Summary

Misura della Ca citosolico 2 + In isolati Linfatici contrattile

Published: December 08, 2011
doi:

Summary

Vi presentiamo un approccio per valutare la Ca citosolico<sup> 2 +</supConcentrazione> a linfatici isolato per studiare Ca<sup> 2 +</sup>-Dipendente e Ca<sup> 2 +</sup>-Sensibilizzante meccanismi della contrazione muscolare liscia linfatico.

Abstract

Vasi linfatici comprende un sistema multifunzionale di trasporto che mantiene l'omeostasi dei fluidi, fornisce i lipidi alla circolazione centrale, e agisce come un sistema di sorveglianza per gli antigeni potenzialmente dannosi, ottimizzando l'immunità mucosale e la risposta immunitaria adattativa 1. La linfa è formata da liquido interstiziale che entra linfatici iniziali cieco-ended, e poi viene trasportata contro un gradiente di pressione in grandi vasi linfatici di raccolta. Ogni linfatico raccolta è costituita da una serie di segmenti chiamati lymphangions, separati da valvole bicuspide che impediscono il riflusso. Ogni lymphangion possiede un ciclo contrattile che spinge linfa contro un gradiente di pressione verso la circolazione centrale 2. Questo modello contrattile fasica è analogo al ciclo cardiaco, con fasi sistolica e diastolica, e con un 4 contrazione minore frequenza. Inoltre, il muscolo liscio linfatico genera tono e visualizza la costrizione e la dilatazione miogenica in risposta ad aumenti e diminuzioni della pressione luminale, rispettivamente 5. Un ibrido di meccanismi molecolari che supportano sia la contrattilità fasica e tonica dei vasi linfatici sono quindi proposti.

Contrazione della muscolatura liscia è generalmente regolata dal Ca 2 + citosolico concentrazione ([Ca 2 +] i) più sensibilità al Ca 2 +, degli elementi contrattili in risposta ai cambiamenti nell'ambiente che circonda la cellula 6. [Ca 2 +] i è determinato dalla combinazione del movimento di Ca 2 + attraverso la membrana plasmatica legante o tensione gated canali Ca 2 + e il rilascio e l'assorbimento di Ca 2 + dalle riserve interne. Citosolico di Ca 2 + si lega alla calmodulina e attiva gli enzimi come la catena leggera della miosina (MLC) chinasi (MLCK), che a sua volta fosforila MLC porta alla actina-miosina-mediata contrazione 8. Tuttavia, la sensibilità di questa via di Ca <sup> 2 + può essere regolata dalla fosfatasi MLC (MLCP) 9. MLCP attività è regolata da Rho chinasi (ROCK) e l'inibitore della proteina fosfatasi miosina CPI-17.

Qui vi presentiamo un metodo per valutare le variazioni [Ca 2 +] i nel tempo isolato, linfatici perfuso al fine di studiare Ca 2 +-dipendente e Ca 2 +-sensibilizzante meccanismi della contrazione muscolare liscia linfatico. Utilizzando isolato linfatici mesenterica di ratto raccolta abbiamo studiato tratto cambiamenti indotti in [Ca 2 +] i e l'attività contrattile. Il modello linfatico isolato offre il vantaggio che la pressione, flusso, e la composizione chimica della soluzione bagno può essere strettamente controllati. [Ca 2 +] i è stato determinato dal carico linfatico con il raziometrici, Ca 2 +-binding dye Fura-2. Questi studi forniranno un nuovo approccio al problema più ampio di studiare i diversi meccanismi molecolari che regolano fasicacontrazioni tonico contro costrizione nel muscolo liscio linfatico.

Protocol

1. Animali Tutte le procedure sono state approvate dalla cura degli animali e del Comitato Istituzionale Usa alla Louisiana State University Health Sciences Center e sono stati eseguiti in conformità con le linee guida del National Institute of Health (NIH pubblicazione n ° 85-12, riveduta nel 1996). Maschi Sprague-Dawley (Charles River Laboratories, 270-350 g di peso corporeo) sono stati alloggiati in una temperatura controllata (22 ° C) e l'illuminazione controllata (12:12 h ciclo di luce scura) ambi…

Discussion

Una nuova combinazione di metodi è stato impiegato per lo studio intrinseco di pompaggio dei vasi linfatici. La possibilità di misurare simultaneamente i cambiamenti in [Ca 2 +] i vasi linfatici e del diametro di pompaggio permetterà di studi sul contributo relativo di Ca 2 +-dipendente e Ca 2 +-sensibilizzanti vie di segnalazione nel meccanismo generale che regolano il ciclo contrattile linfatico.

