Summary

Verwerping van Fluorescentie Achtergrond in Resonance en spontane Raman Microspectroscopie

Published: May 18, 2011
doi:

Summary

We bespreken de bouw en exploitatie van een complex niet-lineaire optische systeem dat ultrasnelle all-optisch schakelen gebruikt om te isoleren Raman van fluorescentie-signalen. Met behulp van dit systeem zijn wij in staat om succesvol scheiden Raman en fluorescentie-signalen gebruik te maken van puls energie en de gemiddelde krachten die blijven biologisch veilig.

Abstract

Raman spectroscopie wordt vaak geplaagd door een sterke fluorescerende achtergrond, in het bijzonder voor biologische monsters. Als een monster wordt opgewekt met een trein van ultrasnelle pulsen, een systeem dat tijdelijk kan spectraal aparte overlappende signalen op een picoseconde tijdschaal kan isoleren tijdig aankomen Raman verstrooide licht van de late aankomst fluorescentie licht. Hier bespreken we de bouw en exploitatie van een complex niet-lineaire optische systeem dat alle-optisch schakelen gebruikt in de vorm van een low-power optische Kerr gate te isoleren Raman en fluorescentie-signalen. Een enkele 808 nm laser met 2,4 W van de gemiddelde vermogen en 80 MHz herhalingsfrequentie is gesplitst, met ongeveer 200 mW van 808 nm licht wordt omgezet tot <5 mW van 404 nm licht naar het monster te Raman verstrooiing te wekken. De resterende onbekeerde 808 nm licht wordt vervolgens verstuurd naar een niet-lineaire medium waar het fungeert als de pomp voor de all-optische sluiter. De sluiter opent en sluit in 800 fs met een maximale efficiëntie van ongeveer 5%. Met behulp van dit systeem zijn wij in staat om succesvol Raman en fluorescentie-signalen gescheiden op een 80 MHz herhalingsfrequentie met behulp van pulse energieën en krachten die de gemiddelde blijven biologisch veilig. Omdat het systeem geen extra capaciteit in termen van optische macht heeft, hebben we een aantal detail ontwerpen en de afstemming overwegingen die helpen bij het maximaliseren van de productiviteit van het systeem. We bespreken ook ons ​​protocol voor het verkrijgen van de ruimtelijke en temporele overlap van het signaal en de pomp balken in het Kerr medium, evenals een gedetailleerd protocol voor de spectrale acquisitie. Tot slot melden wij een enkele representatieve resultaten van Raman-spectra verkregen in de aanwezigheid van sterke fluorescentie met behulp van onze tijd-gating systeem.

Protocol

1. Enige zorg moeten worden genomen in de voorbereiding en het plaatsen van een Raman monster in dit systeem. Omdat het systeem meestal maakt gebruik van een zeer hoge numerieke apertuur doelstellingen met zeer korte werkafstanden worden de monsters die op een dekglaasje aan. Biologische monsters zijn meestal geplaatst op een nummer een dikte van dekglaasje gemonteerd in een Attofluor cel kamer (Invitrogen, Carlsbad, CA). Vloeibare monsters, met name die giftig voor de mens, worden geplaatst in een …

Discussion

Het gebied van biomedische Raman spectroscopie heeft gezien toenemende belangstelling in de afgelopen jaren als gevolg van de bewezen potentieel voor het oplossen van een aantal moeilijke uitdagingen in de biologische diagnostiek. Bijvoorbeeld, hebben Raman spectra is aangetoond dat diagnostische waarde hebben in de opsporing 3, 4, 5, 6. Raman spectroscopie is ook gebruikt bij bacteriële kwantificatie 7, 8 en bacteriële drug reactie 9. Het heeft ook te vinden toepassing in een breed sc…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gefinancierd door NSF award DBI 0852891. Een deel van dit werk werd ook gefinancierd door het Centrum voor Biofotonica Wetenschap en Technologie, een aangewezen NSF Wetenschap en Technologie Centrum wordt beheerd door de Universiteit van California, Davis, onder Cooperative arbeidsovereenkomst nr. PHY0120999.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Lenses ThorLabs Various All lenses coated to have maximum transmission losses of 1% each
Tunable Ti:Sapph laser Coherent Chameleon 30 nJ, 200 fs, 80 MHz
40X oil immersion objective Olympus UApo/340 NA = 1.35
Inverted microscope Olympus IX-71 Modified to remove all lenses in side port
Half wave plate Thorlabs AHWP05M-600  
Glan-Thompson polarizer Thorlabs GTH10M ˜10% transmission loss
Spectrometer PI Acton SP2300i  
CCD PI Acton Pixis 100B  
Mathmatical software The MathWorks MATLAB version 2008a
Faraday isolator EOT BB8-5I  
Piezo-electric mirror Newport AG-M100  
BBO crystal CASIX custom 1 mm thickness
Bandpass filter 1 Andover 008FC14 808 ± 0.4 nm
Dichroic mirror Semrock FF662-FDI01 band edge at 662 nm
Long-pass filter Semrock BLP01-405R band edge at 417 nm
Bandpass filter 2 Semrock FF02-447/60 417-447 nm
CS2 Sigma-Aldrich 335266 99% purity
Coumarin 30 Sigma-Aldrich 546127 99% purity
Immersion oil Cargille 16242 Type DF

