Summary

Coltura e Applicazioni di bioreattore rotante Vessel parete Derivato di modelli 3D di cellule epiteliali

Published: April 03, 2012
doi:

Summary

Un rotante sistema di coltura cellulare che consente alle cellule epiteliali di crescere in condizioni fisiologiche con conseguente 3-D formazione di aggregati cellulare viene descritto. Gli aggregati di visualizzazione generato<em> In vivo</em> Caratteristiche simili non osservata in modelli di colture convenzionali e servire come un sistema più accurato modello di organotipica per una moltitudine di ricerche scientifiche.

Abstract

Cellule e tessuti in condizioni di sperimentare il corpo ambientali che influenzano la loro architettura, le comunicazioni intercellulari e le funzioni generali. Per i modelli cellulari in coltura in vitro per simulare con precisione il tessuto di interesse, l'ambiente di crescita della cultura è un aspetto critico da considerare. Comunemente utilizzati convenzionali sistemi di coltura cellulare propagano cellule epiteliali su superfici piane bidimensionali (2-D) impermeabili. Sebbene molto sia stato appreso dai sistemi convenzionali di coltura cellulare, molti risultati non sono riproducibili in studi clinici umani o espianti di tessuto, potenzialmente a causa della mancanza di un microambiente fisiologicamente rilevante.

Qui, si descrive un sistema di coltura che supera molti dei confini delle condizioni di coltura di 2-D colture cellulari, utilizzando l'innovativo rotante parete del vaso (RWV) tecnologia bioreattore. Noi e altri hanno mostrato che organotipiche RWV derivati ​​i modelli possono ricapitolare Structure, la funzione e autentiche risposte umane a stimoli esterni in modo simile ai tessuti umani espianti 1-6. Il bioreattore RWV è un sistema di coltura in sospensione che consente la crescita di cellule epiteliali in condizioni fisiologiche bassa fluido di taglio. I bioreattori sono disponibili in due diversi formati, ad alta aspetto recipiente rotante (Harv) o una lenta rotazione vaso laterale (STLV), in cui si distinguono per la loro fonte aerazione. Le cellule epiteliali vengono aggiunti al bioreattore di scelta in combinazione con porosi, collagene perle rivestite microveicolo (Figura 1A). Le cellule utilizzano le perline come una crescita ponteggio durante la caduta libera costante nel bioreattore (figura 1B). Il microambiente fornito dal bioreattore permette alle cellule di formare aggregati tridimensionali (3-D) mostrano in vivo caratteristiche simili spesso non osservata sotto standard 2-D condizioni di coltura (Figura 1D). Queste caratteristiche includono giunzioni strette, MUCCi produzione, apicale / basale orientamento, nella localizzazione delle proteine ​​vivo, e ulteriori cellule epiteliali di tipo proprietà specifiche.

La progressione da un monostrato di cellule epiteliali completamente differenziate 3-D aggregato varia in base al tipo di cellula 1, 7-13. Campionamento periodico dal bioreattore consente il monitoraggio del epiteliale formazione di aggregati, marcatori di differenziazione cellulare e vitalità (Figura 1D). Una volta che la differenziazione cellulare e formazione di aggregati è stabilito, le cellule sono raccolte dal bioreattore, e simili saggi eseguiti su cellule 2-D possono essere applicati agli aggregati 3-D con alcune considerazioni (Figura 1E-G). In questo lavoro, si descrive la procedura dettagliata di come la cultura in 3-D aggregati di cellule epiteliali del sistema di bioreattore RWV e una varietà di potenziali saggi e analisi che possono essere eseguiti con le 3-D aggregati. Queste analisi includono, ma non sono limitati a, strutturale / mAnalisi orphological (confocale, scansione e microscopia elettronica a trasmissione), di citochine / chemochine e la secrezione di segnalazione cellulare (mediante citometria a matrice tallone e Western blot), le analisi di espressione genica (real-time PCR), tossicologiche / droga analisi e interazioni ospite-patogeno. L'utilizzo di questi test creato le basi per studi più approfonditi ed espansivo come metabolomica, trascrittomica, proteomica e di altre applicazioni basate su array. Il nostro obiettivo è quello di presentare una non convenzionali mezzi di coltura di cellule epiteliali umane per produrre organotipiche modelli 3-D che ricapitolano l'essere umano nel tessuto vivo, in un sistema facile e robusto per essere utilizzato da ricercatori con diversi interessi scientifici.

