Summary

Isolering og dyrkning af neurale kamceller fra embryonale Murin Neural Tube

Published: June 02, 2012
doi:

Summary

Isolering af embryoniske crista neuralis fra neuralrøret letter anvendelsen af<em> In vitro</em> Metoder til at studere migration, selvfornyelse, og multipotency af neural crest.

Abstract

Den embryoniske crista neuralis (NC) er en multipotent progenitorcelle population, der stammer fra den dorsale aspekt af neuralrøret, undergår en epitelcelle til mesenchymal overgang (EMT) og migrerer gennem embryo, hvilket giver anledning til forskellige celletyper 1-3. NC har også den unikke evne til at påvirke differentiering og modning af målorganer 4-6. Når eksplanteret in vitro, NC progenitorer undergår selvfornyelse, migrerer og differentierer til en række forskellige vævstyper, herunder neuroner og glia, glatte muskelceller, brusk og knogler.

NC multipotency blev først beskrevet af eksplantater af aviær neuralrøret 7-9. In vitro isolering af NC-celler letter undersøgelsen af NC dynamik, herunder proliferation, migration og multipotency. Det videre arbejde i de fugle og rotter systemer viste, at eksplanterede NC-celler bevarer deres NC potentiale, når transplanteres tilbage til fosteret 10-13. Fordi disse iboende cellulære egenskaber er bevaret i eksplanterede NC stamfædre, neuralrøret explantet analysen forsyner en attraktiv mulighed for at studere NC in vitro.

At opnå en bedre forståelse af den mammale NC, er mange metoder blevet anvendt til at isolere NC populationer. NC-afledte progenitorceller kan dyrkes fra post-migrerende steder i både embryo og voksne at studere dynamikken af post-migrerende NC progenitorer 11,14-20 imidlertid isolering af NC progenitorer, da de emigrere fra neuralrøret tilvejebringer optimal konservering af NC celle potentiale og migrerende egenskaber 13,21,22. Nogle protokoller anvender fluorescensaktiveret cellesortering (FACS) for at isolere en NC population er beriget for bestemte progenitorer 11,13,14,17. Imidlertid, når der startes med tidlige embryoer, celleantal passende for analyser er vanskeligt at opnå med FACS, komplicerer isolering af tidlige NC populations fra individuelle embryoer. Her beskriver vi en tilgang, som ikke er afhængig af FACS og resultater i en ca 96% ren NC befolkning baseret på en Wnt1-Cre aktiveret slægt reporter 23.

Fremgangsmåden fremlagt her, er tilpasset fra protokoller optimeret til dyrkning af rotte-NC 11,13. Fordelene ved denne protokol i forhold til tidligere metoder er, at 1) at cellerne ikke dyrkes på et fødelag, 2) FACS ikke nødvendig for at opnå en relativt ren population NC, 3) premigratory NC celler isoleres og 4) resultaterne er let kvantificeret. Endvidere kan denne protokol kan anvendes til isolering af NC fra enhver mutant musemodel, letter undersøgelsen af ​​NC egenskaber med forskellige genetiske manipulationer. Begrænsning ved denne fremgangsmåde er, at NC fjernes fra rammerne af embryo, som vides at påvirke overlevelse, migration og differentiering af NC 2,24-28.

Protocol

1. Forbereder Plader Anvendelse af steril teknik til enhver tid. Forberede fibronectin (FN) ved at fortynde 100 pi humant plasma FN lager til et slutvolumen på 3,3 ml i Dulbeccos PBS (DPBS). Endelige koncentration 30 ug / ml, og dette kan opbevares ved 4 ° C i 1 uge. Omfatter bunden af ​​hver brønd i en steril vævskulturplade fire brønde med FN-opløsning og lad henstå i 15 minutter. Sørg for, at hele overfladen er dækket. Gør mediet i denne periode (trin 2 og 3). Fj…

