Summary

Étiquetage des cellules Lineage Zebrafish avec laser Uncagable dextran fluorescéine

Published: April 28, 2011
doi:

Summary

Ce protocole définit un moyen d'étiqueter et de tracer le destin de petits groupes de cellules du poisson zèbre en utilisant UV-uncaging de fluorescéine en cage, suivi par l'ensemble de montage immunomarquage pour amplifier le signal de la fluorescéine Uncaged.

Abstract

Un problème central dans la biologie du développement est de déduire l'origine de la myriade de types de cellules présentes dans les vertébrés à mesure qu'ils surviennent à partir de précurseurs indifférenciés. Les chercheurs ont utilisé diverses méthodes d'étiquetage lignée, tels que l'étiquetage DiI 1 et l'injection sous pression d'enzymes traçable 2 à déterminer le destin des cellules à des stades ultérieurs de développement dans des systèmes modèles. Les cartes sort d'abord dans le poisson zèbre (Danio rerio) ont été assemblés par injection iontophorétique de colorants fluorescents, tels que la rhodamine dextrane, dans des cellules individuelles dans des régions discrètes de l'embryon et le traçage le sort de la cellule marquée au cours du temps 3-5. Bien qu'ils soient efficaces, ces méthodes sont techniquement exigeantes et nécessitent un équipement spécialisé ne trouve pas couramment dans les laboratoires de poisson zèbre. Récemment, photoconvertable protéines fluorescentes, comme Eos et Kaede, qui irréversiblement passer du vert au rouge lorsque la fluorescence est exposé aux ultraviolets, voient une utilisation accrue chez le poisson zèbre 6-8. La clarté optique de l'embryon de poisson zèbre et la facilité relative de la transgénèse ont fait de ces outils particulièrement attrayant pour l'étiquetage lignée et d'observer la migration des cellules in vivo 7. Malgré leur utilité, ces protéines ont quelques inconvénients par rapport aux colorants médiée par des méthodes d'étiquetage lignée. La plupart des cruciale est la difficulté que nous avons trouvés dans l'obtention de 3-D haute résolution pendant photoconversion de ces protéines. Dans cette perspective, peut-être la meilleure combinaison de résolution et de facilité d'utilisation pour l'étiquetage de la lignée dans le poisson-zèbre se sert de cage fluorescéine dextrane, un colorant fluorescent qui est lié à un groupe de trempe qui masque ses 9 fluorescence. La teinture peut alors être "Uncaged" (publié par le groupe de la trempe) dans une cellule spécifique en utilisant la lumière UV d'une lampe laser ou le mercure, permettant la visualisation de sa fluorescence ou immunodétection. Contrairement aux méthodes d'iontophorèse, la fluorescéine cage peut être injecté à des appareils d'injection standard et Uncaged avec un microscope à épifluorescence équipé d'un trou d'épingle 10. En outre, les anticorps contre la fluorescéine ne détecter que le formulaire en liberté, et l'épitope de fixation ainsi survit 11. Enfin, la fluorescéine en cage peuvent être activées à très haute résolution en 3-D, en particulier si la microscopie à deux photons est utilisée 12,13. Ce protocole décrit une méthode d'étiquetage par la lignée de fluorescéine en cage et uncaging laser. Subsequenctly, uncaged fluorescéine est détectée simultanément avec les autres épitopes telles que la GFP en marquant avec des anticorps.

Protocol

1. Synthèse de la cage fluorescéine dextrane Mesurer 3,5 à 4 mg de aminodextrane et ajouter dans le tube Invitrogen fournis teintées contenant 1 mg de CMNB-cage SE fluorescéine. Dans nos mains ce ratio donne une moyenne de chargement de ~ 2,5 molécules de colorant par le dextran. Ajouter 500 ul de 0,1 M Na 2 B 4 O 7 tampons (borate de sodium) dans le tube. Cap et le vortex pendant 30 secondes pour dissoudre le aminodextrane et la fluorescéine en cage…

Discussion

Tel que décrit, ce protocole fournit une méthode relativement rapide lignée étiquetage du poisson zèbre qui est construit sur les techniques couramment utilisées de microinjection, microscopie, et immunofluorescence. Nous avons trouvé que le laser uncaging d'être le moyen le plus efficace et rentable de uncage fluorescéine de manière localisée. Cette méthode pourrait être utilisée pour étiqueter la lignée avec les terminaux expérimentale aussi tard que 4 dpf. Cependant, comme les cellules se divisen…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous tenons à remercier Dan Carlin pour aider à faire la fluorescéine en cage. En outre, nous tenons à remercier les sources de financement suivantes: Programme de l'Université Vanderbilt Medical School pour Grant Biologie formation de perfectionnement à la JAC, et les NIH HD054534to JTG.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
CMNB-caged fluorescein SE   Invitrogen C20050  
Aminodextran, 10kDa   Invitrogen D1860  
Zeba desalt spin columns   Pierce 89889  
goat anti-fluorescein antibody   Invitrogen A11095  
Alexa Fluor 633 Donkey anti-goat antibody   Invitrogen A21082  
35mmx10mm petri dishes   Becton-Dickinson 351008  
Upright compound microscope with 40x water immersion objective   Leica DM6000B  
MicroPoint Manual Laser Illumination System   Photonic Instruments    
Phenylthiourea (PTU)   Alfa Aesar L06690  
Tricaine   Sigma E10521  
Proteinase K   Roche 03115836991  
Plastic thread   Any sewing supply store    
Agarose   Research Products International A20090  
SpeedVac   Thermo Scientific Savant SPD131DDA  
Vortexing mixer   VWR Vortex Genie 2  
Pressure injector   Applied Scientific Instrumentation MPPI-3  

References

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Cite This Article
Clanton, J. A., Shestopalov, I. A., Chen, J. K., Gamse, J. T. Lineage Labeling of Zebrafish Cells with Laser Uncagable Fluorescein Dextran. J. Vis. Exp. (50), e2672, doi:10.3791/2672 (2011).

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