Summary

İzole İskelet Kaslar Kasılma, çabuk yorulma ve Alternans Ex Vivo Değerlendirilmesi

Published: November 01, 2012
doi:

Summary

Biz doğrudan kas kuvveti, kas gücü, kasılma kinetiği ve izole iskelet kaslarında yorulma ölçmek için bir yöntem tarif<em> In vitro</em> Alan stimülasyonu kullanarak sistem. Ca değerli bilgiler<sup> 2 +</sup> Işlenme özelliklerini ve kas kasılma makine farklı uyarıcı protokolleri kullanarak elde edilebilir.

Abstract

Burada tanımlanan izole edilmiş iskelet kaslarının kasılmasına ölçmek için bir yöntemdir. Bu tür kas kuvveti, kas gücü, kasılma kinetiği, bitkinlik ve yorgunluk sonrası toparlanma gibi parametreler gibi heyecanlanma gibi eksitasyon-kasılma kenet belirli yönlerini (ECC) süreci, kontraktil makine ve Ca 2 + taşıma yeteneğini değerlendirmek için elde edilebilir. Bu yöntem, sinir ve kan akımı kaldırır ve izole iskelet kası odaklanır. Biz rutin modüle Ca 2 + sinyal yolları olsa iskelet kası kasılma özelliğini değiştiren genetik bileşenleri tanımlamak için bu yöntemi kullanın. Burada, in vitro kas kasılması tayininde kullanılarak elde edilebilir çok çeşitli ve zengin bir bilgi örneği olarak yeni tanımlanan bir iskelet kas fenotip, yani mekanik alternansı, tarif. Tek hücre deneyleri, genetik yaklaşımlar ve biyokimyasal ile bu tahlil kombinasyonustry deneyler iskelet kasındaki ECC mekanizmaları konularında önemli ipuçları sağlayabilir.

Introduction

Iskelet kasları, merkezi sinir sisteminin kontrolü altında kontraktil güçler iskelet kemik yapışır ve üretir. Eksitasyon-kasılma kenet (ECC), mekanik bir yanıt için bir elektrik uyaran dönüştürme sürecini ifade eder. Ca 2 + sinyalizasyon iskelet kaslarında kasılma fonksiyonu önemli bir bileşenidir. Etkili Ca 2 sarkoplazmik retikulum (SR) + 'dan harekete önemli bir kas hücresi, 1, 2 içinde ECC bileşen, ve hücre içi Ca2 + sinyali değişiklikler kas hastalıklarında 3-5 arasında bir sayı karşılık gelen kontraktil fonksiyon bozukluğu altında yatan olup. Kas kasılması Uygun değerlendirme + görüntüleme ve diğer testler sadece kasılma düzeyinde, iskelet kası fonksiyonu içgörü kazanmak değil, aynı zamanda kinetik düzeyde önemlidir ve Ca 2 ücretsizdir. Kuvvet ve hızı da önemli tesise bildirmeleri elde edilebilirfarklı fizyolojik ve patofizyolojik durumlardaki kas gücü ve ECC işleminin durumunu.

Bu araştırma bereketli alanında çok zengin bir tarihe sahiptir ve kas kasılması birçok teoriler iki bin üzerinde 6 çıktı. Modern kas araştırma muhtemelen Leeuwenhoek tarafından 6 kas liflerinin çapraz çizgiler ve miyofibril mikroskobik gözlem ile 1674-1682 yılında başlar. Onun sinir uzak bir elektrikli makine 7-9 bir kıvılcım deşarj sırasında bistüri ile dokunulduğunda Neredeyse bir yüzyıl sonra, Luigi Galvani kurbağa kas sözleşmeleri şiddetle görülmektedir. Daralma ayrıca bir metal iletken ile kas için bacak sinirin bağlanması ile elde edilebilir. Galvani tarafından savunulan karmaşık elektriksel sinyal mekanizmasının ayrıntıları sonunda elektrofizyoloji temeli oldu onların ünlü denklemi 10, 11 Hodgkin, Huxley ve Katz tarafından formüle edildi. Rin çarpıcı gözlemlerger + kurbağa kalp ve iskelet kaslarının 12-15 kasılma ekstraselüler Ca 2 etkileri Ca 2 tanınmasında ilk önemli adım + kas kontraktilite 16, 17 önemli bir düzenleyici olarak temsil eder. 1980'lerden günümüze kadar kas kasılması alanında keşifler bir patlama nedeniyle kas kontraktilite ve murin iskelet kaslarında 18 yorulma protokollerin tanıtımı gerçekleştirildi. Jones ve Edwards 19 ECC makine değişiklikleri değil, kontraktil aparat ile ilişkili olduğu düşük frekanslı aralıklı yorgunluk (kuvvet egzersizle oluşan azalma) önermek için ilk idi. Ise geç 1980 ve erken 1990 yılında, Kolkeck ark 20, Kolbeck ve NOSEK 21, ve Reid 22, iskelet kası kasılma theophyllines, cortiosterone ve serbest radikallerin etkilerini incelemek için kemirgen modelleri diyafram kası kullandığınız Brooks ve Faulkner fareler 22 hızlı ve yavaş kasları tekrar kuvvet ve güç ölçümleri ölçümleri rapor için ilk idi. Buna ek olarak, Lannegren, Westerblad, Kuzu ve Westerblad doğrudan hücre içi Ca 2 + yönetmeliğe ex vivo kontraktilite bağlamak için ilk ve kas yorgunluğu 23, 24 asidoz rolünü sorgulamaya başladı.

