Summary

צורה הדמיה תא שינוי חיים תסיסנית עוברים

Published: March 30, 2011
doi:

Summary

התפתחות מוקדמת של זבוב הפירות, דרוזופילה melanogaster, מאופיינת במספר שינויים בצורת התא כי הם גם מתאים גישות הדמיה. מאמר זה יתאר כלים בסיסיים ושיטות הדרושים הדמיה confocal חיים של עוברים תסיסנית, יתמקד בשינוי צורת התא הנקרא cellularization.

Abstract

העובר המתפתח תסיסנית melanogaster עובר מספר שינויים בצורת התא כי הם נוחים מאוד לחיות הדמיה confocal. צורת התא שינויים לטוס מקבילים לאלה של יצורים עילאיים, והם כונן המורפוגנזה רקמות. לכן, במקרים רבים, המחקר שלהם יש השלכות ישירות להבנת מחלות אנושיות (טבלה 1) 1-5. בסולם המשנה הסלולר, אלה שינויים בצורת התא הם תוצר של פעילויות, החל ביטוי גנים על התמרה האות, קוטביות התא, שיפוץ cytoskeletal וסחר הממברנה. לכן, את העובר תסיסנית מספק לא רק את ההקשר כדי להעריך שינויים בצורת התא ככל שהם מתייחסים המורפוגנזה רקמות, אלא גם מציע סביבת פיזיולוגיים לחלוטין ללמוד את המשנה הסלולר פעילות תאים לעצב.

הפרוטוקול המתואר כאן נועד תמונה תאים מסוים לשנות צורה נקרא cellularization. Cellularization הוא תהליך של צמיחה פלזמה דרמטי קרום, וזה בסופו של דבר ממיר את העובר סינסיציאלי לתוך blastoderm הסלולר. כלומר, בכל שלבי הביניים של מחזור mitotic 14, הממברנה הפלסמטית בו זמנית invaginates סביב זה של גרעינים 6000 ~ מעוגן cortically ליצור גיליון של תאים אפיתל העיקרי. בניגוד להצעות קודמות, cellularization אינו מונע על ידי contractility שרירן-2 6, אבל היא מונעת בעיקר על ידי במקום exocytosis של קרום מחנויות פנימי 7. לפיכך, cellularization היא מערכת מצוינת ללימוד סחר קרום במהלך שינויים בצורת התא הדורשים הממברנה הפלסמטית invagination או הרחבה, כגון cytokinesis או רוחבי, אבובית (T-אבובית) המורפוגנזה בשריר.

שים לב שזה פרוטוקול מוחל בקלות הדמיה של אחרים שינויים בצורת התא בעובר לעוף, רק דורש הסתגלות קלה כגון שינוי בשלב של איסוף העובר, או באמצעות "דבק העובר" על מנת לטעון את העובר בכיוון טבלה ספציפיים ( 1) 8-19. בכל מקרה, זרימת העבודה הוא בעצם אותו דבר (איור 1). שיטות תקן שיבוט תסיסנית transgenesis משמשים להכנת מניות לעוף יציב המבטאים חלבון של עניין, התמזגו חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) או על גירסאותיה, וזבובים אלה מהווים מקור מתחדש של עוברים. לחלופין, חלבוני ניאון / בדיקות מוצגים ישירות באמצעות הזרקת מיקרו פשוט טכניקות 9-10 לעוברי לעוף. ואז, תלוי במקרה התפתחותיים שינוי צורת התא להיות צילמו, עוברים נאספים מבוים על ידי המורפולוגיה על מיקרוסקופ לנתח, ואת מיקומו ולבסוף ועלה הדמיה זמן לשגות על מיקרוסקופ confocal.

