Summary

Vahşi Tırtıllar gelen Hemocytes ayıklamak için basit bir protokol

Published: November 15, 2012
doi:

Summary

Böcek hemocytes böcek tüm gelişim aşamalarında immün ve non-immün hem de pek çok önemli fonksiyonları, yürütmek. Hemocyte türleri ve işlev Bizim bugünkü bilgi böcek genetik modeller üzerinde çalışmalar geliyor. Burada, biz, ayıklanması ve niceleme yabani tırtıllar gelen hemocytes görselleştirmek için bir yöntem mevcut.

Abstract

Böcek hemocytes (memeli beyaz kan hücreleri eşdeğer) bir böceğin yaşam döngüsü 1 boyunca birçok fizyolojik olayda önemli bir rol oynamaktadır. Lepidoptera (güveler ve kelebekler) ve Diptera (gerçek sinekler) emrine ait böceklerin larva evrelerinde hemocytes lenf bezi (özel hematopoetik organı) veya embriyonik hücrelerden oluşur ve erişkin aşamasına kadar yapılabilir. Embriyonik hemocytes inflamasyon sırasında gelişen ve kemotaksis düzenlenmesi sırasında hücre göçü katılmaktadırlar. Onlar da hücre apoptozu katılabilir ve embriyogenesis 2 için gereklidir. Hemocytes, hücre yayılması, hücre agregasyonu, nodül oluşumu, fagositoz ve yabancı işgalciler 3 kapsülleme gibi çeşitli fonksiyonları içeren böcek doğal immün yanıtın hücresel kolu arabuluculuk. Bunlar pr gibi, aynı zamanda enfeksiyon sırasında belirli böcek humoral savunma düzenlemekten sorumludur, antimikrobiyal peptitler ve diğer efektör moleküller 4, 5 oduction. Hemocyte yapısının ve fonksiyonunun başlıca meyve sineği, Drosophila melanogaster 6, 7, sivrisinekler Aedes aegypti ve Anopheles gambiae 8, 9 ve tütün hornworm, Manduca Sexta 10, 11 de dahil olmak üzere, genetik ya da fizyolojik böcek modellerinde çalışıldığı edilmiştir. Ancak, çok az bilgi şu anda çeşitliliği, sınıflandırılması, morfolojisi ve özellikle non-model böcek türleri, yaban 12 toplanan olanlarda hemocytes işlevi hakkında var.

Burada yabani tırtıllar gelen hemocytes ayıklamak için basit ve etkili bir protokol açıklar. Biz sondan instar Lithacodes Fasciola (sarı-omuzlu slug güvesi) (Şekil 1) ve Euclea delphinii (dikenli meşe slug) tırtılların (Lepidoptera: Limacodidae) kullanın ve gösteriyor ki hemolimf, yeterli miktarda (böcek kan)izole edilmiş ve hemocyte sayıda bireysel larva sayılabilir. Bu yöntem, verimli bir şekilde bu tür hem de tarla hasat ilgili diğer lepidopteran tırtılların içinde hemocyte türleri çalışmak için kullanılabilir, ya da kolayca mikrobiyal veya parazit organizmalar ile enfeksiyonu takiben 13 hemocyte araştırmak üzere tasarlanmış imünolojik deneylerlerde ile kombine edilebilir.

Protocol

1. Malzeme Hazırlanması Borosilikat cam kapiller tüplerin ve mikropipet çektirmenin kullanarak iğne (1-2 mikron ucu ve 3-4 mm konik) hazırlayın. Cihaz ayarları: rampa: 561; hızı: 20; ısı: 560; gecikmesi: 1; çekme: 100; basıncı: 500. Sığır fetüs serumu (FBS) ve% 10 ve Antikoagülan tamponu (% 20 98 mM NaOH, 186 mM NaCI, 1.7 mM EDTA, 41 mM sitrik asit, pH 4.5 ile desteklenmiş Grace Medium (GM),% ​​60: toplama çözeltisi hazırlayın ). Yukarıdaki çözelti, steril koşullar a…

Representative Results

Burada açıklanan protokol bireysel tırtılların böcek hemolimf 10-20 ul en az hacim toplanmasını sağlar. Bu yöntemi kullanarak toplanan Hemocytes hücre topaklanma, melanization kusurları, doku artıkları veya diğer kirletici ücretsizdir. Dolayısıyla hemocytes kolayca gözlenir ve mikroskop altında sayılır, ve birkaç böcek birkaç Hosur içinde gözlenen edilebilirler. Biz bizim örneklerinde hemocytes çoğunluğu plazmatositler 3 (hemocytes asimetrik yayılma) (Şekil 4)…

