Summary

Mitochondriale Isolatie van skeletspieren

Published: March 30, 2011
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft een procedure om de ademhaling van mitochondriën geïsoleerd van skeletspieren studie. Deze methode werd aangepast van Scorrano<em> Et al..</em> (2007). Het mitochondriale isolatie procedure vereist ongeveer 2 uur. De mitochondriale ademhaling kan worden voltooid in ongeveer 1 uur.

Abstract

Mitochondriën zijn organellen beheersen het leven en de dood van de cel. Ze nemen deel aan de belangrijkste metabolische reacties, synthetiseren het grootste deel van de ATP, en regelen een aantal signaaltransductiecascades 2,3. Vroegere en huidige onderzoekers hebben geïsoleerd mitochondriën van ratten en muizen weefsels, zoals lever, hersenen en hart 4,5. In de afgelopen jaren, hebben veel onderzoekers zich op het bestuderen van de mitochondriale functie van de skeletspieren.

Hier beschrijven we een methode die wij met succes hebben gebruikt voor de isolatie van de mitochondriën van skeletspieren 6. Onze procedure schrijft voor dat alle buffers en reagentia zijn vers gemaakt en moet ongeveer 250-500 mg van de skeletspieren. We bestudeerden mitochondria geïsoleerd van rat en muis gastrocnemius en diafragma, en de rat extraoculaire spieren. Mitochondriale eiwit concentratie wordt gemeten met de Bradford assay. Het is belangrijk dat mitochondriale monsters worden bewaard ijskoud tijdens de voorbereiding en dat de functionele studies worden uitgevoerd binnen een relatief korte tijd (~ 1 uur). Mitochondriale ademhaling wordt gemeten met behulp van polarografie met een Clark-type elektrode (Oxygraph systeem) bij 37 ° C 7. Ijking van de zuurstof elektrode is een belangrijke stap in dit protocol en moet dagelijks worden uitgevoerd. Geïsoleerde mitochondria (150 ug) worden toegevoegd aan 0,5 ml van de experimentele buffer (EB). Staat twee ademhaling begint met toevoeging van glutamaat (5mm) en malaat (2,5 mm). Vervolgens wordt adenosine difosfaat (ADP) (150 uM) toegevoegd aan de staat 3 te starten. Oligomycin (1 uM), een ATPase synthase blocker, wordt gebruikt om de toestand 4 schatten. Ten slotte carbonyl cyanide p-[trifluormethoxy]-fenyl-hydrazon (FCCP, 0,2 uM) wordt toegevoegd aan 5 measurestate, of afgekoppeld ademhaling 6. De respiratoire controle ratio (RCR), de verhouding van toestand 3 naar toestand 4, wordt berekend na elk experiment. Een RCR ≥ 4 wordt beschouwd als bewijs van een levensvatbare mitochondria voorbereiding.

Kortom, presenteren we een methode voor de isolatie van levensvatbare mitochondria van de skeletspieren die kunnen worden gebruikt in de biochemische (bijvoorbeeld enzymactiviteit, immunodetectie, proteomics) en functionele studies (mitochondriale ademhaling).

Protocol

1. Voorbereiding van de Buffers Zet de centrifuge 5804R en ingesteld op 4 ° C. Zet Isotemp 3006D waterbad en ingesteld op 37 ° C. Bereid de volgende oplossingen voor spier isolatie: PBS: Los fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS) tabletten in gedestilleerd water (5 tabletten / liter). Meng goed. PBS plus 10 mM EDTA: te bereiden een 100 ml oplossing, 2 ml van 500 mM EDTA toe te voegen aan 98 ml PBS. 8X Mitochondriën buffer: 10,28 g sucrose voor een uiteindelijke concen…

Discussion

We presenteren een protocol om levensvatbare mitochondria isoleren van skeletspieren. Wanneer de opbrengst een probleem is, kan het protocol worden gewijzigd door het incuberen van de geïsoleerde spier in 5 ml PBS/10mM EDTA/0.01% trypsine gedurende 30 minuten in het ijs. Te garanderen een volledige spier spijsvertering met trypsine, de spier volledig moet worden gehakt. Nadat de 30-minuten incubatie, moet de PBS/10mM EDTA/0.01% trypsine-oplossing volledig worden vervangen door 3 ml van isolatie buffer 1 (IB1). Daarnaas…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door een subsidie ​​van het National Eye Institute (R01 EY12998) naar FH Andrade.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
95% CO2 / 5% O2 mix   Local gas company    
Adenosine 5′-diphosphate sodium salt   Sigma A2754  
Blue Rizla Paper   Hansatech 890101  
Bradford protein assay   Bio-Rad 500-0006  
Carbonylcyanide p-trifluoromethoxyphenylhydrazone (FCCP)   Sigma C2920  
Centrifuge 5804R   Eppendorf    
Compressed nitrogen   Local gas company    
D-mannitol   Sigma M9647  
Ethlyene-glycol-bis-tetraacetic acid (EGTA)   Sigma E3889  
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)   Bio-Rad 161-0728  
Free fatty acid bovine serum albumin   Sigma A8806  
Glutamic acid   Sigma G5889  
HEPES sodium salt   Sigma H7006  
Isotemp 3006D   Fisher Scientific    
Magnesium chloride   Sigma M8266  
Male Sprague Dawley Rats   Harlan 300-500g  
Malic acid   Sigma M9138  
Minifuge   ISC Bioexpress C1301P  
Oligomycin   Sigma O4876  
Oxygen electrode disc   Hansatech S1  
Oxygraph   Hansatech    
Oxygraph Plus V1.01 Software   Hansatech    
pH-meter   Mettler Toledo 1225506149  
Phosphate-buffered saline (PBS)   Sigma P4417  
Potassium chloride   Sigma P3911  
Potassium phosphate   Sigma P8416  
Potter-Elvehjem homogenizers   Fisher 08-414-14A  
PTFE (0.0125mm × 25mm) membrane   Hansatech S4  
SKIL 3320 drill press   Hardware store    
Sucrose   Sigma S5016  

References

  1. Frezza, C., Cipolat, S., Scorrano, L. Organelle isolation: functional mitochondria from mouse liver, muscle and cultured fibroblasts. Nat Protoc. 2, 287-295 (2007).
  2. Duchen, M. R. Roles of mitochondria in health and disease. Diabetes. 53, S96-S102 (2004).
  3. Johannsen, D. L., Ravussin, E. The role of mitochondria in health and disease. Curr Opin Pharmacol. , (2009).
  4. Pallotti, F., Lenaz, G. Isolation and subfractionation of mitochondria from animal cells and tissue culture lines. Methods Cell Biol. 80, 3-44 (2007).
  5. Pallotti, F., Lenaz, G. Isolation and subfractionation of mitochondria from animal cells and tissue culture lines. Methods Cell Biol. 65, 1-35 (2001).
  6. Gamboa, J. L., Andrade, F. H. Mitochondrial content and distribution changes specific to mouse diaphragm after chronic normobaric hypoxia. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. , (2009).
  7. Patel, S. P., Gamboa, J. L., McMullen, C. A., Rabchevsky, A., Andrade, F. H. Lower respiratory capacity in extraocular muscle mitochondria: evidence for intrinsic differences in mitochondrial composition and function. Invest Ophthalmol Vis Sci. 50, 180-186 (2009).
  8. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 72, 248-254 (1976).
check_url/kr/2452?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Garcia-Cazarin, M. L., Snider, N. N., Andrade, F. H. Mitochondrial Isolation from Skeletal Muscle. J. Vis. Exp. (49), e2452, doi:10.3791/2452 (2011).

View Video