Summary

El rechazo de la fluorescencia de fondo en la resonancia y microespectroscopía Raman espontánea

Published: May 18, 2011
doi:

Summary

Se discute la construcción y operación de un complejo sistema no lineal óptico que utiliza ultrarrápida totalmente ópticas de conmutación para aislar Raman de las señales de fluorescencia. El uso de este sistema en el que son capaces de separar con éxito las señales de Raman y de fluorescencia utilizando las energías de pulso y potencias medias que permanecen biológicamente seguros.

Abstract

Espectroscopia Raman es con frecuencia plagados de un fondo fluorescente intensa, particularmente para las muestras biológicas. Si la muestra se excita con un tren de pulsos ultrarrápidos, un sistema que puede separar temporalmente la superposición de señales de espectro en una escala de tiempo de picosegundos puede aislar rápidamente llega la luz Raman dispersada por que llegan tarde de luz fluorescente. Aquí hablamos de la construcción y operación de un complejo sistema no lineal óptico que utiliza todas las ópticas de conmutación en la forma de una puerta ópticas de bajo consumo Kerr para aislar las señales de Raman y de fluorescencia. A solo 808 nm láser con 2,4 W de potencia media y la tasa de 80 MHz se divide la repetición, con aproximadamente 200 mW de luz 808 nm se convierten en <5 mW de luz 404 nm enviado a la muestra para excitar a la dispersión Raman. El resto de la luz convertida nm 808 se envía a un medio no lineal, donde actúa como la bomba para el obturador totalmente ópticas. El obturador se abre y se cierra en 800 fs con la máxima eficiencia de aproximadamente el 5%. El uso de este sistema en el que son capaces de separar con éxito las señales de Raman y de fluorescencia a una velocidad de 80 MHz utilizando la repetición de impulsos y energías potencias medias que permanecen biológicamente seguros. Debido a que el sistema no tiene capacidad de reserva en términos de potencia óptica, que las consideraciones de varios detalles del diseño y la alineación que ayudan a maximizar el rendimiento del sistema. También se analiza el protocolo para la obtención de la superposición espacial y temporal de la señal y las vigas de la bomba en el medio Kerr, así como un protocolo detallado para la adquisición del espectro. Finalmente, se presenta un representante de los resultados de algunos espectros Raman obtenidos en presencia de fuerte fluorescencia utilizando nuestro tiempo-gating sistema.

Protocol

1. Algunos se debe tener cuidado en la preparación y la colocación de una muestra de Raman dentro de este sistema. Debido a que normalmente el sistema hace uso de los objetivos de la apertura numérica muy alta con distancias de trabajo muy corto, las muestras se colocan en un portaobjetos. Las muestras biológicas se colocan normalmente en un cubreobjetos espesor N º 1 montado en una cámara de celular Attofluor (Invitrogen, Carlsbad, CA). Las muestras líquidas, en particular los tóxicos para …

Discussion

El campo de la espectroscopia Raman biomédica ha visto un creciente interés en los últimos años como resultado de su potencial demostrado para la solución de varios problemas difíciles en el diagnóstico biológico. Por ejemplo, los espectros Raman se ha demostrado que tiene valor diagnóstico en la detección del cáncer de 3, 4, 5, 6. La espectroscopía Raman se ha utilizado también en la cuantificación de bacterias 7, 8 y 9 bacteriana respuesta a los fármacos. Se ha encontrad…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue financiado por el premio de la NSF DBI 0852891. Parte de este trabajo también fue financiado por el Centro de Ciencia y Tecnología Biofotónica, uno designado Ciencia NSF y el Centro de Tecnología gestionado por la Universidad de California, Davis, en virtud del Acuerdo de Cooperación No. PHY0120999.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Lenses ThorLabs Various All lenses coated to have maximum transmission losses of 1% each
Tunable Ti:Sapph laser Coherent Chameleon 30 nJ, 200 fs, 80 MHz
40X oil immersion objective Olympus UApo/340 NA = 1.35
Inverted microscope Olympus IX-71 Modified to remove all lenses in side port
Half wave plate Thorlabs AHWP05M-600  
Glan-Thompson polarizer Thorlabs GTH10M ˜10% transmission loss
Spectrometer PI Acton SP2300i  
CCD PI Acton Pixis 100B  
Mathmatical software The MathWorks MATLAB version 2008a
Faraday isolator EOT BB8-5I  
Piezo-electric mirror Newport AG-M100  
BBO crystal CASIX custom 1 mm thickness
Bandpass filter 1 Andover 008FC14 808 ± 0.4 nm
Dichroic mirror Semrock FF662-FDI01 band edge at 662 nm
Long-pass filter Semrock BLP01-405R band edge at 417 nm
Bandpass filter 2 Semrock FF02-447/60 417-447 nm
CS2 Sigma-Aldrich 335266 99% purity
Coumarin 30 Sigma-Aldrich 546127 99% purity
Immersion oil Cargille 16242 Type DF

