Summary

La moelle épinière électrophysiologie II: fabrication des électrodes extracellulaires d'aspiration

Published: February 20, 2011
doi:

Summary

Une démonstration de la fabrication et l'utilisation d'une électrode extracellulaire aspiration utilisés pour mesurer des enregistrements électrophysiologiques des cordons de rongeur néonatal épinière<em> In vitro</em

Abstract

Développement des circuits de neurones et la locomotion peut être étudiée à l'aide de la moelle épinière des rongeurs néonatale centrale générateur de pattern (CPG) de comportement. Nous démontrons une méthode pour fabriquer des électrodes d'aspiration qui sont utilisés pour examiner l'activité CPG, ou de la locomotion fictive, dans les cordons de rongeurs disséqué épinière. Les cordons de rongeurs épinière sont placés dans le liquide céphalorachidien artificiel et les racines ventrales sont entraînés dans l'électrode d'aspiration. L'électrode est construit en modifiant une électrode d'aspiration disponible commercialement. Un fil plus lourd argent est utilisé au lieu du fil standard donné par l'électrode disponibles commercialement. La pointe de verre sur l'électrode commercial est remplacé par un embout en plastique pour une durabilité accrue. Nous préparons la main électrodes dessinés et fabriqués à partir d'électrodes spécifiques tailles de tubes, ce qui permet la cohérence et la reproductibilité. Les données sont recueillies au moyen d'un amplificateur et un logiciel d'acquisition neurogram. Les enregistrements sont effectués sur une table de l'air intérieur d'une cage de Faraday pour éviter les interférences électriques et mécaniques, respectivement.

Protocol

Enregistrements électrophysiologiques de la moelle épinière isolée peut révéler des changements génétiques et développementales de neurones de circuits 1. Nous avons précédemment démontré une méthode de disséquer les cordons de souris néonatales vertébrale 2. Nous présentons ici une méthode pour préparer les électrodes d'aspiration utile dans l'enregistrement de locomotion fictive dans les régions isolées de la moelle épinière 3. <p class="jove_conten…

Discussion

Développement du système nerveux peut être étudiée en utilisant des cordons rongeurs isolés épinière. En présence de neurotransmetteurs, la locomotion fictive peut être généré à partir de la moelle épinière dans la forme de motifs activité électrique 1,3. Ces bouffées rythmiques sont produites à 0,2 à 0,5 Hz et sont modelés en alternances gauche-droite et fléchisseurs-extenseurs. A différents stades de développement, la robustesse et les modèles de cette activité varie 1.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Samuel L. Pfaff est un professeur dans les laboratoires de l'expression génique au Salk Institute for Biological Studies et un chercheur à l'Institut médical Howard Hughes. Ce travail a été soutenu par la Christopher Reeve et Dana Foundation. Joe Belcovson, Kent et Mike Sullivan Schnoeker de Ressources Multimédia à l'Institut Salk a fourni une aide à la photographie et l'édition.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
PTFE Sub Lite Wall Tubing (Small tubing)   Zeus 36AWG 0.005”ID x 0.003” Wall (Small Parts) Also available in 0.003” to 0.006”
Large tubing (0.86mm (0.34”))   Clay Adams Brand Intramedic Becton Dickinson and Company 427420 0.86mm (0.34”) O.D. 1.27mm (.050”)
Electrode Barrel   A-M Systems 573000  
Adhesive   JB Weld    
Adhesive: Silicone caulk        
Solder and soldering iron        
Bleach        
Xylene        
Silver wire: 0.010”   A-M Systems    
Insect pins: Austerlitz 0.1mm   Fine Science Tools 26002-10  
Magnetic Stand   Narishige GJ-8  
Micromanipulator   Narishige MN 151  
Miniboard (Headstage)   Grass Industries F-15EB/B1  
Polyview Adaptor Unit   Grass Industries PVA 8  
Bipolar Portable Physiodata Amplifier System   Grass Industries 15LT  
ANALOG TO DIGITAL CARD   National Instruments 6035E  
Air Table; Vibraplane   Kinetic Systems    

References

  1. Gallarda, B. W., Sharpee, T. O., Pfaff, S. L., Alaynick, W. A. Defining rhythmic locomotor burst patterns using a continuous wavelet transform. Ann N Y Acad Sci. 1198, 133-139 (2010).
  2. Meyer, A., Gallarda, B. W., Pfaff, S., Alaynick, W. Spinal cord electrophysiology. J Vis Exp. , (2010).
  3. Gallarda, B. W. Segregation of axial motor and sensory pathways via heterotypic trans-axonal signaling. Science. 320, 233-236 (2008).
  4. Landmesser, L. The development of motor projection patterns in the chick hind limb. J Physiol. 284, 391-414 (1978).
  5. Myers, C. P. Cholinergic input is required during embryonic development to mediate proper assembly of spinal locomotor circuits. Neuron. 46, 37-49 (2005).
  6. Chanin, M. The determination of chloride by use of the silver-silver chloride electrode. Science. 119, 323-324 (1954).
  7. Goulding, M. Circuits controlling vertebrate locomotion: moving in a new direction. Nat Rev Neurosci. 10, 507-518 (2009).
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Cite This Article
Garudadri, S., Gallarda, B., Pfaff, S., Alaynick, W. Spinal Cord Electrophysiology II: Extracellular Suction Electrode Fabrication. J. Vis. Exp. (48), e2580, doi:10.3791/2580 (2011).

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