Summary

Använda SecM Arrest sekvens som ett verktyg för Isolera ribosom Bundna Polypeptider

Published: June 19, 2012
doi:

Summary

Vi beskriver här en teknik som nu används rutinmässigt för att isolera stabilt bunden ribosom framväxande kedjan komplex (RNC). Denna teknik drar fördel av upptäckten att en 17 aminosyror lång SecM "gripande sekvens" kan stoppa översättning töjning i en prokaryot (<em> E. coli</em>)-System, när de sätts in (eller fuserad till C-terminalen) av praktiskt taget vilket protein som helst.

Abstract

Omfattande forskning har gett gott om bevis som tyder på att protein vika i cellen är ett samarbete translationell process 1-5. Men är den exakta väg som polypeptidkedja följer vid samtidig translationell vikning för att uppnå funktionell form fortfarande en gåta. För att förstå denna process och att bestämma den exakta utformningen av de sam-translationella hopfällbara intermediärer, är det viktigt att utveckla tekniker som gör det möjligt isolering av RNC bär begynnande kedjor av förutbestämda storlek att de kan ytterligare strukturella analys.

SecM (utsöndring monitor) är en 170 aminosyror E. coli protein som reglerar uttrycket av nedströms SecA (sekretion körning) ATPas i secM-seca operon 6. Nakatogawa och Ito funnit ursprungligen som en 17 aminosyror lång sekvens (150-FSTPVWISQA QGIRA G P-166) i den C-terminala regionen av SecM proteinet kunna räcka för attorsaka blockering av SecM töjning vid Gly165, varigenom peptidyl-glycyl-tRNA stabilt bunden till den ribosomala P-platsen 7-9. Ännu viktigare, fann man att denna 17 aminosyror långa sekvensen kan vara sammansmält med C-terminalen av praktiskt taget vilken full längd och / eller trunkerade proteinet vilket möjliggör framställning av RNC transporterar begynnande kedjor av förutbestämda storlekar 7. Således, när smält eller sättas in i mål-proteinet, producerar SecM tjuvstopp sekvens gripande av polypeptiden kedjeförlängningen och genererar en stabil RNC både in vivo i E. coli-celler och in vitro i ett cellfritt system. Sackarosgradientcentrifugering vidare användas för att isolera RNC.

De isolerade RNC kan användas för att analysera strukturella och funktionella egenskaper hos de samtidigt translationella fällbara intermediärer. Nyligen har denna teknik använts framgångsrikt för att få insikt i strukturen av ett flertal ribosom bundna begynnande kedjor 10,11,. Här beskriver vi isoleringen av bovint gamma-B-kristallin RNC smält till SecM och genereras i en in vitro-translationssystem.

Protocol

1. DNA-mall Framställning och in vitro transkription Genen av intresse klonas i någon T7 och / eller t.ex. SP6-promotorn baserad plasmid. För att erhålla RNC av intresse, är C-terminalen av målpolypeptiden förlängas genom att lägga till sekvensen gripande inducerande av SecM FXXXXWIXXXXGIRAGP 7. För att säkerställa att polypeptiden fragmentet av intresse kommer extrudera ut ur ribosomala tunneln har den C-terminala delen av mål-proteinet som skall förlängas med minst 30 amin…

Discussion

För reproducerbara resultat, kvalitet och koncentrationen av de komponenter som används för in vitro transkription och translation är kritiska. Vi har använt kommersiellt tillgängliga in vitro transkription och extrakt översättning och de ger effektiva och reproducerbara resultat, om den hanteras varsamt. Kvaliteten på mRNA kan påverka översättningen, så det är av yttersta vikt att testa integritet mRNA innan du använder den för in vitro translation. Inkubationstiden för i…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har finansierats av Human Frontier Science Program bidrag RGP0024.

