Summary

Idrogeli di alginato per tridimensionale Cultura Organo di ovaie e tube

Published: June 20, 2011
doi:

Summary

Coltura di cellule normali in loro contesto tridimensionale rappresenta un metodo alternativo per studiare eventi precoci necessari per la trasformazione cellulare e tumorigenesi. Questo metodo è utilizzato per la coltivazione ovarici normali e cellule oviductal per studiare eventi precoci nella formazione del cancro ovarico.

Abstract

Il cancro ovarico è la quinta causa di decessi per cancro nelle donne e ha un tasso di mortalità del 63% negli Stati Uniti 1. Il tipo di cellula d'origine dei tumori ovarici è ancora in discussione e potrebbe essere sia l'epitelio della superficie ovarica (OSE) o l'epitelio distale del fimbrie tube di Falloppio 2,3. Coltura le cellule normali come una coltura primaria in vitro consentirà agli scienziati di modello cambiamenti specifici che potrebbero portare al cancro ovarico nell'epitelio distinti, così definitivamente la determinazione del tipo di cellula di origine. Ciò permetterà lo sviluppo di biomarcatori più precisi, modelli animali con tessuto-specifici cambia gene, e migliori strategie di prevenzione mirate a questa malattia.

Il mantenimento di cellule normali in idrogel alginato promuove a breve termine in coltura in vitro di cellule nel loro contesto tridimensionale e permette l'introduzione di DNA plasmidico, siRNA e piccole molecole. Dagli organi coltura in pezzi che sono derivati ​​da tagli strategici con un bisturi, le culture diverse da un singolo organo può essere generato, aumentando il numero di esperimenti da un singolo animale. Questi tagli aspetti del modello di ovulazione porta alla proliferazione di OSE, che è associata alla formazione di cancro ovarico. Tipi di cellule come l'OSE, che non crescono bene su superfici in plastica possono essere coltivate con questo metodo e facilitare l'indagine nei normali processi cellulari o dei primi eventi nella formazione del cancro 4.

Idrogel alginato può essere utilizzato per sostenere la crescita di molti tipi di tessuti 5. Alginato è un polisaccaride lineare composto da unità ripetute di β-D-mannuronico acido e α-L-guluronic acido che può essere reticolato con gli ioni calcio, con una conseguente azione gelificante delicata che non danneggiano i tessuti 6,7. Come per le altre cellule matrici tridimensionali cultura come Matrigel, alginato fornisce supporto meccanico per i tessuti, ma le proteine ​​non sono reattivi con la matrice di alginato, e quindi le funzioni alginato come matrice extracellulare sintetico che non avvia segnalazione cellulare 5. L'idrogel alginato galleggia in media standard di coltura cellulare e supporta l'architettura della crescita dei tessuti in vitro.

Un metodo viene presentato per la preparazione, la separazione, e l'inclusione di neoplasie ovariche e composizioni per organo oviductal in idrogel alginato, che possono essere mantenute in coltura per un massimo di due settimane. Il rilascio enzimatico delle cellule per l'analisi di campioni di RNA e proteine ​​dalla cultura organo è anche descritto. Infine, la crescita di tipi di cellule primarie è possibile senza immortalizzazione genetica di topi e permette agli investigatori di utilizzare knockout e topi transgenici.

Protocol

1. Ovarico dissezione e isolamento dei tessuti Preparare una soluzione allo 0,5% (w / v) di alginato di sodio, preparare da una versione modificata del protocollo descritto in precedenza 5, utilizzando PBS sterile e calore a 37 ° C. Miscelare invertendo o dondolo, ma non vortice. Disegnare la alginato in una siringa da 1 ml con un ago da 25 G e mantenere a 37 ° C. Preparare 10mM sterile CaCl 2 soluzione per la reticolazione alginato su incapsulamento dei tessuti e calda a 37 …

Discussion

Lo sviluppo di un sistema tridimensionale di organi cultura utilizzando idrogel alginato rappresenta un metodo versatile per l'analisi di molti tipi di tessuto diverso da una grande varietà di organismi. L'uso di colture 3D può essere estesa ai campi della ingegneria dei tessuti e medicina rigenerativa in quanto fornisce una impalcatura su cui le cellule possono crescere 11. Attualmente, il nostro laboratorio è in fase di studio iniziale, usando il tessuto ovarico umano e tube di Falloppio, tuttavi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto dal Fondo di Ricerca sul Cancro ovarico [concedere LT/UIC/01.2011], il Centro UIC per la scienza clinica e traslazionale, il Cancer Center UIC, e il National Institutes of Health concedere C06RR15482.

Gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti in conformità con le linee guida e dei regolamenti previsti dal AAALAC sotto protocolli animali approvati cura dalla cura degli animali e del Comitato Usa a UIC. Animali per questo progetto sono alloggiati in camere barriera nel Laboratorio risorse biologiche (BRL) presso l'Università dell'Illinois a Chicago. Il BRL dispone di uno staff completamente veterinario che controlla gli animali, almeno due volte al giorno e fornisce consigli sulla cura degli animali.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Leibovitz L-15 medium Gibco 11415  
αMEM medium Gibco 12000-022  
Sodium alginate Novamatrix    
Sodium cacodylate Sigma Aldrich C0250  
Polypropylene mesh fiber McMaster Carr   45″ wide roll; 0.0041″ opening
Lipofectamine 2000 Invitrogen 11668  
Penicillin/streptomycin Gibco 15070-063  
Alginate lyase Sigma Aldrich A1603  
A1603 Sigma Aldrich C9697 From Clostridium histolyticum
Bovine serum albumin MP Biomedicals 103700  
Fetal bovine serum Gibco Gibco  
ITS solution Roche 11074547001 Insulin/transferrin/sodium selenite
Cytokeratin 8 antibody Developmental Studies Hybridoma Bank TROMA-1 Use at 1:200
DAPI Vector Labs H1200  
Bromodeoxyuridine Sigma B50002-1G Final concentration 10 μM

