Summary

Bilaminar Co-kultur Primary Rat Kortikal neuroner og glia

Published: November 12, 2011
doi:

Summary

Her giver vi en protokol til dyrkning rotte cortical neuroner i overværelse af en glial feeder lag. De dyrkede neuroner etablere polaritet og skabe synapser, og kan adskilles fra den glia til brug i forskellige applikationer, såsom elektrofysiologi, calcium imaging, celle overlevelse assays, immuncytokemi, og RNA / DNA / protein isolation.

Abstract

Denne video vil guide dig gennem processen med dyrkning rotte kortikale neuroner i overværelse af en glial feeder lag, et system kendt som en bilaminar eller co-kultur model. Dette system er velegnet til en lang række eksperimentelle behov, der kræver enten et glas eller plastik vækst substrat og kan også bruges til dyrkning af andre typer af neuroner.

Rotte kortikale neuroner fra slutningen af fosterstadiet (E17) er belagt på glas dækglas eller vævskultur retter står over for en feeder lag af glia dyrket på fade eller plast dækglas (kendt som Thermanox), hhv. Valget mellem de to konfigurationer afhænger af den specifikke eksperimentelle anvendte teknik, som kan kræve, eller ej, er, at neuroner dyrket på glas (fx calcium imaging versus Western blot). Den glial feeder lag, en astroglia-beriget sekundære kultur blandet glia, er adskilt tilberedt fra cortex af nyfødte rotteunger (P2-4) forud for den neuronaledissektion.

En stor fordel ved denne kultur systemet i forhold til en kultur af neuroner kun støtte fra neuronale vækst, overlevelse og differentiering leveret af trofiske faktorer, der udskilles fra glial feeder lag, som mere præcist ligner hjernen miljø in vivo. Endvidere kan den fælles kultur, der bruges til at studere neuronal-glial interaktioner 1.

Samtidig er glia forurening i den neuronale lag forebygges med forskellige midler (low density kultur, tilsætning af mitotiske hæmmere, mangel på serum og brug af optimerede kultur middel), der fører til en næsten ren neuronale lag, der kan sammenlignes med andre etablerede metode 1 -3. Neuroner let kan adskilles fra glial lag på ethvert tidspunkt under kultur og anvendes til forskellige eksperimentelle applikationer lige fra elektrofysiologi 4, cellulær og molekylær biologi 5-8, biokemi 5, billedbehandling og microscopy 4,6,7,9,10. Den primære neuroner udvide axoner og dendritter til at danne funktionelle synapser 11, en ​​proces, der ikke er observeret i neuronale cellelinjer, selv om nogle cellelinier gøre forlænge processer.

En detaljeret protokol med dyrkning rotte hippocampus neuroner ved hjælp af denne co-kultur-system er blevet beskrevet tidligere 4,12,13. Her har vi detalje en modificeret protokol velegnet til kortikale neuroner. Da ca 20×10 6 celler inddrives fra hver rotte foster, denne metode er især nyttig for eksperimenter, der kræver et stort antal neuroner (men ikke bekymret over en meget homogen neuronal befolkning). Udarbejdelsen af ​​neuroner og glia skal planlægges i en tid-specifik måde. Vi vil give trin-for-trin-protokol til dyrkning rotte cortex neuroner samt dyrkning af gliaceller at støtte neuroner.

Protocol

1. Glia Dissektion (~ 2 uger før plating neuroner) Som forberedelse til dissektion sted sterile værktøjer i 70% ethanol, tilsættes 4 mL koldt dissektion medium til 60 mm retter (en parabol pr hjernen), og placer 2,5% trypsin og DNase på is til at tø op (se detaljer om kirurgiske redskaber i tabel VI ). Brug store saks til at halshugge på 2-4 dage gamle unger og sted hoveder i en 100 mm steril fad. Brug medium saks til at gøre en midterlinjen skære gennem huden og trække sig tilba…

Discussion

Denne protokol giver en metode til dyrkning rotte primære kortikale neuroner i overværelse af glia celler, samtidig med at de neuroner til at være let isoleret i eksperimentel analyse. Den glia støtte udviklingen af ​​en sund neuronal fænotype, samtidig med modulerende neuronale reaktioner på eksperimentelle behandlinger i en fysiologisk relevant måde. Derudover ved passaging den primære glia før kultivering med neuroner denne celle population bliver selektivt beriget med astrocytes, hvilket forhindrer infl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker tidligere laboratorium medlemmer, der har bidraget til videreudvikling af denne protokol og NIH for støtte i årene (DA19808 og DA15014 til OM). Anna Abt 1 er en fyr af "Tværfaglig og Translationel forskeruddannelse i neuroAIDS" (T32-MH078795), og således blev dette arbejde støttet delvist af National Institutes of Health i henhold til Ruth L. Kirschstein National Research Service Award 5T32MH079785.

Materials

Reagent Concentration
Glucose 16 mM
Sucrose 22 mM
NaCl 135 mM
KCl 5 mM
Na2HPO4 1 mM
KH2PO4 0.22 mM
HEPES 10 mM
pH 7.4
Osmolarity 310±10 mOsm

Table 1. Dissection Medium.