Bizim laboratuvarlar önemli ölçüde bozulmamış fare kas kontraktilite çalışmaları bir arada kullanarak erken 2000 en yeni genlerin anlayış yönelik düzenleyici ve düzenleyici rolleri ile kas ECC ilgili kas kasılması, bitkinlik, ve yaşlanma kritik rolleri beri katkıda, hücre içi Ca 2 + izleme oylandı bozulmamış ve derili kas lifleri ve moleküler-genetik manipülasyonlar 3-5, 25-29.

Burada fare izole soleus ve ekstansör digitorum longus ölçme kontraktilite (ED için deney protokolünde ayrıntılıKarşılık L) kasları çoğunlukla yavaş oksidatif (tip I ve IIa kas lifleri) ve farklı kontraktil özelliklere sahip bir çoğunlukla fast-glyocolytic kas (tip IIb ve IIx kas lifleri). Bu protokol, dokunulmamış kas-tendon kompleksleri izole edilmiş ve saf oksijen veya oksijen karışımı (% 95) ve CO2 (% 5) ile birlikte bir ya da ADI PowerLab Radnotti hücre sistemi ile yıkanır. Kasılma güçleri Çim stimülatörü elektrik stimülasyonu ile oluşturulan ve makro rutinleri özelleştirme veri toplama, koleksiyon, dijitalleşme ve depolama kontrol etmeye izin veren, bir ADI PowerLab/400 sistemi ile entegre bir kuvvet dönüştürücü kullanılarak tespit edildi. Bu kurulum kas kuvveti, kas gücü, hem de kuvvet karşısında frekans ilişkileri, kas yorgunluğu, kas yorgunluğu, hız ve kas kasılması genel olarak kinetik özelliklerine iyileşme ölçebilir. Buna ek olarak, kas kasılması üzerinde ilaçların etkilerini bu deney ile takip edilebilir. </p>

Bu yöntemin avantajları kas sözleşme içsel özelliklerinin doğrudan değerlendirmesine imkân, iskelet kası uzak nöronal ve vasküler bileşenleri çıkarmadan yatıyordu. Buna ek olarak, ex vivo kontraktilite testleri çeşitli iyon nüfuz kanalları ve nakliyecilerin farmakolojik manipülasyonlar iskelet kas fonksiyonu için onların fizyolojik rolleri tanımlamak amacıyla kullanılmasını da sağlar izole kas çevreleyen ekstraselüler ortamın, manipülasyonu sağlar.

Bu ex vivo sistem bize son zamanlarda değiştirilmiş hücre içi Ca 2 ile bağlantılı olan bazı mutant kas preparatlarında ayrı alternan davranış, + özellikleri 4 işleme keşfetmek için izin verdi. Alternans yorucu profilin azalma aşaması esnasında kasılma kuvveti değişen seri bölüm olarak tanımlanır. Bu olaylar sırasında kasılma kuvvetlerinin anlık kuvvet d önceki seviyenin üzerinde artışDaha fazla Ca 2 + piyasaya sürülüyor veya kontraktil makine Ca 2 + 30 daha duyarlı hale gelmiştir ya da belki de, çünkü yorucu stimülasyon uring. Siklopiazonik asit (CPA), sarkoplazmik-endoplazmik retikulum kalsiyum ATPaz (SERCA), kafein, riyanodin kanal (RYR) bir agonisti bir reversible bloker tedavisi ve uyarımlar yorucu tekrarlanan tüm bu alternans doğrudan ilişkili düşündüren, mekanik alternansı 4 uyarabilir AK kaplin süreci modülasyonu. In vitro kontraktilite kurulum in mekanik alternansı indükleyen ve kaydetmek için yöntem Gösterme bireysel araştırma çıkarlara dayanan bu sistem, veya benzer olanlar ile elde edilebilir çeşitlendirilmiş deneysel parametreleri göstermek için bir örnek teşkil etmektedir.