Protocol

Tutte le procedure devono essere effettuate sotto BSL-2 condizioni di una cappa a flusso laminare. 1. Preparazione del bioreattore STLV Assemblare il bioreattore STLV secondo il protocollo del produttore ed eseguire protocollo di disintossicazione per garantire la sterilità del bioreattore. Coprire le porte aperte con tappi luer e riempire il STLV con il 95% di etanolo per 24 ore. Rimuovere etanolo e riempire la STLV con acqua distillata sterilizzata per 24 h. …

Discussion

L'utilizzo della tecnologia bioreattore RWV qui presentato può fornire ai ricercatori la possibilità di avanzare la loro attuale sistema di coltura cellulare per un modello più fisiologicamente rilevanti organotipica coltura cellulare. Il sistema di bioreattore RWV coltura cellulare fornisce un microambiente shear a bassa che permette alle cellule di formare aggregati cellulari 3-D in vivo, con caratteristiche simili, comprese le giunzioni strette, la produzione di mucina, processi extracellulari (es. mi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori desiderano ringraziare Brooke Hjelm per la sua competenza tecnica e Andrew Larsen per la sua analisi delle proteine. Questo lavoro è stato finanziato in parte dal Development Alternatives Research Foundation (MMHK) Grant e il NIH NIAID infezioni sessualmente trasmesse e microbicidi topici Cooperative Research Center IU19 AI062150-01 (MMHK). Riconosciamo con gratitudine Biology of Reproduction per il riutilizzo dei dati.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Alexa Fluor 488 Invitrogen A21131 Used at 1:500 dilution
FACSDiva BD   Flow cytometer
β-tublin antibody Calbiochem 654162 Used at 1:5000 dilution
Bio-Plex 2000 BioRad 171-000205 v5 software
Bioreactor and components Synthecon RCCS-4  
Cell strainer BD Falcon 352340 40μm pore size
Conical tube (50mL) Corning 5-538-60  
Coverslips VWR 48366067  
Cytokine bead array kits BioRad Custom human kit  
Cytodex beads Sigma C3275  
DPBS Gibco 14190  
EDTA Sigma ED-500G Ethylenediaminetetraacetic acid
Epithelial specific antibody (ESA) Chemicon CBL251 Used at 1:50 dilution
Fetal Bovine Serum (FBS) Gibco 10438 Heat inactivated
HARV (Disposable) Synthecon D-405  
Hydrochloric acid Sigma 258148 37%
Involucrin antibody Sigma I 9018  
Microscope slides VWR 16004-368  
MTT reagent MP Biomedicals, LLC 194592 3-(4,5-Dimethylthiazolyl 1-2)-2,5-Diphenyl Tetrazolium Bromide
MUC1 antibody (microscopy) Santa Cruz Sc-7313 Used at 1:50 dilution
MUC1 antibody (flow cytometry) BD Pharmingen 559774 Also called CD227, use 20μL per test
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 Diluted to 4% in DPBS
Petri dish (small) BD Falcon 353002  
Polystyrene tube with filter BD Falcon 352235  
Polystyrene flow tube BD Falcon 352058  
PR antibody DAKO M3569 Used at 1:100 dilution
ProLong Gold Invitrogen P36931 Mounting media with DAPI
RNeasy Mini Kit Qiagen 74903  
Sodium dodecyl sulfate Sigma 71725  
Sterilization pouch VWR 11213-035  
Stopcocks (one-way) Medex MX5061L  
Syringe (10mL) BD 309604 Luer-lock tip
Syringe (5mL) BD 309603 Luer-lock tip
Trypan Blue Invitrogen T10282  
Vp5 antibody Santa Cruz sc-13525 HSV-2 antibody Clone 6F10; used at 1:5000 dilution