Materials

Name of reagent/ Kit Company Catalogue number
MEGAscript T7 High yield Transcription Kit Ambion AM1333
RTS 100 E.coli HY Kit 5 Prime 2401100
Ribonuclease Inhibitor Invitrogen 15518012
Trans [35S]-Label MP Biomedicals 0151006
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter Unit Millipore UFC801008
Storage phosphor autoradiography GE Healthcare Typhoon 9410 variable mode imager
Density Gradient Fractionation Systems Teledyne Isco, Inc. ISCO Programmable Density Gradient System
Sucrose Gradient Centrifugation Beckman Coulter Optima L-90 K Preparative Ultracentrifuge

References

  1. Fedorov, A. N., Baldwin, T. O. Cotranslational protein folding. J. Biol. Chem. 272, 32715-32718 (1997).
  2. Hardesty, B., Kramer, G. Folding of a nascent peptide on the ribosome. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 66, 41-66 (2001).
  3. Kramer, G., Boehringer, D., Ban, N., Bukau, B. The ribosome as a platform for co-translational processing, folding and targeting of newly synthesized proteins. Nat. Struct. Mol. Biol. 16, 589-597 (2009).
  4. Komar, A. A. A pause for thought along the co-translational folding pathway. Trends Biochem. Sci. 34, 16-24 (2009).
  5. Cabrita, L. D., Dobson, C. M., Christodoulou, J. Protein folding on the ribosome. Curr. Opin. Struct. Biol. 20, 33-45 (2010).
  6. Oliver, D., Norman, J., Sarker, S. Regulation of Escherichia coli secA by cellular protein secretion proficiency requires an intact gene X signal sequence and an active translocon. J. Bacteriol. 180, 5240-5242 (1998).
  7. Nakatogawa, H., Ito, K. The ribosomal exit tunnel functions as a discriminating gate. Cell. 108, 629-636 (2002).
  8. Nakatogawa, H., Ito, K. Secretion monitor, SecM, undergoes self-translation arrest in the cytosol. Mol. Cell. 7, 185-192 .
  9. Muto, H., Nakatogawa, H., Ito, K. Genetically encoded but non polypeptide prolyl-tRNA functions in the A site for SecM-mediated ribosomal stall. Mol. Cell. 22, 545-552 (2006).
  10. Cabrita, L. D., Hsu, S. T., Launay, H., Dobson, C. M., Christodoulou, J. Probing ribosome-nascent chain complexes produced in vivo by NMR spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 22239-22244 (2009).
  11. Eichmann, C., Preissler, S., Riek, R., Deuerling, E. Cotranslational structure acquisition of nascent polypeptides monitored by NMR spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 107, 9111-9116 (2010).
  12. Kolb, V. A., Makeyev, E. V., Spirin, A. S. Enzymatic activity of the ribosome-bound nascent polypeptide. FEBS Lett. 378, 166-170 (1996).
  13. Ban, N., Nissen, P., Hansen, J., Moore, P. B. The complete atomic structure of the large ribosomal subunit at 2.4 Å resolution. Science. 289, 905-920 (2000).
  14. Voss, N. R., Gerstein, M., Steitz, T. A., Moore, P. B. The geometry of the ribosomal polypeptide exit tunnel. J. Mol. Biol. 360, 893-906 (2006).
  15. Schägger, H., von Jagow, G. Tricine-sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis for the separation of proteins in the range from 1 to 100 kDa. Anal. Biochem. 166, 368-379 (1987).
  16. Komar, A. A., Kommer, A., Krasheninnikov, I. A., Spirin, A. S. Cotranslational folding of globin. J. Biol. Chem. 272, 10646-10651 (1997).
  17. Keiler, K. C., Waller, P. R., Sauer, R. T. Role of a peptide tagging system in degradation of proteins synthesized from damaged messenger RNA. Science. 271, 990-993 (1996).
  18. Evans, M. S., Ugrinov, K. G., Frese, M. A., Clark, P. L. Homogeneous stalled ribosome nascent chain complexes produced in vivo or in vitro. Nat. Methods. 2, 757-762 (2005).
check_url/kr/4027?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jha, S. S., Komar, A. A. Using SecM Arrest Sequence as a Tool to Isolate Ribosome Bound Polypeptides. J. Vis. Exp. (64), e4027, doi:10.3791/4027 (2012).

View Video