Discussion

Tıbben önemli böcekler ve lepidopteran modeli böceklerden hemocytes ayıklamak için Yöntemler önce 9, 14 rapor edilmiştir. Hemocyte ekstraksiyon yöntemleri böcek türlerine göre uyarlanmış, böcek ve morfolojik özellikleri gelişim aşamasında. Örneğin, Manduca larva hemolimf izolasyonu kolayca karın 15 sonuna yakın kırpma kavisli boynuz ile gerçekleştirilebilir. Sümüklüböcek tırtıllar (Limacodidae) bu karın yapıdan yoksundur Çünkü, biz küçük ölçekli s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

TMS Bu çalışma sırasında Harlan Trust Bursu (GWU) tarafından desteklenmiştir. Alan koleksiyon için fon ve L. damızlık Fasciola ve E. delphinii JTL NSF hibe DEB 0642438 tarafından sağlanmıştır.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Micropipette puller Sutter Instruments P-1000
Borosilicate glass tubes Sutter Instruments B100-50-10 OD: 1.0, ID: 0.50 mm
Grace’s Medium Sigma G8142
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific SH3007102 Heat inactivated
Dumont #5 Forceps Fine science tools 11252-40
Neubauer hemocytometer Hausser Scientific 3200
Plastic tubing Tri-Tech TT-3-32OD OD: 3/32”, ID: 1/32′
Glass medical syringe Fortuna Optima D-97877 50 ml volume
Blunt end needle Small Parts NE-162PL-25 16 Gauge x 1″ length

References

  1. Hartenstein, V. Blood cells and blood cell development in the animal kingdom. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 22, 677 (2006).
  2. Wood, W., Jacinto, A. Drosophila melanogaster embryonic haemocytes: masters of multitasking. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8 (7), 542 (2007).
  3. Strand, M. R. The insect cellular immune response. Insect Sci. 15 (1), 1 (2008).
  4. Fauvarque, M. O., Williams, M. J. Drosophila cellular immunity: a story of migration and adhesion. J. Cell Sci. 124 (9), 1373 (2011).
  5. Nehme, N. T., Quintin, J., Cho, J. H., Lee, J., Lafarge, M. C., Kocks, C., Ferrandon, D. Relative roles of the cellular and humoral responses in the Drosophila host defense against three gram-positive bacterial infections. PLoS One. 6 (3), e14743 (2011).
  6. Ulvila, J., Vanha-Aho, L. M., Rämet, M. Drosophila phagocytosis – still many unknowns under the surface. APMIS. 119 (10), 651 (2011).
  7. Moreira, C. G., Regan, J. C., Zaidman-Remy, A., Jacinto, A., Praq, S. Drosophila hemocyte migration: an in vivo assay for directional cell migration. Methods Mol. Biol. 769, 249 (2011).
  8. Hillyer, J. F. Mosquito immunity. Adv. Exp. Med. Biol. 708, 218 (2010).
  9. Castillo, J. C., Robertson, A. E., Strand, M. R. Characterization of hemocytes from the mosquitoes Anopheles gambiae and Aedes aegypti. Insect Biochem. Mol. Biol. 36 (12), 891 (2006).
  10. Jiang, H., Vilcinskas, A., Kanost, M. R. Immunity in lepidopteran insects. Adv. Exp. Med. Biol. 708, 181 (2010).
  11. Eleftherianos, I., Xu, M., Yadi, H., ffrench-Constant, R. H., Reynolds, S. E. Plasmatocyte-spreading peptide (PSP) plays a central role in insect cellular immune defenses against bacterial infection. J. Exp. Biol. 212 (12), 1840 (2009).
  12. Ribeiro, C., Brehélin, M. Insect haemocytes: what type of cell is that. J. Insect Physiol. 52 (5), 417 (2006).
  13. Beetz, S., Brinkmann, M., Trenczek, T. Differences between larval and pupal hemocytes of the tobacco hornworm, Manduca sexta, determined by monoclonal antibodies and density centrifugation. J. Insect Physiol. 50 (9), 805 (2004).
  14. Beetz, S., Holthusen, T. K., Koolman, J., Trenczek, T. Correlation of hemocyte counts with different developmental parameters during the last larval instar of the tobacco hornworm, Manduca sexta. Arch. Insect Biochem. Physiol. 67 (2), 63 (2008).
  15. Eleftherianos, I., Joyce, S., ffrench-Constant, R. H., Clarke, D. J., Reynolds, S. E. Probing the tri-trophic interaction between insects, nematodes and Photorhabdus. Parasitology. 137 (11), 1695 (2010).
  16. Qayum, A. A., Telang, A. A Protocol for Collecting and Staining Hemocytes from the Yellow Fever Mosquito Aedes aegypti. J. Vis. Exp. (51), e2772 (2011).
check_url/kr/4173?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Stoepler, T. M., Castillo, J. C., Lill, J. T., Eleftherianos, I. A Simple Protocol for Extracting Hemocytes from Wild Caterpillars. J. Vis. Exp. (69), e4173, doi:10.3791/4173 (2012).

View Video