References

  1. Herbst-Kralovetz, M. M., et al. Quantification and comparison of toll-like receptor expression and responsiveness in primary and immortalized human female lower genital tract epithelia. Am. J. Reprod. Immunol. 59 (3), 212-224 (2008).
  2. Hjelm, B. E., Berta, A. N., Nickerson, C. A., Arntzen, C. J., Herbst-Kralovetz, M. M. Development and characterization of a three-dimensional organotypic human vaginal epithelial cell model. Biol. Reprod. 82, 617-627 (2009).
  3. Khaoustov, V. I., et al. Induction of three-dimensional assembly of human liver cells by simulated microgravity. In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 35, 501-509 (1999).
  4. Papadaki, M., et al. Tissue engineering of functional cardiac muscle: molecular, structural, and electrophysiological studies. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 280, 168-178 (2001).
  5. Ishikawa, M., et al. Reconstitution of hepatic tissue architectures from fetal liver cells obtained from a three-dimensional culture with a rotating wall vessel bioreactor. J. Biosci. Bioeng. 111, 711-718 (2011).
  6. Carvalho, H. M., Teel, L. D., Goping, G., O’Brien, A. D. A three-dimensional tissue culture model for the study of attach and efface lesion formation by enteropathogenic and enterohaemorrhagic Escherichia coli. Cell Microbiol. 7, 1771-1781 (2005).
  7. Nickerson, C. A., et al. Three-dimensional tissue assemblies: novel models for the study of Salmonella enterica serovar Typhimurium pathogenesis. Infection and Immunity. 69, 7106-7120 (2001).
  8. Honer zu Bentrup, K., et al. Three-dimensional organotypic models of human colonic epithelium to study the early stages of enteric salmonellosis. Microbes Infect. 8, 1813-1825 (2006).
  9. Carterson, A. J., et al. A549 lung epithelial cells grown as three-dimensional aggregates: alternative tissue culture model for Pseudomonas aeruginosa pathogenesis. Infection and Immunity. 73, 1129-1140 (2005).
  10. Smith, Y. C., Grande, K. K., Rasmussen, S. B., O’Brien, A. D. Novel three-dimensional organoid model for evaluation of the interaction of uropathogenic Escherichia coli with terminally differentiated human urothelial cells. Infection and Immunity. 74, 750-757 (2006).
  11. Sainz, B., TenCate, V., Uprichard, S. L. Three-dimensional Huh7 cell culture system for the study of Hepatitis C virus infection. Virol J. 6, 103 (2009).
  12. Duray, P. H., et al. Invasion of human tissue ex vivo by Borrelia burgdorferi. J. Infect Dis. 191, 1747-1754 (2005).
  13. Margolis, L. B., et al. Lymphocyte trafficking and HIV infection of human lymphoid tissue in a rotating wall vessel bioreactor. AIDS Res. Hum. Retroviruses. 13, 1411-1420 (1997).
  14. Reed, L. J., Muench, H. A simple method of estimating fifty percent endpoints. Am. J. Hyg. 27, 493-497 (1938).
  15. Beer, B. E., et al. In vitro preclinical testing of nonoxynol-9 as potential anti-human immunodeficiency virus microbicide: a retrospective analysis of results from five laboratories. Antimicrob Agents Chemother. 50, 713-723 (2006).
  16. Hickey, D. K., Patel, M. V., Fahey, J. V., Wira, C. R. Innate and adaptive immunity at mucosal surfaces of the female reproductive tract: stratification and integration of immune protection against the transmission of sexually transmitted infections. J. Reprod. Immunol. 88, 185-194 (2011).
  17. Andersch-Bjorkman, Y., Thomsson, K. A., Holmen Larsson, J. M., Ekerhovd, E., Hansson, G. C. Large scale identification of proteins, mucins, and their O-glycosylation in the endocervical mucus during the menstrual cycle. Mol. Cell Proteomics. 6, 708-716 (2007).
  18. Barrila, J., et al. 3D cell culture models: Innovative platforms for studying host-pathogen interactions. Nature Reviews Microbiology. 8, 791-801 (2010).
  19. Vamvakidou, A. P., et al. Heterogeneous breast tumoroids: An in vitro assay for investigating cellular heterogeneity and drug delivery. J. Biomol Screen. 12, 13-20 (2007).
  20. Jin, F., et al. Establishment of three-dimensional tissue-engineered bone constructs under microgravity-simulated conditions. Artif Organs. 34, 118-125 (2010).
  21. Vertrees, R. A., et al. Development of a three-dimensional model of lung cancer using cultured transformed lung cells. Cancer Biol Ther. 8, 356-365 (2009).
  22. Hwang, Y. S., et al. The use of murine embryonic stem cells, alginate encapsulation, and rotary microgravity bioreactor in bone tissue engineering. Biomaterials. 30, 499-507 (2009).
  23. Pei, M., He, F., Kish, V. L., Vunjak-Novakovic, G. Engineering of functional cartilage tissue using stem cells from synovial lining: a preliminary study. Clin. Orthop Relat. Res. 466, 1880-1889 (2008).
check_url/kr/3868?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Radtke, A. L., Herbst-Kralovetz, M. M. Culturing and Applications of Rotating Wall Vessel Bioreactor Derived 3D Epithelial Cell Models. J. Vis. Exp. (62), e3868, doi:10.3791/3868 (2012).

View Video