Discussion

Omhyggelig bør man være opmærksom på udviklingsstadiet af embryo for at sikre succes for denne tilgang. Optælling somitter af tidlige museembryoer er kritisk for både fase matche embryoner inden for et kuld hvalpe og bestemme de korrekte områder af neuralrøret for isolation. En variation af en eller to somitter mellem embryoer er inden for et rimeligt udvalg af udviklingsmæssige timing, afhængigt af opløsningen af ​​den gennemførte forsøget. Et embryo mellem 9 og 9,5 DPC vil have mellem 17 og 25 somitte…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne anerkende Marc Wozniak til video assistance. Vi vil også gerne takke Sean Morrison på UT Southwestern for den oprindelige protokol for dyrkning af rotte NC celler. Dette arbejde blev støttet Vanderbilt University Medical Center Akademisk Program Support og ved tilskud fra NIH (HD36720 og HD036720-11S109) og AHA 11GRNT7690040 til PAL, predoctoral stipendier fra AHA (0615209B) og NIH (NS065604) til NAM, og ERP var understøttet af en NIH træning tilskud T32HD007502.

Materials

Reagent Company Catalogue number Comments
DMEM (low glucose) Gibco/Invitrogen 11885  
Neurobasal Medium Gibco 21103  
BSA Sigma A3912-10G  
dPBS Gibco 14190-144  
IGF1 BD Biosciences 354037 Store in 50 μg/mL aliquots at -20°C.
bFGF BD Biosciences 354060 Store in 25 μg/mL aliquots at -20°C.
Fibronectin Gibco 33016-015 Stored in 1mg/mL aliquots at -20°C.
Retinoic acid Sigma R2625 Store in 35 μg/ml aliquots after reconstituting in ethanol at -20°C.
2-mercaptoethanol Sigma D-5637  
N2 supplement Gibco 17502-048  
B27 supplement Gibco 17504-044  
Steriflip 0.22 μm filters Millipore SCGP00525  
Penicillin-streptomycin Invitrogen 15140122  
0.20 μm filters Corning 431219  
Syringes (for filtration) BD Biosciences 301604  
Four well plates Thermo Fisher Scientific 176740  
Collagenase/Dispase Roche 269 638 Activity varies by batch. Store in 100 mg/mL aliquots at -20°C.
Insulin needles
(29½ gage)
Becton Dickson 309306  
Hypoxia Chamber Billups-Rothenberg    
Oxygen Analyzer Billups-Rothenberg    
Forceps #5 Fine Science Tools   For removing uterus and decidua.
Trypsin-EDTA (0.25%) Gibco 25200  