References

  1. Savitzky, A., Golay, M. J. E. Smoothing and differentiation of data by simplified least squares procedures. Analytical Chemistry. 36, 1627-1639 (1964).
  2. Lieber, C. A., Mahadevan-Jansen, A. Automated method for subtraction of fluorescence from biological Raman spectra. Applied Spectroscopy. 57, 1363-1367 (2003).
  3. Gniadecka, M. Melanoma diagnosis by Raman spectroscopy and neural networks: Structure alterations in proteins and lipids in intact cancer tissue. Journal of Investiga-tive Dermatology. 122, 443-449 (2004).
  4. Lieber, C. A., Majumder, S. K., Billheimer, D., Ellis, D. L., Mahadevan-Jansen, A. Raman microspectroscopy for skin cancer detection in vitro. Journal of Biomedical Optics. 13, 024013-024013 (2008).
  5. Chen, K., Qin, Y., Zheng, F., Sun, M., Shi, D. Diagnosis of colorectal cancer using Raman spectroscopy of laser-trapped single living epithelial cells. Optics Letters. 31, 2015-2017 (2006).
  6. Chan, J. W. Nondestructive identification of individual leukemia cells by laser trapping Raman spectroscopy. Analytical Chemistry. 80, 2180-2187 (2008).
  7. Zhu, Q. Y., Quivey, R. G., Berger, A. J. Measurement of bacterial concentration fractions in polymicrobial mixtures by Raman microspectroscopy. Journal of Biomedical Optics. 9, 1182-1186 (2004).
  8. Rösch, P. Chemotaxonomic identification of single bacteria by micro-Raman spectroscopy: Application to clean-room-relevant biological contaminations. Applied and Environmental Microbiology. 71, 1626-1637 (2005).
  9. Moritz, T. J. Raman spectroscopic signatures of the metabolic states of escherichia coli cells and their dependence on antibiotics treatment. Biophysical Journal. 98, 742a-742a (2010).
  10. Dehring, K. A. Identifying chemical changes in subchondral bone taken from murine knee joints using Raman spectroscopy. Applied Spectroscopy. 60, 1134-1141 (2006).
  11. Berger, A. J., Koo, T. W., Itzkan, I., Horowitz, G., Feld, M. S. Multicomponent blood analysis by near-infrared Raman spectroscopy. Applied Optics. 38, 2916-2926 (1999).
  12. Qi, D., Berger, A. J. Chemical concentration measurement in blood serum and urine samples using liquid-core optical fiber Raman spectroscopy. Applied Spectroscopy. 46, 1726-1734 (2007).
  13. Beier, B. D., Berger, A. J. Method for automated background subtraction from Raman spectra containing known contaminants. The Analyst. 134, 1198-1202 (2009).
  14. De Luca, A. C., Mazilu, M., Riches, A., Herrington, C. S., Dholakia, K. Online fluorescence suppression in modulated Raman spectroscopy. Analytical Chemistry. 82, 738-745 (2010).
  15. Evans, C. L. Chemical imaging of tissue in vivo with video-rate coherent anti-Stokes Raman scattering microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 16807-16812 (2005).
  16. Jones, W. J., Stoiche, . Inverse raman spectra: Induced absorption at optical frequencies. Physical Review Letters. 13, 657-659 (1964).
  17. Freudiger, . Label-Free et Imaging with High Sensitivity by Stimulated Raman Scattering Microscopy. Science. 322, 1857-1861 (2008).
  18. Cui, M., Bachler, B. R., Ogilvie, J. P. Comparing coherent and spontaneous Raman scattering under biological imaging conditions. Optics Letters. 34, 773-775 (2009).
  19. Matousek, P., Towrie, M., Stanley, A., Parker, A. W. Efficient rejection of fluorescence from Raman spectra using picosecond Kerr gating. Applied Spectroscopy. 53, 1485-1489 (1999).
  20. Matousek, P. Fluorescence suppression in resonance Raman spectroscopy using a high-performance picosecond Kerr gate. Journal of Raman Spectroscopy. 32, 983-988 (2001).
  21. Knorr, F., Smith, Z. J., Wachsmann-Hogiu, S. Development of a time-gated system for Raman spectroscopy of biological samples. Optics Express. 18, 20049-20058 (2010).
check_url/kr/2592?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Smith, Z. J., Knorr, F., Pagba, C. V., Wachsmann-Hogiu, S. Rejection of Fluorescence Background in Resonance and Spontaneous Raman Microspectroscopy. J. Vis. Exp. (51), e2592, doi:10.3791/2592 (2011).

View Video