Protocol

1. להרכיב אוסף כוסות עובריים חותכים את החלק התחתון של כוס 100 מ"ל Tri-תירס עם סכין, מה שהופך את קצה כפי חלקה ככל האפשר. כוסות קל יותר להתמודד אם גם לקצץ את שלוש פינות הנחה של העליון, אם כי זה לא הכרחי. <li style=";text-align:right;directi…

Discussion

פרוטוקול המתואר במסמך זה יאפשר הדמיה לחיות, confocal של מספר שינויים בצורת התא בעובר המתפתח לעוף. מניות ה-GFP הדמיה יכול להיות מוכן על ידי מעבדה הפרט (טבלה 2), אך מניות רבות כאלה זמינים גם בפומבי ממרכזי כגון Bloomington תסיסנית במלאי מרכז באוניברסיטת אינדיאנה ( <a href="http://flystocks….

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

בהכרת תודה אנו מודים אריק Wieschaus, שסיפק את הבסיס שעליו בפרוטוקול זה פותחה. העבודה שלנו היא נתמכת על ידי ורנה & Marrs מקלין המחלקה לביוכימיה וביולוגיה מולקולרית פרס Start-up, ביילור לרפואה.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Slides   Fisherbrand/Fisher Scientific 12-550-343  
Cover slips 25×25   Fisher Scientific (Corning #2865-25) 1 2-524C  
Squirt bottles (H2O)   Fisher Scientific 02-897-11  
50 ml Falcon tubes   Fisher Scientific (BD# 352070) 14-432-22  
Bulbs for small pipets, 1 mL   Fisherbrand/Fisher Scientific 03-448-21  
Scintillation vials with caps   VWR (Wheaton #986546) 66021-533  
Tri-Corn Beakers, 100 mL   Electron Microscopy Sciences 60970  
BD Falcon Petri dish 60x15mm   Fisher Scientific (BD# 351007) 08757 100B  
BD Falcon Cell strainer   Fisher Scientific (BD#352350) 08-771-2  
Yellow pipet tips   Ranin L200  
Stainless steel mesh, 304, 12×24   Small Parts CX-0150-F-01  
Glass 5¾ inch Pasteur Pipets   Fisherbrand/Fisher Scientific 13-678-20B  
P4 Filter paper   Fisherbrand/Fisher Scientific 09-803-6F  
Rubber bands   Office Max A620645  
Scotch double-sided tape, ½ inch   Office Max A8137DM-2  
Robert Simmons Expression paint brushes E85 round #2   Jerry’s Artarama 56460  
Dumont #5 Forceps High Precision Inox   Electron Microscopy Services 72701-DZ  
Razor blades   VWR (BD #214010) 55411-050  
Halocarbon Oil 27   Sigma-Aldrich H 8773  
Heptane   Fisher Chemical/Fisher Scientific H360-1  
BD Bacto Agar   VWR (BD# 214010) 90000-760  
Sucrose   Sigma-Aldrich S7903  
p-Hydroxybenzoic acid   Sigma-Aldrich H5501  
Red Star Active Dry Yeast   LeSaffre 15700  
Paper towels, C-fold   Kleenex    
Heavy duty aluminum foil   Reynolds Wrap    
Bleach   Austin’s A-1 Commercial    
100% Apple juice   Ocean Spray or Tree Top    