References

  1. Le Douarin, N., Kalcheim, C. . The neural crest. , (1999).
  2. Kulesa, P. M., Gammill, L. S. Neural crest migration: patterns, phases and signals. Developmental biology. 344, 566-568 (2010).
  3. Saint-Jeannet, J. -. P. . Neural crest induction and differentiation. , (2006).
  4. Plank, J. L. Influence and timing of arrival of murine neural crest on pancreatic beta cell development and maturation. Developmental biology. 349, 321-330 (2011).
  5. Nekrep, N., Wang, J., Miyatsuka, T., German, M. S. Signals from the neural crest regulate beta-cell mass in the pancreas. Development. 135, 2151-2160 (2008).
  6. Freem, L. J. The intrinsic innervation of the lung is derived from neural crest cells as shown by optical projection tomography in Wnt1-Cre;YFP reporter mice. J. Anat. 217, 651-664 (2010).
  7. Cohen, A. M., Konigsberg, I. R. A clonal approach to the problem of neural crest determination. Developmental biology. 46, 262-280 (1975).
  8. Sieber-Blum, M., Cohen, A. M. Clonal analysis of quail neural crest cells: they are pluripotent and differentiate in vitro in the absence of noncrest cells. Developmental biology. 80, 96-106 (1980).
  9. Baroffio, A., Dupin, E., Douarin, N. M. L. e. Common precursors for neural and mesectodermal derivatives in the cephalic neural crest. Development. 112, 301-305 (1991).
  10. White, P. M. Neural crest stem cells undergo cell-intrinsic developmental changes in sensitivity to instructive differentiation signals. Neuron. 29, 57-71 (2001).
  11. Morrison, S. J., White, P. M., Zock, C., Anderson, D. J. Prospective identification, isolation by flow cytometry, and in vivo self-renewal of multipotent mammalian neural crest stem cells. Cell. 96, 737-749 (1999).
  12. Bronner-Fraser, M., Sieber-Blum, M., Cohen, A. M. Clonal analysis of the avian neural crest: migration and maturation of mixed neural crest clones injected into host chicken embryos. J. Comp. Neurol. 193, 423-434 (1980).
  13. Stemple, D. L., Anderson, D. J. Isolation of a stem cell for neurons and glia from the mammalian neural crest. Cell. 71, 973-985 (1992).
  14. Corpening, J. C. Isolation and live imaging of enteric progenitors based on Sox10-Histone2BVenus transgene expression. Genesis. 49, 599-618 (2011).
  15. Biernaskie, J. A., McKenzie, I. A., Toma, J. G., Miller, F. D. Isolation of skin-derived precursors (SKPs) and differentiation and enrichment of their Schwann cell progeny. Nat. Protoc. 1, 2803-2812 (2006).
  16. Chung, I. H. Stem cell property of postmigratory cranial neural crest cells and their utility in alveolar bone regeneration and tooth development. Stem Cells. 27, 866-877 (2009).
  17. Biernaskie, J. SKPs derive from hair follicle precursors and exhibit properties of adult dermal stem cells. Cell Stem Cell. 5, 610-623 (2009).
  18. Hagedorn, L., Suter, U., Sommer, L. P0 and PMP22 mark a multipotent neural crest-derived cell type that displays community effects in response to TGF-beta family factors. Development. , 126-3781 (1999).
  19. Heanue, T. A., Pachnis, V. Prospective identification and isolation of enteric nervous system progenitors using Sox2. Stem Cells. 29, 128-140 (2011).
  20. Morrison, S. J. Culture in reduced levels of oxygen promotes clonogenic sympathoadrenal differentiation by isolated neural crest stem cells. J. Neurosci. 20, 7370-7376 (2000).
  21. Ito, K., Morita, T., Sieber-Blum, M. In vitro clonal analysis of mouse neural crest development. Developmental biology. 157, 517-525 (1993).
  22. Etchevers, H. Primary culture of chick, mouse or human neural crest cells. Nat. Protoc. 6, 1568-1577 (2011).
  23. Mundell, N. A., Labosky, P. A. Neural crest stem cell multipotency requires Foxd3 to maintain neural potential and repress mesenchymal fates. Development. 138, 641-652 (2011).
  24. Gammill, L. S., Gonzalez, C., Gu, C., Bronner-Fraser, M. Guidance of trunk neural crest migration requires neuropilin 2/semaphorin 3F signaling. Development. 133, 99-106 (2006).
  25. Gammill, L. S., Gonzalez, C., Bronner-Fraser, M. Neuropilin 2/semaphorin 3F signaling is essential for cranial neural crest migration and trigeminal ganglion condensation. Dev. Neurobiol. 67, 47-56 (2007).
  26. Kasemeier-Kulesa, J. C., Bradley, R., Pasquale, E. B., Lefcort, F., Kulesa, P. M. Eph/ephrins and N-cadherin coordinate to control the pattern of sympathetic ganglia. Development. 133, 4839-4847 (2006).
  27. Osborne, N. J., Begbie, J., Chilton, J. K., Schmidt, H., Eickholt, B. J. Semaphorin/neuropilin signaling influences the positioning of migratory neural crest cells within the hindbrain region of the the chick. Dev. Dyn. 232, 939-949 (2005).
  28. Schwarz, Q., Maden, C. H., Vieira, J. M., Ruhrberg, C. Neuropilin 1 signaling guides neural crest cells to coordinate pathway choice with cell specification. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 6164-6169 (2009).
  29. Simon, M. C., Keith, B. The role of oxygen availability in embryonic development and stem cell function. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 9, 285-296 (2008).
  30. Ivanovic, Z. Hypoxia or in situ normoxia: The stem cell paradigm. J. Cell Physiol. 219, 271-275 (2009).
check_url/kr/4134?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Pfaltzgraff, E. R., Mundell, N. A., Labosky, P. A. Isolation and Culture of Neural Crest Cells from Embryonic Murine Neural Tube. J. Vis. Exp. (64), e4134, doi:10.3791/4134 (2012).

View Video