References

  1. Savitzky, A., Golay, M. J. E. Smoothing and differentiation of data by simplified least squares procedures. Analytical Chemistry. 36, 1627-1639 (1964).
  2. Lieber, C. A., Mahadevan-Jansen, A. Automated method for subtraction of fluorescence from biological Raman spectra. Applied Spectroscopy. 57, 1363-1367 (2003).
  3. Gniadecka, M. Melanoma diagnosis by Raman spectroscopy and neural networks: Structure alterations in proteins and lipids in intact cancer tissue. Journal of Investiga-tive Dermatology. 122, 443-449 (2004).
  4. Lieber, C. A., Majumder, S. K., Billheimer, D., Ellis, D. L., Mahadevan-Jansen, A. Raman microspectroscopy for skin cancer detection in vitro. Journal of Biomedical Optics. 13, 024013-024013 (2008).
  5. Chen, K., Qin, Y., Zheng, F., Sun, M., Shi, D. Diagnosis of colorectal cancer using Raman spectroscopy of laser-trapped single living epithelial cells. Optics Letters. 31, 2015-2017 (2006).
  6. Chan, J. W. Nondestructive identification of individual leukemia cells by laser trapping Raman spectroscopy. Analytical Chemistry. 80, 2180-2187 (2008).
  7. Zhu, Q. Y., Quivey, R. G., Berger, A. J. Measurement of bacterial concentration fractions in polymicrobial mixtures by Raman microspectroscopy. Journal of Biomedical Optics. 9, 1182-1186 (2004).
  8. Rösch, P. Chemotaxonomic identification of single bacteria by micro-Raman spectroscopy: Application to clean-room-relevant biological contaminations. Applied and Environmental Microbiology. 71, 1626-1637 (2005).
  9. Moritz, T. J. Raman spectroscopic signatures of the metabolic states of escherichia coli cells and their dependence on antibiotics treatment. Biophysical Journal. 98, 742a-742a (2010).
  10. Dehring, K. A. Identifying chemical changes in subchondral bone taken from murine knee joints using Raman spectroscopy. Applied Spectroscopy. 60, 1134-1141 (2006).
  11. Berger, A. J., Koo, T. W., Itzkan, I., Horowitz, G., Feld, M. S. Multicomponent blood analysis by near-infrared Raman spectroscopy. Applied Optics. 38, 2916-2926 (1999).
  12. Qi, D., Berger, A. J. Chemical concentration measurement in blood serum and urine samples using liquid-core optical fiber Raman spectroscopy. Applied Spectroscopy. 46, 1726-1734 (2007).
  13. Beier, B. D., Berger, A. J. Method for automated background subtraction from Raman spectra containing known contaminants. The Analyst. 134, 1198-1202 (2009).
  14. De Luca, A. C., Mazilu, M., Riches, A., Herrington, C. S., Dholakia, K. Online fluorescence suppression in modulated Raman spectroscopy. Analytical Chemistry. 82, 738-745 (2010).
  15. Evans, C. L. Chemical imaging of tissue in vivo with video-rate coherent anti-Stokes Raman scattering microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 16807-16812 (2005).
  16. Jones, W. J., Stoiche, . Inverse raman spectra: Induced absorption at optical frequencies. Physical Review Letters. 13, 657-659 (1964).
  17. Freudiger, . Label-Free et Imaging with High Sensitivity by Stimulated Raman Scattering Microscopy. Science. 322, 1857-1861 (2008).
  18. Cui, M., Bachler, B. R., Ogilvie, J. P. Comparing coherent and spontaneous Raman scattering under biological imaging conditions. Optics Letters. 34, 773-775 (2009).
  19. Matousek, P., Towrie, M., Stanley, A., Parker, A. W. Efficient rejection of fluorescence from Raman spectra using picosecond Kerr gating. Applied Spectroscopy. 53, 1485-1489 (1999).
  20. Matousek, P. Fluorescence suppression in resonance Raman spectroscopy using a high-performance picosecond Kerr gate. Journal of Raman Spectroscopy. 32, 983-988 (2001).
  21. Knorr, F., Smith, Z. J., Wachsmann-Hogiu, S. Development of a time-gated system for Raman spectroscopy of biological samples. Optics Express. 18, 20049-20058 (2010).
check_url/kr/2592?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Smith, Z. J., Knorr, F., Pagba, C. V., Wachsmann-Hogiu, S. Rejection of Fluorescence Background in Resonance and Spontaneous Raman Microspectroscopy. J. Vis. Exp. (51), e2592, doi:10.3791/2592 (2011).

View Video