Summary

To Metoder til heterokaryon Dannelse til Discover HCV Restriction Faktorer

Published: July 16, 2012
doi:

Summary

Vi beskriver to metoder til betinget<em> Trans</em>-Komplementering af hepatitis C virus (HCV), samling og færdiggørelsen af ​​den fulde virale livscyklus, der er afhængige af heterokaryon dannelse. Disse teknikker er egnede til at screene for cellelinier, der udtrykker dominerende begrænsning faktorer, der regulerer produktionen af ​​infektiøst HCV afkom.

Abstract

Hepatitis C virus (HCV) er en hepatotropisk virus med en værtsområdegenet begrænset til mennesker og chimpanser. Selv HCV-RNA-replikation er blevet observeret i humane ikke-hepatiske og murin cellelinier effektivitet var meget lav, og krævede lange udvælgelsesprocedurer hjælp HCV replicon konstruktioner som udtrykker dominante antibiotikum-selekterbare markører 1-5. HCV in vitro-forskning er derfor begrænset til humane hepatomaceller cellelinier permissive for virus ind og afslutning af den virale livscyklus. Grund HCV'er smalle art tropisme, er der ingen immunokompetente lille dyremodel, som holder hele HCV replikationscyklus 6-8. Ineffektiv replikation af HCV i ikke-humane celler fx af museoprindelse sandsynligvis på grund af manglende genetisk uforenelighed væsentlige vært afhængighed faktorer og / eller ekspression af restriktionssteder faktorer.

Vi undersøgte, om HCV formering er undertrykt af dominerende begrænsning FActors i enten humane cellelinjer afledt af ikke-hepatiske væv eller i muselever cellelinier. Til dette formål har vi udviklet to uafhængige betingede trans-komplementering metoder der er afhængige af somatisk celle fusion. I begge tilfælde er færdiggørelse af den virale replikationscyklus kun mulig i heterokaryoner. Følgelig vellykket trans-komplementation, som bestemmes ved at måle de novo produktion af infektiøst virusafkom, indikerer fravær af dominerende begrænsning.

Specifikt blev subgenomiske HCV replikoner der bærer et luciferase transgen transficeret ind meget permissive humane hepatomaceller (Huh-7.5-celler). Efterfølgende blev disse celler co-dyrkes og fusioneret til forskellige humane og murine celler, som udtrykker HCV-strukturelle proteiner kerne, envelope 1 og 2 (E1, E2) og accessoriske proteiner P7 og NS2. Forudsat, at cellefusion blev initieret ved behandling med polyethylenglycol (PEG), kulturen frigives infektiøs virussygdom partikel som inficerede naive celler i en receptor-afhængig måde.

At vurdere indflydelsen af dominerende begrænsning hele virale livscyklus, herunder celleindtrængen, RNA translation, replikation og viruskonstruktion, vi benyttede en human lever-cellelinie (Huh-7 Lunet N-celler 9), der mangler endogen ekspression af CD81, en væsentlig indgang faktor HCV. I fravær af ektopisk udtrykt CD81, er disse celler i det væsentlige resistente over for HCV-infektion 10. Vigtigt, når de co-dyrkes og fusioneres med celler, der udtrykker human CD81, men manglen på mindst et andet afgørende celleindtastning faktor (dvs. SR-BI, CLDN1, OCLN), kun de resulterende heterokaryoner vist det komplette sæt af HCV indrejse faktorer nødvendige for infektion. Derfor, for at analysere, om dominerende begrænsning faktorer undertrykke afslutningen af ​​HCV-replikation cyklus vi fusioneret Lunet N-celler med forskellige celler fra human-og muse oprindelse, som opfylder ovennævnte critEria. Når co-dyrkede celler blev transficeret med en meget fusogent viralt kappeprotein mutant af prototypen foamy-virus (pFV 11) og derefter udfordret med infektiøse HCV-partikler (HCVcc), blev de novo produktion af infektiøst virus observeret. Dette indikerer, at HCV fuldført sin replikationscyklus i heterokaryoner således udelukke ekspression af dominerende restriktionssteder faktorer i disse cellelinier. Disse hidtil ukendte betingede trans-komplementering fremgangsmåder vil være anvendelige til screening af et stort panel af cellelinier og primære celler til ekspression af HCV-specifikke dominerende restriktionssteder faktorer.

Protocol

Cellefusion af PEG 1. Cellekultur Kultur Huh-7.5, HeLa og Hep56.1D naive eller pakkecellelinier 12 på 15 cm celle dyrkningsskåle i DMEM komplet (DMEM cplt) medium, DMEM suppleret med 2 mM L-glutamin, 1x ikke-essentielle aminosyrer, 100 U / ml penicillin, 100 ug / ml streptomycin og 10% føtalt kalveserum. Anvende passende udvælgelse af stabile cellelinier som angivet i tabel 1. 2. Transfektion af HCV-RNA Vas…