References

  1. Jemal, A. Cancer statistics, 2009. CA Cancer J Clin. 59, 225-249 (2009).
  2. Auersperg, N., Woo, M. M., Gilks, C. B. The origin of ovarian carcinomas: a developmental view. Gynecol Oncol. 110, 452-454 (2008).
  3. Crum, C. P. The distal fallopian tube: a new model for pelvic serous carcinogenesis. Curr Opin Obstet Gynecol. 19, 3-9 (2007).
  4. Jackson, K. S., Inoue, K., Davis, D. A., Hilliard, T. S., Burdette, J. E. Three-dimensional ovarian organ culture as a tool to study normal ovarian surface epithelial wound repair. Endocrinology. 150, 3921-3926 (2009).
  5. Rowley, J. A., Madlambayan, G., Mooney, D. J. Alginate hydrogels as synthetic extracellular matrix materials. Biomaterials. 20, 45-53 (1999).
  6. Augst, A. D., Kong, H. J., Mooney, D. J. Alginate hydrogels as biomaterials. Macromol Biosci. 6, 623-633 (2006).
  7. Amsden, B., Turner, N. Diffusion characteristics of calcium alginate gels. Biotechnol Bioeng. 65, 605-610 (1999).
  8. Symonds, D. A., Miller, K. P., Tomic, D., Flaws, J. A. Effect of methoxychlor and estradiol on cytochrome p450 enzymes in the mouse ovarian surface epithelium. Toxicol Sci. 89, 510-514 (2006).
  9. Umezu, T., Hanazono, M., Aizawa, S., Tomooka, Y. Characterization of newly established clonal oviductal cell lines and differential hormonal regulation of gene expression. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 39, 146-156 (2003).
  10. Xu, M., Kreeger, P. K., Shea, L. D., Woodruff, T. K. Tissue-engineered follicles produce live, fertile offspring. Tissue Eng. 12, 2739-2746 (2006).
  11. Wilson, R. F., Wiencek, R. G., Balog, M. Predicting and preventing infection after abdominal vascular injuries. J Trauma. 29, 1371-1375 (1989).
  12. Xu, M. In Vitro Oocyte Maturation and Preantral Follicle Culture from the Luteal Phase Baboon Ovary Produce Mature Oocytes. Biol Reprod. , .
  13. Xu, M. In vitro grown human ovarian follicles from cancer patients support oocyte growth. Hum Reprod. 24, 2531-2540 (2009).
  14. Jen, A. C., Wake, M. C., Mikos, A. G. Review: Hydrogels for cell immobilization. Biotechnol Bioeng. 50, 357-364 (1996).
  15. Iwamoto, Y. Purification and characterization of bifunctional alginate lyase from Alteromonas sp. strain no. 272 and its action on saturated oligomeric substrates. Biosci Biotechnol Biochem. 65, 133-142 (2001).
  16. Auersperg, N., Maines-Bandiera, S. L., Dyck, H. G., Kruk, P. A. Characterization of cultured human ovarian surface epithelial cells: phenotypic plasticity and premalignant changes. Lab Invest. 71, 510-518 (1994).
  17. Auersperg, N., Ota, T., Mitchell, G. W. Early events in ovarian epithelial carcinogenesis: progress and problems in experimental approaches. Int J Gynecol Cancer. 12, 691-703 (2002).
  18. Kruk, P. A., Uitto, V. J., Firth, J. D., Dedhar, S., Auersperg, N. Reciprocal interactions between human ovarian surface epithelial cells and adjacent extracellular matrix. Exp Cell Res. 215, 97-108 (1994).
  19. West, E. R., Xu, M., Woodruff, T. K., Shea, L. D. Physical properties of alginate hydrogels and their effects on in vitro follicle development. Biomaterials. 28, 4439-4448 (2007).
  20. Auersperg, N., Wong, A. S., Choi, K. C., Kang, S. K., Leung, P. C. Ovarian surface epithelium: biology, endocrinology, and pathology. Endocr Rev. 22, 255-288 (2001).
  21. Choi, J. H., Wong, A. S., Huang, H. F., Leung, P. C. Gonadotropins and ovarian cancer. Endocr Rev. 28, 440-461 (2007).
  22. Fathalla, M. F. Incessant ovulation–a factor in ovarian neoplasia. Lancet. 2, 163-163 (1971).
  23. Espey, L. L. Current status of the hypothesis that mammalian ovulation is comparable to an inflammatory reaction. Biol Reprod. 50, 233-238 (1994).
check_url/kr/2804?article_type=t

Play Video

Cite This Article
King, S. M., Quartuccio, S., Hilliard, T. S., Inoue, K., Burdette, J. E. Alginate Hydrogels for Three-Dimensional Organ Culture of Ovaries and Oviducts. J. Vis. Exp. (52), e2804, doi:10.3791/2804 (2011).

View Video