Summary

Måling av cytosoliske Ca 2 + I isolerte kontraktile lymfesystem

Published: December 08, 2011
doi:

Summary

Vi introduserer en tilnærming for å evaluere cytosoliske Ca<sup> 2 +</sup> Konsentrasjon i isolerte lymfekar å studere Ca<sup> 2 +</sup>-Avhengige og Ca<sup> 2 +</sup>-Sensibiliserende mekanismer av lymfatisk glatt muskel sammentrekning.

Abstract

Lymfekar utgjør et multifunksjonelt transport system som opprettholder væske homeostase, leverer lipider til den sentrale sirkulasjon, og fungerer som et overvåkingssystem for potensielt skadelige antigener, optimalisere mucosal immunitet og adaptive immunresponser 1. Lymfe er dannet fra interstitiell væske som kommer blind-ended innledende lymfekjertlene, og deretter transporteres mot en trykkgradient i større samle lymfekar. Hver samle lymfatisk består av en rekke segmenter som kalles lymphangions, atskilt av bicuspid ventiler som hindrer tilbakestrømning. Hver lymphangion besitter en kontraktile syklus som driver lymph mot en trykkgradient mot den sentrale sirkulasjon 2. Dette phasic kontraktile mønsteret er analogt til hjerte-syklus, med systolisk og diastolisk faser, og med en lavere sammentrekning frekvens fire. I tillegg genererer lymphatic glatt muskel tone og viser myogenic innsnevring og utvidelse in respons på økning og reduksjon i luminal press, henholdsvis 5. En hybrid av molekylære mekanismer som støtter både phasic og tonic kontraktilitet av lymfekjertlene er dermed foreslått.

Sammentrekning av glatt muskulatur er generelt regulert av cytosoliske Ca 2 + konsentrasjon ([Ca 2 +] i) pluss sensitivitet til Ca 2 +, av kontraktile elementer i respons til endringer i miljøet som omgir cellen 6. [Ca 2 +] i er bestemt av kombinasjonen av bevegelsen av Ca 2 + gjennom plasmamembranen ligand eller spenning gated Ca 2 + kanaler og frigjøring og opptak av Ca 2 + fra interne butikker. Cytosoliske Ca 2 + binder seg til calmodulin og aktiverer enzymer som myosin lett kjede (MLC) kinase (MLCK), som igjen phosphorylates MLC fører til actin-myosin-mediert kontraksjon 8. Men følsomheten av denne veien til Ca <sup> 2 + kan reguleres av MLC fosfatase (MLCP) 9. MLCP aktiviteten er regulert av Rho kinase (ROCK) og myosin fosfatase inhibitor protein KPI-17.

Her presenterer vi en metode for å vurdere endringer i [Ca 2 +] i over tid i isolerte, perfused lymfekjertlene for å studere Ca 2 +-avhengige og Ca 2 +-sensibiliserende mekanismer av lymfatisk glatt muskel sammentrekning. Bruk isolerte rotte mesenteric samle lymfekar vi studert stretch-indusert forandringer i [Ca 2 +] i og kontraktil aktivitet. Den isolerte lymfatiske Modellen har den fordelen at trykk, flow, og den kjemiske sammensetningen av badekaret løsningen kan være strengt kontrollert. [Ca 2 +] i ble bestemt ved lasting lymfekar med ratiometric, 2 Ca +-bindende dye Fura-2. Disse studiene vil gi en ny tilnærming til bredere problemet med å studere de forskjellige molekylære mekanismer som regulerer phasicsammentrekninger versus tonic innsnevring i lymfatisk glatt muskulatur.

Protocol

1. Dyr Alle prosedyrer ble godkjent av Institutional Animal Care og Bruk komité ved Louisiana State University Health Sciences Center og ble utført i samsvar med retningslinjene for National Institute of Health (NIH publikasjon nr 85-12, revidert 1996). Mann Sprague-Dawley rotter (Charles River Laboratories, 270-350 g kropp vekt) ble plassert i en kontrollert temperatur (22 ° C) og kontrollert belysning (12:12 h lyse mørke syklus) miljø. Etter ankomst ble rottene sendt til en ukes akklimatiseringsperiode…

Discussion

En roman kombinasjon av metoder ble benyttet for å studere iboende pumping av lymfekar. Muligheten til å samtidig måle forandringer i [Ca 2 +] i og diameter i pumping lymfekar vil tillate for studier av relative bidrag av Ca 2 +-avhengige og Ca 2 +-sensibiliserende signalveier i den generelle mekanismen som styrer lymfatiske kontraktile syklus.

