Summary

Sıçan Embriyonik Nöral Hücre İzolasyonu ve Kültür: Bir Hızlı Protokol

Published: May 24, 2012
doi:

Summary

Biz kemirgen embriyolardan hipokampal ve kortikal nöronlar yalıtmak ve kültürüne hızlı bir metodoloji tanıtılmıştır. Bu protokol bize neredeyse saf nöronal kültürlerin gerekli olduğu deneyler yapmasına imkan tanıyor.

Abstract

Biz E15-17 rat embriyoları hipokampal veya kortikal nöronların ayırmak ve kültür için hızlı bir yöntem tarif edilir. Prosedürü fare ve insan birincil nöronlar ve sinir progenitörlerin izolasyonu başarıyla uygulanabilir. Ayrışmış nöronlar ila birkaç hafta serum içermeyen aracı madde içinde muhafaza edilir. Bu kültürler nucleofection, immünsitokimya, nükleik asit hazırlanması yanı sıra elektrofizyoloji için de kullanılabilir. Büyük nöronal kültürler da iyi bir verim lentiviral transdüksiyonu ile oranı ve daha az etkin bir şekilde, kalsiyum fosfat ya da bu gibi lipid lipofektamin bazlı yöntem ile transfekte edilebilir.

Protocol

1. Poli-D-Lizin (PDL): Hazırlanması 1 mg / ml 'lik bir stok solüsyonu elde etmek için PDL 5 mg steril GKD 2 O 5 ml ilave edilir. Birkaç kez pipetleme tarafından stok solüsyonu karıştırın. Hemen kullanın veya 2-8 Poly-D-Lizin Çözüm saklamak ° C 2. Poly-D-Lizin (PDL): Kaplama Plastik Hücre Kültürü Yemekleri Steril GKD 2 O ile 10 ug / ml 'lik nihai konsantrasyona PDL stok solüsyonu ile seyreltilir…

Discussion

Rat hipokampal ve kortikal nöronların diseksiyon ve kültür yöntemi burada açıklanan kimyasal olarak tanımlanmış bir orta (Şekil 3) yetiştirilen yaklaşık saf nöronal kültürlerin kullanıldığı deneyler sağlar. Serumsuz medya kültürü neredeyse saf nöronlar için protokolleri daha önce 2,3,4 tanımlanmış olmasına karşın, bizim yöntem yapılan önemli değişiklikler vardır. Geleneksel protokolleri farklı (yani Banker ve ark.) 5, biz TrypLE Express, dah…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Biz editoryal yardım için Jonna Ellis teşekkür ederim. Ruh Sağlığı Ulusal Enstitüsü: açıklanan proje Ödülü Numarası R01MH079751 (F. Peruzzi PI) tarafından desteklenmiştir. Içeriği sadece yazarların sorumluluğundadır ve mutlaka Ruh Sağlığı Ulusal Enstitüsü veya Ulusal Sağlık Enstitüleri resmi görüşlerini temsil etmez.

Materials

Reagent Concentration
Neurobasal 98%
B27 2%
Glutamax 0.5 mM

Table I. Neurobasal/B27 complete medium.

Reagent Concentration
Glucose 16 mM
Sucrose 22 mM
HEPES 10 mM
NaCl 160 mM
KCl 5 mM
Na2HPO4 1 mM
KH2PO2 0.22 mM
Gentamicin 50 μg/ml
Fungizone 250 ng/ml
pH 7.4
Osmolarity 320-330 mOsm

Table II. Dissection medium.

Reagent Volume (μl)
Neurobasal/B27 complete medium 240
Trypan Blue Stain 0.4% 250
Total 490

Table III. 50x Counting solution.

Reagent Company Cat. number
Hibernate E Brainbits 767171
Neurobasal Gibco, Invitrogen 21103-049
B27 Gibco, Invitrogen 17504-044
Fungizone Gibco, Invitrogen 15290-018
Gentamicin sulfate Sigma Aldrich G1264
Glutamax 200 mM Gibco, Invitrogen 35050
TrypLE Express w/o phenol red Gibco, Invitrogen 12604
Cytosine-β-D-arabinofuranoside hydrochloride Sigma Aldrich C6645
Poly-D-Lysine Sigma Aldrich P6407
Laminin 1 mg/ml Millipore CC095
HEPES Sigma Aldrich H3375
Trypan Blue Stain 0.4% Gibco, Invitrogen 15250

Table IV. Specific reagents.

Equipment Company Cat. number
Stereo Microscope Olympus SZ61
Large Forceps FST 11022-14
Fine-tipped forceps Moria MC40B
Micro fine-tipped forceps Moria MC31
Razor-sharp scissors Roboz RS-6820
Micro Dissecting scissors FST 91460-11
Micro Dissecting Curved scissors FST 14067-11
Glass 2-chamber slides Lab-Tek 154461
60 mm dishes BD Falcon 353002
100 mm dishes Corning 430167
15 ml tubes BD Falcon 352099
1.5 ml cryo-tube vial Nunc 375353

Table V. Specific equipment.

References

  1. Aprea, S. Tubulin-mediated binding of human immunodeficiency virus-1 Tat to the cytoskeleton causes proteasomal-dependent degradation of microtubule-associated protein 2 and neuronal damage. J. Neurosci. 26, 4054-4062 (2006).
  2. Kivell, B. M., McDonald, F. J., Miller, J. H. Serum-free culture of rat post-natal and fetal brainstem neurons. Brain Res. Dev. Brain Res. 120, 199-210 (2000).
  3. Kivell, B. M., McDonald, F. J., Miller, J. H. Method for serum-free culture of late fetal and early postnatal rat brainstem neurons. Brain Res. Brain Res. Protoc. 6, 91-99 (2001).
  4. Brewer, G. J. Serum-free B27/neurobasal medium supports differentiated growth of neurons from the striatum, substantia nigra, septum, cerebral cortex, cerebellum, and dentate gyrus. J. Neurosci. Res. 42, 674-683 (1995).
  5. Banker, G., Goslin, K. . Culturing nerve cells. , (1998).
  6. Eletto, D. Inhibition of SNAP25 expression by HIV-1 Tat involves the activity of mir-128a. J. Cell Physiol. 216, 764-770 (2008).
  7. Gualco, E. IGF-IR-dependent expression of Survivin is required for T-antigen-mediated protection from apoptosis and proliferation of neural progenitors. Cell Death Differ. 17, 439-451 (2010).
  8. Gage, F. H. Survival and differentiation of adult neuronal progenitor cells transplanted to the adult brain. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92, 11879-11883 (1995).
  9. Keyser, D. O., Pellmar, T. C. Synaptic transmission in the hippocampus: critical role for glial cells. Glia. 10, 237-243 (1994).
  10. Pfrieger, F. W., Barres, B. A. Synaptic efficacy enhanced by glial cells in vitro. Science. 277, 1684-1687 (1997).
check_url/kr/3965?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Pacifici, M., Peruzzi, F. Isolation and Culture of Rat Embryonic Neural Cells: A Quick Protocol. J. Vis. Exp. (63), e3965, doi:10.3791/3965 (2012).

View Video