Il ciclo linfatico contrattile costituito da co…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

<p class="jove_content"> Questo lavoro è stato sostenuto da NIH concedere P20RR018766 e una borsa di studio ABMRF / Fondazione per la Ricerca Alcol.</p>

Materials

<tdChemical
1. Ringer 5x Stock
Company Catalog Number Amount
Sodium Chloride EMD SX0420-3 35 g
Potassium Chloride J.T. Baker 3040 1.75 g
Calcium Chloride Sigma C-3881 1.47 g
Magnesium Sulfate Sigma M-9397 1.44 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4 °C
       
2. MOPS buffer      
Chemical Company Catalog Number Amount
MOPS Sigma M3183 125.6 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4 °C
       
3. Albumin Physiological Salt Solution (APSS)
Chemical Company Catalog Number Amount
Ringer stock (5x) N/A N/A 200 mL
Mops Buffer N/A N/A 5 mL
Sodium Phosphate Sigma S-9638 0.168 g
Sodium Pyruvate Sigma P5280 0.22 g
EDTA sodium salt Sigma ED2SS 0.0074 g
Glucose Sigma G7528 0.901 g
Albumin, Bovine USB 10856 10 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Adjust pH to 7.4 at 37° C, then sterile filter into autoclaved bottles and store at 4 °C.

Table 1. Specific Reagents Used. Store all at 4 °C.

References

  1. Chakraborty, S. Lymphatic system: a vital link between metabolic syndrome and inflammation. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1207, 94-94 (2010).
  2. Zawieja, D. Lymphatic biology and the microcirculation: past, present and future. Microcirculation. 12, 141-141 (2005).
  3. Benoit, J. N., Zawieja, D. C., Goodman, A. H., Granger, H. J. Characterization of intact mesenteric lymphatic pump and its responsiveness to acute edemagenic stress. Am. J. Physiol. 257, H2059-H2059 (1989).
  4. Davis, M. J., Davis, A. M., Ku, C. W., Gashev, A. A. Myogenic constriction and dilation of isolated lymphatic vessels. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 296, H293-H293 (2009).
  5. Dougherty, P. J., Davis, M. J., Zawieja, D. C., Muthuchamy, M. Calcium sensitivity and cooperativity of permeabilized rat mesenteric lymphatics. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 294, R1524-R1524 (2008).
  6. Fay, F. S., Shlevin, H. H., Granger, W. C., Taylor, S. R. Aequorin luminescence during activation of single isolated smooth muscle cells. Nature. 280, 506-506 (1979).
  7. Wang, W. Inhibition of myosin light chain phosphorylation decreases rat mesenteric lymphatic contractile activity. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 297, 726-726 (2009).
  8. Karaki, H. Calcium movements, distribution, and functions in smooth muscle. Pharmacol. Rev. 49, 157-157 (1997).
  9. Ratz, P. H., Berg, K. M., Urban, N. H., Miner, A. S. Regulation of smooth muscle calcium sensitivity: KCl as a calcium-sensitizing stimulus. Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 288, C769-C769 (2005).
  10. Somlyo, A. P., Somlyo, A. V. Ca2+ sensitivity of smooth muscle and nonmuscle myosin II: modulated by G proteins, kinases, and myosin phosphatase. Physiol. Rev. 83, 1325-1325 (2003).
  11. Souza-Smith, F. M., Kurtz, K. M., Molina, P. E., Breslin, J. W. Adaptation of mesenteric collecting lymphatic pump function following acute alcohol intoxication. Microcirculation. 17, 514-514 (2010).
  12. Breslin, J. W., Yuan, S. Y., Wu, M. H. VEGF-C alters barrier function of cultured lymphatic endothelial cells through a VEGFR-3-dependent mechanism. Lymphat. Res. Biol. 5, 105-105 (2007).
  13. Shirasawa, Y., Benoit, J. N. Stretch-induced calcium sensitization of rat lymphatic smooth muscle. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 285, H2573-H2573 (2003).
  14. Imtiaz, M. S. Pacemaking through Ca2+ stores interacting as coupled oscillators via membrane depolarization. Biophys. J. 92, 3843-3843 (2007).
  15. Muller, J. M., Davis, M. J., Kuo, L., Chilian, W. M. Changes in coronary endothelial cell Ca2+ concentration during shear stress- and agonist-induced vasodilation. Am. J. Physiol. 276, 1706-1706 (1999).
  16. Ferrusi, I., Zhao, J., van Helden, D., von der Weid, P. Y. Cyclopiazonic acid decreases spontaneous transient depolarizations in guinea pig mesenteric lymphatic vessels in endothelium-dependent and -independent. 286, H2287-H2287 (2004).
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Cite This Article
Souza-Smith, F. M., Kurtz, K. M., Breslin, J. W. Measurement of Cytosolic Ca2+ in Isolated Contractile Lymphatics. J. Vis. Exp. (58), e3438, doi:10.3791/3438 (2011).

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