Summary

Medición de la citosólica de Ca 2 + En aislados linfáticos contráctil

Published: December 08, 2011
doi:

Summary

Se introduce un enfoque para evaluar la citosólica de Ca<sup> 2 +</sup> Concentración en los vasos linfáticos aislados para estudiar Ca<sup> 2 +</sup>-Dependiente y Ca<sup> 2 +</sup> Sensibilizante mecanismos de contracción del músculo liso linfático.

Abstract

Los vasos linfáticos forman un sistema de transporte multifuncional que mantiene la homeostasis de fluidos, proporciona los lípidos de la circulación central, y actúa como un sistema de vigilancia para los antígenos potencialmente peligrosos, la optimización de inmunidad de la mucosa y la respuesta inmune adaptativa 1. Linfático está formado por el líquido intersticial que entra ciegos composición linfáticos iniciales, y luego se transporta en contra de un gradiente de presión en los vasos linfáticos más grandes de recolección. Cada linfático recolección se compone de una serie de segmentos llamados linfangiones, separados por válvulas bicúspides que evitar el reflujo. Cada lymphangion posee un ciclo de contracción que impulsa la linfa en contra de un gradiente de presión hacia la circulación central 2. Este patrón de contracción fásica es análoga a la del ciclo cardíaco, con fases sistólica y diastólica, y con una contracción del 4 de baja frecuencia. Además, el músculo liso linfático genera tono y muestra la constricción y la dilatación miogénica in respuesta a los aumentos y disminuciones en la presión luminal, respectivamente 5. Un híbrido de los mecanismos moleculares que apoyan tanto la contractilidad fásica y tónica de los linfáticos Así, se proponen.

Contracción del músculo liso está regulada por la citosólica de Ca 2 + de concentración ([Ca 2 +] i), además de la sensibilidad a Ca 2 +, de los elementos contráctiles en respuesta a cambios en el entorno que rodea la célula 6. [Ca 2 +] i se determina por la combinación del movimiento de la Ca 2 + a través de la membrana plasmática del ligando o voltaje de Ca2 + y los canales de la liberación y absorción de Ca 2 + en las tiendas internas. Citosólica de Ca 2 + se une a la calmodulina y activa las enzimas tales como la cadena ligera de la miosina (MLC) quinasa (MLCK), que a su vez fosforila MLC que conduce a la actina-miosina mediada por la contracción 8. Sin embargo, la sensibilidad de esta vía a Ca <sup> 2 + puede ser regulada por la fosfatasa MLC (PCML) 9. PCML actividad está regulada por la Rho quinasa (ROCK) y la fosfatasa miosina inhibidor de la proteína CPI-17.

A continuación, presentamos un método para evaluar los cambios en la [Ca 2 +] i en el tiempo en los vasos linfáticos aislados, perfundidos con el fin de estudiar Ca 2 +-dependiente y Ca 2 +-sensibilizar a los mecanismos de contracción del músculo liso linfático. El uso aislado linfáticos mesentéricos de ratas se estudió la recogida estirar los cambios inducidos en el [Ca 2 +] i y la actividad contráctil. El modelo linfático aislado ofrece la ventaja de que la presión, el flujo y la composición química de la solución del baño puede ser muy controlado. [Ca 2 +] i fue determinada por la carga de vasos linfáticos con el radiométrica, Ca 2 +-unión del colorante Fura-2. Estos estudios proporcionan un nuevo enfoque al problema más amplio de estudio de los diferentes mecanismos moleculares que regulan fásicacontracciones tónico contra la constricción del músculo liso linfático.

Protocol

1. Los animales Todos los procedimientos fueron aprobados por el Cuidado de Animales institucional y el empleo en la Louisiana State University Health Sciences Center, y se realizaron de acuerdo con las directrices del Instituto Nacional de Salud (NIH publicación N º 85-12, revisada en 1996). Las ratas macho Sprague-Dawley (Charles River Laboratories, 270-350 g de peso corporal) fueron alojados en una temperatura controlada (22 ° C) y la iluminación controlada (12:12 h ciclo de luz oscuridad) medio ambien…

Discussion

Una nueva combinación de métodos se emplean para el estudio intrínseco de bombeo de los vasos linfáticos. La capacidad de medir simultáneamente los cambios en la [Ca 2 +] i y el diámetro de los vasos linfáticos de bombeo permitirá que para el estudio de las contribuciones relativas de Ca 2 +-dependiente y Ca 2 +-sensibilizar a las vías de señalización en el mecanismo general que rigen el ciclo de contracción linfático.