Det lymfatiske kontraktile syklus består av phasic sammentrekninger oppå tone. Dataene viser at hver…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

<p class="jove_content"> Dette arbeidet ble støttet av NIH gi P20RR018766 og et stipend fra ABMRF / Foundation for Alcohol Research.</p>

Materials

<tdChemical
1. Ringer 5x Stock
Company Catalog Number Amount
Sodium Chloride EMD SX0420-3 35 g
Potassium Chloride J.T. Baker 3040 1.75 g
Calcium Chloride Sigma C-3881 1.47 g
Magnesium Sulfate Sigma M-9397 1.44 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4 °C
       
2. MOPS buffer      
Chemical Company Catalog Number Amount
MOPS Sigma M3183 125.6 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4 °C
       
3. Albumin Physiological Salt Solution (APSS)
Chemical Company Catalog Number Amount
Ringer stock (5x) N/A N/A 200 mL
Mops Buffer N/A N/A 5 mL
Sodium Phosphate Sigma S-9638 0.168 g
Sodium Pyruvate Sigma P5280 0.22 g
EDTA sodium salt Sigma ED2SS 0.0074 g
Glucose Sigma G7528 0.901 g
Albumin, Bovine USB 10856 10 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Adjust pH to 7.4 at 37° C, then sterile filter into autoclaved bottles and store at 4 °C.

Table 1. Specific Reagents Used. Store all at 4 °C.

References

  1. Chakraborty, S. Lymphatic system: a vital link between metabolic syndrome and inflammation. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1207, 94-94 (2010).
  2. Zawieja, D. Lymphatic biology and the microcirculation: past, present and future. Microcirculation. 12, 141-141 (2005).
  3. Benoit, J. N., Zawieja, D. C., Goodman, A. H., Granger, H. J. Characterization of intact mesenteric lymphatic pump and its responsiveness to acute edemagenic stress. Am. J. Physiol. 257, H2059-H2059 (1989).
  4. Davis, M. J., Davis, A. M., Ku, C. W., Gashev, A. A. Myogenic constriction and dilation of isolated lymphatic vessels. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 296, H293-H293 (2009).
  5. Dougherty, P. J., Davis, M. J., Zawieja, D. C., Muthuchamy, M. Calcium sensitivity and cooperativity of permeabilized rat mesenteric lymphatics. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 294, R1524-R1524 (2008).
  6. Fay, F. S., Shlevin, H. H., Granger, W. C., Taylor, S. R. Aequorin luminescence during activation of single isolated smooth muscle cells. Nature. 280, 506-506 (1979).
  7. Wang, W. Inhibition of myosin light chain phosphorylation decreases rat mesenteric lymphatic contractile activity. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 297, 726-726 (2009).
  8. Karaki, H. Calcium movements, distribution, and functions in smooth muscle. Pharmacol. Rev. 49, 157-157 (1997).
  9. Ratz, P. H., Berg, K. M., Urban, N. H., Miner, A. S. Regulation of smooth muscle calcium sensitivity: KCl as a calcium-sensitizing stimulus. Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 288, C769-C769 (2005).
  10. Somlyo, A. P., Somlyo, A. V. Ca2+ sensitivity of smooth muscle and nonmuscle myosin II: modulated by G proteins, kinases, and myosin phosphatase. Physiol. Rev. 83, 1325-1325 (2003).
  11. Souza-Smith, F. M., Kurtz, K. M., Molina, P. E., Breslin, J. W. Adaptation of mesenteric collecting lymphatic pump function following acute alcohol intoxication. Microcirculation. 17, 514-514 (2010).
  12. Breslin, J. W., Yuan, S. Y., Wu, M. H. VEGF-C alters barrier function of cultured lymphatic endothelial cells through a VEGFR-3-dependent mechanism. Lymphat. Res. Biol. 5, 105-105 (2007).
  13. Shirasawa, Y., Benoit, J. N. Stretch-induced calcium sensitization of rat lymphatic smooth muscle. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 285, H2573-H2573 (2003).
  14. Imtiaz, M. S. Pacemaking through Ca2+ stores interacting as coupled oscillators via membrane depolarization. Biophys. J. 92, 3843-3843 (2007).
  15. Muller, J. M., Davis, M. J., Kuo, L., Chilian, W. M. Changes in coronary endothelial cell Ca2+ concentration during shear stress- and agonist-induced vasodilation. Am. J. Physiol. 276, 1706-1706 (1999).
  16. Ferrusi, I., Zhao, J., van Helden, D., von der Weid, P. Y. Cyclopiazonic acid decreases spontaneous transient depolarizations in guinea pig mesenteric lymphatic vessels in endothelium-dependent and -independent. 286, H2287-H2287 (2004).
check_url/kr/3438?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Souza-Smith, F. M., Kurtz, K. M., Breslin, J. W. Measurement of Cytosolic Ca2+ in Isolated Contractile Lymphatics. J. Vis. Exp. (58), e3438, doi:10.3791/3438 (2011).

View Video