Reagent Concentration
DMEM 90%
FBS 10%
Gentamicin 50 μg/mL

Tabe 2. Glia Plating Medium.

Reagent Concentration
DMEM 90%
Horse Serum 10%

Table 3. Neuron Plating Medium.

Reagent Concentration
DMEM 98%
N2 Supplement 1%
1M HEPES 1%
Ovalbumin 50 mg/100mL

Table 4. N2 Medium.

Reagent Concentration
Boric Acid 50 mM
Sodium Borate 12.5 mM

Table 5. Borate Buffer (for poly-lysine).

Reagent Company Catalogue number
High glucose Dulbecco’s Modified Eagle
Medium (DMEM)
Invitrogen 11995-073
Fetal Bovine Serum (FBS), Heat-inactivated Hyclone 26400-044
Horse Serum, Heat-inactivated Hyclone H1138
Gentamicin (50mg/mL) Invitrogen 15750-060
N2 Supplement (100x) Invitrogen 17502-048
HEPES buffer solution Invitrogen 15630-080
Albumin from chicken egg white, Grade VI
(Ovalbumin)
Sigma-Aldrich A2512
2.5% Trypsin Invitrogen 15090-046
0.5% Trypsin-EDTA (10X) Invitrogen 15400-054
Deoxyribonuclease I from bovine pancreas
(DNase)
Sigma-Aldrich D-5025
Paraplast Fisher 12-646-106
Poly-L-lysine Sigma-Aldrich P1274
Cytosine-β-D-arabinofuranoside hydrochloride Sigma-Aldrich C6645
Stereomicroscope Leica Leica ZOOM 2000
Cover glasses, Circles, 15 mm, Thickness
0.13-0.17 mm
Carolina 633031
Thermanox sheets Grace BioLabs HS4550
Large forceps Biomedical
연구
Instruments
70-4000
Fine-tipped No.5 forceps Fine Science
Tools
91150-20
Pattern No.1 forceps Biomedical
연구
10-1400
  Instruments  
Scissors, straight, sharp-blunt Biomedical
연구
Instruments
28-1435
Micro Dissecting scissors Biomedical
연구
Instruments
11-2070
Micro Dissecting Curved scissors Biomedical
연구
Instruments
11-1395

References

  1. Cook, A. Interactions between chemokines: regulation of fractalkine/CX3CL1 homeostasis by SDF/CXCL12 in cortical neurons. J. Biol. Chem. 285, 10563-10563 (2010).
  2. Nicolai, J., Burbassi, S., Rubin, J., Meucci, O. CXCL12 inhibits expression of the NMDA receptor’s NR2B subunit through a histone deacetylase-dependent pathway contributing to neuronal survival. Cell. Death. Dis. 1, e33-e33 (2010).
  3. Sengupta, R. Morphine increases brain levels of ferritin heavy chain leading to inhibition of CXCR4-mediated survival signaling in neurons. J. Neurosci. 29, 2534-2544 (2009).
  4. Meucci, O. Chemokines regulate hippocampal neuronal signaling and gp120 neurotoxicity. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 95, 14500-14500 (1998).
  5. Khan, M. Z. Regulation of neuronal P53 activity by CXCR 4. Mol. Cell. Neurosci. 30, 58-66 (2005).
  6. Patel, J. P. Modulation of neuronal CXCR4 by the micro-opioid agonist DAMGO. J. Neurovirol. 12, 492-500 (2006).
  7. Shimizu, S. Role of the transcription factor E2F1 in CXCR4-mediated neurotoxicity and HIV neuropathology. Neurobiol. Dis. 25, 17-26 (2007).
  8. Khan, M. Z. The chemokine receptor CXCR4 regulates cell-cycle proteins in neurons. J. Neurovirol. 9, 300-314 (2003).
  9. Khan, M. Z. The chemokine CXCL12 promotes survival of postmitotic neurons by regulating Rb protein. Cell. Death. Differ. 15, 1663-1672 (2008).
  10. Khan, M. Z., Vaidya, A., Meucci, O. CXCL12-mediated regulation of ANP32A/Lanp, a component of the inhibitor of histone acetyl transferase (INHAT) complex, in cortical neurons. J. Neuroimmune. Pharmacol. 6, 163-170 (2011).
  11. Dotti, C. G., Sullivan, C. A., Banker, G. A. The establishment of polarity by hippocampal neurons in culture. J. Neurosci. 8, 1454-1468 (1988).
  12. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nat. Protoc. 1, 2406-2415 (2006).
  13. Goslin, K., Banker, G., Goslin, K., Banker, G. . Culturing Nerve Cells. , 339-370 (1998).
  14. D’Ambrosio, J., Fatatis, A. Osteoblasts modulate Ca2+ signaling in bone-metastatic prostate and breast cancer cells. Clin. Exp. Metastasis. 26, 955-964 (2009).

Play Video

Cite This Article
Shimizu, S., Abt, A., Meucci, O. Bilaminar Co-culture of Primary Rat Cortical Neurons and Glia. J. Vis. Exp. (57), e3257, doi:10.3791/3257 (2011).

View Video