References

  1. Sagona, A. P., Stenmark, H. Cytokinesis and cancer. FEBS Lett. 584, 2652-2661 (2010).
  2. Baum, B., Settleman, J., Quinlan, M. P. Transitions between epithelial and mesenchymal states in development and disease. Semin Cell Dev Biol. 19, 294-308 (2008).
  3. Kibar, Z., Capra, V., Gros, P. Toward understanding the genetic basis of neural tube defects. Clin Genet. 71, 295-310 (2007).
  4. Jazwinska, A., Ribeiro, C., Affolter, M. Epithelial tube morphogenesis during Drosophila tracheal development requires Piopio, a luminal ZP protein. Nat Cell Biol. 5, 895-901 (2003).
  5. Martin, P., Parkhurst, S. M. Parallels between tissue repair and embryo morphogenesis. Development. 131, 3021-3034 (2004).
  6. Royou, A., Field, C., Sisson, J. C., Sullivan, W., Karess, R. Reassessing the role and dynamics of nonmuscle myosin II during furrow formation in early Drosophila embryos. Mol Biol Cell. 15, 838-850 (2004).
  7. Lecuit, T., Wieschaus, E. Polarized insertion of new membrane from a cytoplasmic reservoir during cleavage of the Drosophila embryo. J Cell Biol. 150, 849-860 (2000).
  8. Mavrakis, M., Rikhy, R., Lippincott-Schwartz, J. Plasma membrane polarity and compartmentalization are established before cellularization in the fly embryo. Dev Cell. 16, 93-104 (2009).
  9. Cao, J., Crest, J., Fasulo, B., Sullivan, W. Cortical Actin Dynamics Facilitate Early-Stage Centrosome Separation. Curr Biol. , (2010).
  10. Cao, J., Albertson, R., Riggs, B., Field, C. M., Sullivan, W. N. u. f. a Rab11 effector, maintains cytokinetic furrow integrity by promoting local actin polymerization. J Cell Biol. 182, 301-313 (2008).
  11. Sokac, A. M., Wieschaus, E. Local actin-dependent endocytosis is zygotically controlled to initiate Drosophila cellularization. Dev Cell. 14, 775-786 (2008).
  12. Fox, D. T., Peifer, M. Abelson kinase (Abl) and RhoGEF2 regulate actin organization during cell constriction in Drosophila. Development. 134, 567-578 (2007).
  13. Martin, A. C., Kaschube, M., Wieschaus, E. F. Pulsed contractions of an actin-myosin network drive apical constriction. Nature. 457, 495-499 (2009).
  14. Bertet, C., Sulak, L., Lecuit, T. Myosin-dependent junction remodelling controls planar cell intercalation and axis elongation. Nature. 429, 667-671 (2004).
  15. Blankenship, J. T., Backovic, S. T., Sanny, J. S., Weitz, O., Zallen, J. A. Multicellular rosette formation links planar cell polarity to tissue morphogenesis. Dev Cell. 11, 459-470 (2006).
  16. Caussinus, E., Colombelli, J., Affolter, M. Tip-cell migration controls stalk-cell intercalation during Drosophila tracheal tube elongation. Curr Biol. 18, 1727-1734 (2008).
  17. Gervais, L., Casanova, J. In vivo coupling of cell elongation and lumen formation in a single cell. Curr Biol. 20, 359-366 (2010).
  18. Gorfinkiel, N., Blanchard, G. B., Adams, R. J., Arias, M. a. r. t. i. n. e. z., A, . Mechanical control of global cell behaviour during dorsal closure in Drosophila. Development. 136, 1889-1898 (2009).
  19. Solon, J., Kaya-Copur, A., Colombelli, J., Brunner, D. Pulsed forces timed by a ratchet-like mechanism drive directed tissue movement during dorsal closure. Cell. 137, 1331-1342 (2009).
  20. Bownes, M. A photographic study of development in the living embryo of Drosophila melanogaster. J Embryol Exp Morphol. 33, 789-801 (1975).
  21. Sokac, A. M., Wieschaus, E. Zygotically controlled F-actin establishes cortical compartments to stabilize furrows during Drosophila cellularization. J Cell Sci. 121, 1815-1824 (2008).
  22. Morin, X., Daneman, R., Zavortink, M., Chia, W. A protein trap strategy to detect GFP-tagged proteins expressed from their endogenous loci in Drosophila. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 15050-15055 (2001).
  23. Oda, H., Tsukita, S. Real-time imaging of cell-cell adherens junctions reveals that Drosophila mesoderm invagination begins with two phases of apical constriction of cells. J Cell Sci. 114, 493-501 (2001).
  24. Kiehart, D. P., Galbraith, C. G., Edwards, K. A., Rickoll, W. L., Montague, R. A. Multiple forces contribute to cell sheet morphogenesis for dorsal closure in Drosophila. J Cell Biol. 149, 471-490 (2000).
check_url/kr/2503?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Figard, L., Sokac, A. M. Imaging Cell Shape Change in Living Drosophila Embryos. J. Vis. Exp. (49), e2503, doi:10.3791/2503 (2011).

View Video