Summary

RNAi-medieret Gene Knockdown og<em> In Vivo</em> Diurese Assay i Voksen Kvinde<em> Aedes aegypti</em> Myg

Published: July 14, 2012
doi:

Summary

I denne protokol vi kombinerer RNAi-medieret gen silencing med en<em> In vivo</em> Diurese assay til at studere virkningerne knockdown af gener af interesse har på myg fluid udskillelse.

Abstract

Denne video protokol viser en effektiv teknik til at Knockdown et bestemt gen i et insekt og udføre en ny bioassay at måle udskillelse. Denne fremgangsmåde kan anvendes til at opnå en bedre forståelse af processen diurese i insekter, og er især nyttig ved undersøgelse af diurese i blod-fodring arthropoder, som er i stand til at optage store mængder væske i en enkelt blodmel.

Dette RNAi-medieret gen knockdown kombineret med en in vivo-diurese assay blev udviklet af Hansen laboratoriet at undersøge virkningerne af RNAi-medieret knockdown af aquaporin gener på Aedes aegypti myg diurese 1.

Protokollen er setup i to dele: den første demonstration viser, hvordan man kan konstruere en simpel myg injektionsanordning og hvordan man kan forberede og injicere dsRNA i thorax af myg for RNAi-medieret gen knockdown. Den anden demonstration viser, hvordan man fastlæggerudskillelseshastigheder i myg ved hjælp af et in vivo bioassay.

Protocol

Del I – RNAi-medieret gen knockdown i voksen Aedes aegypti myg. Til eksperiment oversigt se figur 1. 1. dsRNA Syntese Syntetisere specifikke dsRNAs mod gener af renter og kontrol dsRNAs. Bemærk: Det anbefales at udvikle primere til PCR-fragmenter i området fra 300 til 500 basepar placeret ved 3'-enden af den specifikke cDNA 2 og med T7-primeren sekvensen bundet i 5'-enden (5'-TAA TAC GAC TCA CTA TAG GG-3 '). Entydighed af de frag…

Discussion

Det RNAi anvendte protokol er blevet udviklet i laboratoriet af Alexander Raikhel ved University of California Riverside 6,7 og svarer til en protokol udgivet af Garver og Dimopoulos 4. Den eksperimentelle fremgangsmåde er vist i denne video protokol kan anvendes til at studere gener involveret i insekt diurese i en in vivo omgivelser. De ekskretionsorganerne af insekter, de Malpighian tubuli, har tiltrukket sig interesse for generationer af forskere som en "simpel" mod…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Victoria Carpenter for hendes kritiske kommentarer i denne protokol.

Materials

Name of reagent or equipment Company Catalogue number Comments
MEGAscript T7 High Yield Kit Ambion, Inc. AM1334
PBS buffer Sigma-Aldrich P4417
Plastic tubing Local vendor PVC
1 ml plastic pipette tip VWR 83007-376 Blue tip
1 ml syringe Becton, Dickinson and Company 309602
Scissors Local vendor
Metal needle Carolina Biologicals 654307 Size 5
Fly pad Genesee Scientific 789060
Battery-powered aspirator w/ collection vial UPMA Labs IPMM 2000
Fine tip forceps World Precision Instruments 14095
Glass capillary needles World Precision Instruments 1B200-6
Stereo dissection microscope Leica Microsystems S6D
Analytical precision balance Mettler Toledo AB54S
Sucrose Sigma-Aldrich 84097
One pint waxed lined cardboard cups Local vendor Manufactured soup cups
Mesh net Local vendor plastic fly gauze

References

  1. Drake, L. L., et al. The Aquaporin gene family of the yellow fever mosquito, Aedes aegypti. PloS one. 5, e15578 (2010).
  2. Shepard, A. R., Jacobson, N., Clark, A. F. Importance of quantitative PCR primer location for short interfering RNA efficacy determination. Analytical biochemistry. 344, 287-288 (2005).
  3. Altschul, S. F., et al. Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs. Nucleic acids research. 25, 3389-3402 (1997).
  4. Garver, L., Dimopoulos, G. Protocol for RNAi Assays in Adult Mosquitoes (A. gambiae). J. Vis. Exp. (5), e230 (2007).
  5. Clements, A. N. Volume 1 Development, Nutrition, and Reproduction. The Biology of Mosquitoes. 2, (1992).
  6. Hansen, I. A., Attardo, G. M., Park, J. H., Peng, Q., Raikhel, A. S. Target of rapamycin-mediated amino acid signaling in mosquito anautogeny. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 10626-10631 (2004).
  7. Hansen, I. A., Attardo, G. M., Roy, S. G., Raikhel, A. S. Target of rapamycin-dependent activation of S6 kinase is a central step in the transduction of nutritional signals during egg development in a mosquito. The Journal of biological chemistry. 280, 20565-20572 (2005).
  8. Pannabecker, T. Physiology of the Malpighian Tubule. Annual review of entomology. 40, 493-510 (1995).
  9. Dow, J. New insights into Malpighian tubule function from functional genomics. Comp Biochem Phys A. 150, S135 (2008).
  10. Dow, J. A. T. Insights into the Malpighian tubule from functional genomics. Journal of Experimental Biology. 212, 435-445 (2009).
  11. Lawson, D., et al. VectorBase: a data resource for invertebrate vector genomics. Nucleic acids research. 37, 583-587 (2009).
  12. Beyenbach, K. W. Transport mechanisms of diuresis in Malpighian tubules of insects. J. Exp. Biol. 206 (Pt 21), 3845-3856 (2003).
  13. Coast, G. M. Continuous recording of excretory water loss from Musca domestica using a flow-through humidity meter: hormonal control of diuresis. Journal of insect physiology. 50, 455-468 (2004).
  14. Kersch, C. N., Pietrantonio, P. V. Mosquito Aedes aegypti (L.) leucokinin receptor is critical for in vivo fluid excretion post blood feeding. FEBS letters. 585, 3507-3512 (2011).
  15. Hays, A. R., Raikhel, A. S. A novel protein produced by the vitellogenic fat body and accumulated in mosquito oocytes. Development Genes and Evolution. 199, 114-121 (1990).
check_url/kr/3479?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Drake, L. L., Price, D. P., Aguirre, S. E., Hansen, I. A. RNAi-mediated Gene Knockdown and In Vivo Diuresis Assay in Adult Female Aedes aegypti Mosquitoes. J. Vis. Exp. (65), e3479, doi:10.3791/3479 (2012).

View Video