Summary

Оптические Перерезка Нервные: Модель взрослых апоптоза нейронов в центральной нервной системе

Published: May 12, 2011
doi:

Summary

Оптические перерезки нерва широко используется модель взрослого травмы ЦНС. Девяносто процентов ганглиозных клеток сетчатки (РГК), чьи аксоны полностью перерезана (axotomy) умирают в течение 14 дней после axotomy. Эта модель легко поддается манипуляции и экспериментальных высокой воспроизводимостью.

Abstract

Ганглиозных клеток сетчатки (РГК) в ЦНС нейроны, которые выводят визуальную информацию от сетчатки в мозг через зрительный нерв. Зрительного нерва могут быть доступны в орбите глаза и полностью перерезана (axotomized), резки аксоны весь РГК населения. Оптические перерезки нерва воспроизводимые модели апоптоза нейронов гибель клеток во взрослом ЦНС 1-4. Эта модель особенно привлекательна тем, стекловидное камеры глаза действует как капсулы для доставки лекарств к сетчатке, что позволяет с помощью экспериментальных манипуляций внутриглазных инъекций. Диффузии химических веществ через стекловидное жидкости гарантирует, что они действуют на весь РГК населения. Более того, РГК могут быть выборочно трансфекции, применяя короткий вмешательства РНК (siRNAs), плазмиды или вирусные векторы, чтобы сократить конце зрительного нерва 5-7 или инъекционные векторы в свою цель, верхний бугорок 8. Это позволяет исследователям изучать механизмы апоптоза в нужном нейронов населения, не смешивая воздействия на другие нейроны свидетеля или окружающей глии. Дополнительным преимуществом является легкость и точность, с которой выживаемость клеток может быть определена количественно после травмы. Сетчатка представляет собой плоскую, слоистых тканей и РГК локализованы в самый внутренний слой, слой ганглиозных клеток. Выживание РГК могут быть отслежены с течением времени, применяя флуоресцентные трассирующими (3% Fluorogold), чтобы сократить конце зрительного нерва во время axotomy, или путем введения трассирующими в верхний бугорок (РГК цель) за неделю до axotomy. Трассировщик ретроградно транспортируются, маркировка всей РГК населения. Потому что слой ганглиозных ячейка монослоя (одну ячейку толщиной), РГК плотности может быть определена количественно в квартире монтаж ткани, без необходимости стереологии. Оптические перерезки нерва приводит к апоптозу, 90% раненых РГК в течение 14 дней postaxotomy 9-11. RGC апоптоз имеет характерное время курс которой гибель клеток задерживается 3-4 postaxotomy дней, после чего клетки быстро вырождается. Это обеспечивает временное окно для экспериментальной манипуляции направлены против путей, участвующих в апоптозе.

Protocol

1. Хирургическая техника Эксперименты должны проводиться с использованием асептических условиях и после использования животных протоколов вашего конкретного учреждения. Инструменты и материалы (растворы, испытание веществ, трейсеры, иглы и т.д.) вступления в контакт с живой тка?…

Discussion

Есть много вариантов этой хирургической процедуры, и несколько из шагов в этом протоколе не нужны. Нужно только отказаться от мышц, которые залегают зрительный нерв для того, чтобы получить доступ к нерву. Тем не менее, это приводит к очень ограниченным рабочим пространством вокруг нер?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

PDK поддерживается операционной CIHR гранта (СС 86523)

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Stereotaxic Frame   Stoelting, Kopf, WPI    
Rat Gas Mask   Stoelting, Kopf, WPI    
Anesthesia System   VetEquip 901806  
Isoflurane (PrAErrane)   Baxter Corp DIN 02225875  
Surgical Microscope   WPI, Zeiss, Leica    
Fluorogold -(Hydroxystilbamidine bis(methanesulfonate)   Sigma 39286  
Gelfoam   Pharmacia & Upjohn    
Tears Naturale P.M.   Alcon    
Proviodine   Medline MDS093945H  
Vannas spring scissors   Fine Science Tools 15000-00  
Fine tip Dumont forceps   Fine Science Tools 11252-00  
Micro surgical hook   Fine Science Tools 10062-12  
Eye dressing serrated forceps   Fine Science Tools 11152-10  
Dumont #7b sharp curved serrated forceps   Fine Science Tools 11270-20  
Cauterizer   Fine Science Tools 18010-00  

References

  1. Bahr, M. Live or let die – retinal ganglion cell death and survival during development and in the lesioned adult CNS. Trends Neurosci. 23, 483-4890 (2000).
  2. Isenmann, S., Kretz, A., Cellerino, A. Molecular determinants of retinal ganglion cell development, survival, and regeneration. Prog Retin Eye Res. 22, 483-543 (2003).
  3. Koeberle, P. D., Bahr, M. Growth and guidance cues for regenerating axons: where have they gone. J Neurobiol. 59, 162-180 (2004).
  4. Weishaupt, J. H., Bahr, M. Degeneration of axotomized retinal ganglion cells as a model for neuronal apoptosis in the central nervous system – molecular death and survival pathways. Restor. Neurol. Neurosci. 19, 1-2 (2001).
  5. Valenzuela, G. a. r. c. i. a., E, S. C. S. h. a. r. m. a. Rescue of retinal ganglion cells from axotomy-induced apoptosis through TRK oncogene transfer. Neuroreport. 9, 3165-3170 (1998).
  6. Kugler, S. Transduction of axotomized retinal ganglion cells by adenoviral vector administration at the optic nerve stump: an in vivo model system for the inhibition of neuronal apoptotic cell death. Gene Ther. 6, 1759-1767 (1999).
  7. Lingor, P. Down-regulation of apoptosis mediators by RNAi inhibits axotomy-induced retinal ganglion cell death in vivo. Brain. 128, 550-558 (2005).
  8. Koeberle, P. D., Gauldie, J., Ball, A. K. Effects of adenoviral-mediated gene transfer of interleukin-10, interleukin-4, and transforming growth factor-beta on the survival of axotomized retinal ganglion cells. 신경과학. 125, 903-920 (2004).
  9. Berkelaar, M. Axotomy results in delayed death and apoptosis of retinal ganglion cells in adult rats. J Neurosci. 14, 4368-4374 (1994).
  10. Villegas-Perez, M. P. Influences of peripheral nerve grafts on the survival and regrowth of axotomized retinal ganglion cells in adult rats. J Neurosci. 8, 265-280 (1988).
  11. Villegas-Perez, M. P. Rapid and protracted phases of retinal ganglion cell loss follow axotomy in the optic nerve of adult rats. J Neurobiol. 24, 23-36 (1993).
  12. Quigley, H. A. Retinal ganglion cell death in experimental glaucoma and after axotomy occurs by apoptosis. Invest Ophthalmol Vis Sci. 36, 774-786 (1995).
  13. Thanos, S. Specific transcellular carbocyanine-labelling of rat retinal microglia during injury-induced neuronal degeneration. Neurosci Lett. 127, 108-1012 (1991).
  14. Thanos, S. Specific transcellular staining of microglia in the adult rat after traumatic degeneration of carbocyanine-filled retinal ganglion cells. Exp Eye Res. 55, 101-117 (1992).
check_url/kr/2241?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Magharious, M. M., D’Onofrio, P. M., Koeberle, P. D. Optic Nerve Transection: A Model of Adult Neuron Apoptosis in the Central Nervous System. J. Vis. Exp. (51), e2241, doi:10.3791/2241 (2011).

View Video