC webbplats ( http://www.cdc.gov/od/OHS/biosfty/bmbl5/bmbl5toc.htm ). Användningen av AAV vektorer är godkänd för Biosafety Level 1 (BSL-1). För experimentet v…

Discussion

Viralt-medierad gen leverans innebär stora möjligheter för att studera neurologiska processer och behandling av sjukdomar i hjärnan 1,2,3. Den stora mångsidigheten hos denna teknik kan också utnyttjas för att fluorescerande etikett celler för avbildning både in vitro och in vivo 4. Här visar vi ett detaljerat förfarande för transduktion av nervceller och Glia i mus syncentrum med en dubbel-strängat Adeno-föreningen virus som uttrycker förbättrade grönt fluorescera…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har möjliggjorts genom anslag från NIH (EY012977), en karriär Award i biomedicin från Burroughs Wellcome Fund, Whitehall Foundation och Sloan Foundation (AKM).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Stoelting Mouse and Neonatal Rat Adaptor   Stoelting 51625 Regular stereotax for securing animals for surgery may be substituted
Extra Fine Bonn Scissors, 8.5cm, straight tip, cutting edge 13mm   Fine Science Tools 14084-08  
Eye Dressing Forceps, 10cm, tip width 0.5mm, curved   Fine Science Tools 11152-10  
Dumont #5/45 Forceps- Dumoxel Standard Tip, 11cm, angled   Fine Science Tools 11251-35 Extra-fine tipped forceps for performing craniotomy
Standard Pattern Forceps, straight, 2.5mmx1.35mmtip, 12cm   Fine Science Tools 11000-12  
Microtorque Control Box and Tech2000 handpiece   Ram Products, Inc. TECH2000ON/OFF Dental drill
Micro Drill Stainless Steel Burrs 1.4mm tip diameter   Fine Science Tools 19008-14  
Wiretrol micropipettes, to deliver 1-5 Ul   VWR International/ Drummond 5-000-1001 or 53480-287  
Mineral oil   VWR International 29447-338  
Manual Micromanipulator and Tilting Base (right-handed)   World Precision Instruments, Inc. M3301-M3-R Used for determining stereotaxic co-ordinates
UltraMicroPump (UMP3) (one) with SYS-Micro4 Controller   World Precision Instruments, Inc. UMP3-1  
Sutures   VWR International 95056-952  
P-97 Flaming/Brown Micropipette Puller   Sutter Instruments P-97  
Tobradex       Available from your institution’s veterinary services

References

  1. Kaplitt, M. G., Leone, P., Samulski, R. J., Xiao, X., Pfaff, D. W., O’Malley, K. L., During, M. J. Long-term gene expression and phenotypic correction using adeno-associated virus vectors in the mammalian brain. Nat Genet. 8, 148-154 (1994).
  2. Harding, T. C., Dickinson, P. J., Roberts, B. N., Yendluri, S., Gonzalez-Edick, M., Lecouteur, R. A., Jooss, K. U. Enhanced gene transfer efficiency in the murine striatum and an orthotopic glioblastoma tumor model, using AAV-7- and AAV-8-pseudotyped vectors. Hum Gene Ther. 17, 807-820 (2006).
  3. Lo, W. D., Qu, G., Sferra, T. J., Clark, R., Chen, R., Johnson, P. R. Adeno-associated virus-mediated gene transfer to the brain: duration and modulation of expression. Hum Gene Ther. 10, 201-213 (1999).
  4. Lowery, R. L., Zhang, Y., Kelly, E. A., Lamantia, C. E., Harvey, B. K., Majewska, A. K. Rapid long-term labeling of cells in the developing and adult rodent visual cortex using double-stranded adeno-associated viral vectors. Dev Neurobiol. 69, 674-688 (2009).
check_url/kr/2140?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lowery, R. L., Majewska, A. K. Intracranial Injection of Adeno-associated Viral Vectors. J. Vis. Exp. (45), e2140, doi:10.3791/2140 (2010).

View Video