Discussion

Vi præsenterer to metoder til at inducere heterokaryon dannelse i dyrkede celler til analyse af dominante negative begrænsninger, som udelukker HCV-replikation. Under anvendelse af disse fremgangsmåder har vi udelukket nærvær af en dominant konstitutivt udtrykt eller virus-induceret faktor i forskellige humane ikke-leveren og i murine leveren cellelinier. Den første analyse primært analyserer, hvis restriktioner faktorer forebygge HCV samling og frigivelse af infektiøst afkom. Da der i dette tilfælde pakkecelle…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er taknemmelige for Takaji Wakita og Jens Bukh til JFH1 og J6CF isolater, hhv. Derudover har vi takker Charles Ris til Huh-7.5-celler og 9E10 antistof, Steven Foung for E2-specifikt antistof CBH-23, og alle medlemmer af Institut for eksperimentel virologi, Twincore for nyttige forslag og diskussioner.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
DMEM Invitrogen, Karlsruhe, Germany 41965-039
L-glutamine Invitrogen, Karlsruhe, Germany 25030-024
Non-essential amino acids Invitrogen, Karlsruhe, Germany 11140-035
Penicillin/ streptomycin Invitrogen, Karlsruhe, Germany 15140-122
Fetal calf serum PAA, Cölbe, Germany A15151
α-E2 (CBH23) kindly provided by Steven Foung 10  
ATP Sigma, Steinheim, Germany A2833-106
Glutathione Sigma, Steinheim, Germany G4251-1G
Blasticidin Invivo Gen, San Diego, USA Ant-bl-1
G418 (geneticin) Invitrogen, Karlsruhe, Germany 11811-064
Polyethylene-glycol-1500 Roche, Mannheim, Germany 10783641001
Paraformaldehyde Roth, Karlsruhe, Germany 0335.3
Triton X-100 Roth, Karlsruhe, Germany 3051.2
Goat serum Sigma, Steinheim, Germany G9023-5mL
α-NS5A (9E10) Kindly provided by Charles Rice 7  
DAPI (4′,6′- diamidino-2-phenylindole dihydrochloride) Invitrogen D1306
Alexa-Fluor 546 – goat anti-human IgG Invitrogen, Karlsruhe, Germany A21089
Alexa-Fluor 488 – goat anti-mouse IgG Invitrogen, Karlsruhe, Germany A10680
Lipofectamine 2000 Invitrogen, Karlsruhe, Germany 11668-019
CellTracker CMTMR Invitrogen, Karlsruhe, Germany C2927
CellTracker CMFDA Invitrogen, Karlsruhe, Germany C2925
Fluoromount Sigma, Steinheim, Germany F4680-25ML
All other chemicals Roth, Karlsruhe, Germany  
Cell culture materials Sarstedt, Nümbrecht, Germany  

References

  1. Zhu, Q., Guo, J. T., Seeger, C. Replication of hepatitis C virus subgenomes in nonhepatic epithelial and mouse hepatoma cells. J. Virol. 77, 9204-9210 (2003).
  2. Kato, T. Nonhepatic cell lines HeLa and 293 support efficient replication of the hepatitis C virus genotype 2a subgenomic replicon. J. Virol. 79, 592-596 (2005).
  3. Ali, S., Pellerin, C., Lamarre, D., Kukolj, G. Hepatitis C virus subgenomic replicons in the human embryonic kidney 293 cell line. J. Virol. 78, 491-501 (2004).
  4. Date, T. Genotype 2a hepatitis C virus subgenomic replicon can replicate in HepG2 and IMY-N9 cells. J. Biol. Chem. 279, 22371-22376 (2004).
  5. Chang, K. S. Replication of hepatitis C virus (HCV) RNA in mouse embryonic fibroblasts: protein kinase R (PKR)-dependent and PKR-independent mechanisms for controlling HCV RNA replication and mediating interferon activities. J. Virol. 80, 7364-7374 (2006).
  6. Zhong, J. Robust hepatitis C virus infection in vitro. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102, 9294-9299 (2005).
  7. Lindenbach, B. D. Complete replication of hepatitis C virus in cell culture. Science. 309, 623-626 (2005).
  8. Wakita, T. Production of infectious hepatitis C virus in tissue culture from a cloned viral genome. Nat. Med. 11, 791-796 (2005).
  9. Witteveldt, J. CD81 is dispensable for hepatitis C virus cell-to-cell transmission in hepatoma cells. J. Gen. Virol. 90, 48-58 (2009).
  10. Bitzegeio, J. Adaptation of hepatitis C virus to mouse CD81 permits infection of mouse cells in the absence of human entry factors. PLoS Pathog. 6, e1000978 (2010).
  11. Lindemann, D., Goepfert, P. A. The foamy virus envelope glycoproteins. Curr Top Microbiol Immunol. 277, 111-129 (2003).
  12. Brohm, C. Characterization of determinants important for hepatitis C virus p7 function in morphogenesis by using trans-complementation. J. Virol. 83, 11682-11693 (2009).
  13. Steinmann, E., Brohm, C., Kallis, S., Bartenschlager, R., Pietschmann, T. Efficient trans-encapsidation of hepatitis C virus RNAs into infectious virus-like particles. J. Virol. 82, 7034-7046 (2008).
  14. Koutsoudakis, G. Characterization of the early steps of hepatitis C virus infection by using luciferase reporter viruses. J. Virol. 80, 5308-5320 (2006).
  15. Frentzen, A. Completion of hepatitis C virus replication cycle in heterokaryons excludes dominant restrictions in human non-liver and mouse liver cell lines. PLoS Pathog. 7, e1002029 (2011).
  16. Lindemann, D. A particle-associated glycoprotein signal peptide essential for virus maturation and infectivity. J. Virol. 75, 5762-5771 (2001).
  17. Blight, K. J., McKeating, J. A., Rice, C. M. Highly permissive cell lines for subgenomic and genomic hepatitis C virus RNA replication. J. Virol. 76, 13001-13014 (2002).

Play Video

Cite This Article
Frentzen, A., Hueging, K., Bitzegeio, J., Pietschmann, T., Steinmann, E. Two Methods of Heterokaryon Formation to Discover HCV Restriction Factors. J. Vis. Exp. (65), e4029, doi:10.3791/4029 (2012).

View Video