El ciclo de cont…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

<p class="jove_content"> Este trabajo fue apoyado por el NIH subvención P20RR018766 y una subvención de la ABMRF / Fundación para la Investigación del Alcohol.</p>

Materials

<tdChemical
1. Ringer 5x Stock
Company Catalog Number Amount
Sodium Chloride EMD SX0420-3 35 g
Potassium Chloride J.T. Baker 3040 1.75 g
Calcium Chloride Sigma C-3881 1.47 g
Magnesium Sulfate Sigma M-9397 1.44 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4 °C
       
2. MOPS buffer      
Chemical Company Catalog Number Amount
MOPS Sigma M3183 125.6 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4 °C
       
3. Albumin Physiological Salt Solution (APSS)
Chemical Company Catalog Number Amount
Ringer stock (5x) N/A N/A 200 mL
Mops Buffer N/A N/A 5 mL
Sodium Phosphate Sigma S-9638 0.168 g
Sodium Pyruvate Sigma P5280 0.22 g
EDTA sodium salt Sigma ED2SS 0.0074 g
Glucose Sigma G7528 0.901 g
Albumin, Bovine USB 10856 10 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Adjust pH to 7.4 at 37° C, then sterile filter into autoclaved bottles and store at 4 °C.

Table 1. Specific Reagents Used. Store all at 4 °C.

References

  1. Chakraborty, S. Lymphatic system: a vital link between metabolic syndrome and inflammation. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1207, 94-94 (2010).
  2. Zawieja, D. Lymphatic biology and the microcirculation: past, present and future. Microcirculation. 12, 141-141 (2005).
  3. Benoit, J. N., Zawieja, D. C., Goodman, A. H., Granger, H. J. Characterization of intact mesenteric lymphatic pump and its responsiveness to acute edemagenic stress. Am. J. Physiol. 257, H2059-H2059 (1989).
  4. Davis, M. J., Davis, A. M., Ku, C. W., Gashev, A. A. Myogenic constriction and dilation of isolated lymphatic vessels. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 296, H293-H293 (2009).
  5. Dougherty, P. J., Davis, M. J., Zawieja, D. C., Muthuchamy, M. Calcium sensitivity and cooperativity of permeabilized rat mesenteric lymphatics. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 294, R1524-R1524 (2008).
  6. Fay, F. S., Shlevin, H. H., Granger, W. C., Taylor, S. R. Aequorin luminescence during activation of single isolated smooth muscle cells. Nature. 280, 506-506 (1979).
  7. Wang, W. Inhibition of myosin light chain phosphorylation decreases rat mesenteric lymphatic contractile activity. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 297, 726-726 (2009).
  8. Karaki, H. Calcium movements, distribution, and functions in smooth muscle. Pharmacol. Rev. 49, 157-157 (1997).
  9. Ratz, P. H., Berg, K. M., Urban, N. H., Miner, A. S. Regulation of smooth muscle calcium sensitivity: KCl as a calcium-sensitizing stimulus. Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 288, C769-C769 (2005).
  10. Somlyo, A. P., Somlyo, A. V. Ca2+ sensitivity of smooth muscle and nonmuscle myosin II: modulated by G proteins, kinases, and myosin phosphatase. Physiol. Rev. 83, 1325-1325 (2003).
  11. Souza-Smith, F. M., Kurtz, K. M., Molina, P. E., Breslin, J. W. Adaptation of mesenteric collecting lymphatic pump function following acute alcohol intoxication. Microcirculation. 17, 514-514 (2010).
  12. Breslin, J. W., Yuan, S. Y., Wu, M. H. VEGF-C alters barrier function of cultured lymphatic endothelial cells through a VEGFR-3-dependent mechanism. Lymphat. Res. Biol. 5, 105-105 (2007).
  13. Shirasawa, Y., Benoit, J. N. Stretch-induced calcium sensitization of rat lymphatic smooth muscle. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 285, H2573-H2573 (2003).
  14. Imtiaz, M. S. Pacemaking through Ca2+ stores interacting as coupled oscillators via membrane depolarization. Biophys. J. 92, 3843-3843 (2007).
  15. Muller, J. M., Davis, M. J., Kuo, L., Chilian, W. M. Changes in coronary endothelial cell Ca2+ concentration during shear stress- and agonist-induced vasodilation. Am. J. Physiol. 276, 1706-1706 (1999).
  16. Ferrusi, I., Zhao, J., van Helden, D., von der Weid, P. Y. Cyclopiazonic acid decreases spontaneous transient depolarizations in guinea pig mesenteric lymphatic vessels in endothelium-dependent and -independent. 286, H2287-H2287 (2004).
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Cite This Article
Souza-Smith, F. M., Kurtz, K. M., Breslin, J. W. Measurement of Cytosolic Ca2+ in Isolated Contractile Lymphatics. J. Vis. Exp. (58), e3438, doi:10.3791/3438 (2011).

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