Bu yöntem, kas fizyolojisi inceleyen araştırmacılar için ilgi çekici olabilir. Benzer ayarı da diğerinden izole iskelet muscle-tendon/ligament kompleksler için de kullanılabilirlokasyon, hem de tek liflerin ve kas şeritleri için olduğu gibi.

Protocol

Çözüm bileşimi: 2.5 mM Ca2 + Tyrode çözeltisi: 140 mM NaCl, 5 mM KCI, 10 mM HEPES, 2.5 mM CaCI2, 2 mM MgCI2 ve 10 mM glükoz 0 mM Ca2 + Tyrode çözeltisi: 140 mM NaCl, 5 mM KCI, 10 mM HEPES, 2 mM MgCl2, 0,1 mM etilen glikol tetraasetik asit (EGTA) ve 10 mM glükoz Not: banyo çözümü yukarıdaki çözüm kullanıyorsanız, ancak% 5 CO 2 ile% 95 O 2 ile%…

Discussion

Kasılma kuvveti ve kolay yorulma ölçülmesi iskelet kas fonksiyonunun genel değerlendirme için önemlidir. Bu testin ana amacı bu sarkopeni ve kas yorgunluğu gibi bazı patolojik şartlar altında kas kuvveti değişiklikleri ve yorucu özelliklerini tespit etmek, ve kas kasılma uyuşturucu / reaktiflerin etkisinin test etmektir. Kas kuvveti yakından hücre içi Ca 2 ile ilişkili olduğu için + sürümü, ekstrasellüler Ca2 + girişi ve bu ikisi arasındaki karışma, biz de …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma Brotto M. Zhao X, Ma J ve GO Hibe RC2AR05896 için RO1-AR061385 için AHA SDG 10SDG2630086 tarafından desteklenmiştir

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
2-APB Tocris 1224 Blocker of a number of Ca2+ entry channels including SOC and TRP etc.
SKF96365 Sigma SKF-96365 Blocker of a number of Ca2+ entry channels including SOC and receptor-mediated Ca2+ entry etc.
BTP-2 Millipore 203890-5MG Relatively specific SOC blocker
CPA Sigma C1530 Reversible SERCA blocker
caffeine Sigma C0750 Fast action RyR agonist
Radnoti Four Unit Tissue Organ Bath System Radnoti 159920
Combination Tissue Support/Stimulating Electrode Radnoti 160151 Vertical Zig Zag Type with tissue support
Quad Bridge Amp ADInstruments FE224
PowerLab/400 ADInstruments This product is no longer available. Choose other version of the data acquisition system.
Force Transducers (5 mg – 25 g) ADInstruments MLT0201/RAD
Chart v4.02 ADInstruments LabChart 7.3 is the latest version of Chart software.
S8800 Dual Pulse Digital Stimulator GRASS TECHNOLOGIES This product is no longer available. S88X Dual Output Square Pulse Stimulator is a newer stimulator.
RF Transformer Isolation Unit GRASS TECHNOLOGIES Model SIU5

References

  1. Winegrad, S. Role of intracellular calcium movements in excitation-contraction coupling in skeletal muscle. Fed. 24, 1146-1152 (1965).
  2. Sandow, A. Excitation-contraction coupling in skeletal muscle. Pharmacol. Rev. 17, 265-320 (1965).
  3. Thornton, A. M. Store-operated Ca(2+) entry (SOCE) contributes to normal skeletal muscle contractility in young but not in aged skeletal muscle. Aging. 3, 621-634 (2011).
  4. Zhao, X. Ca2+ overload and sarcoplasmic reticulum instability in tric-a null skeletal muscle. J. Biol. Chem. 285, 37370-37376 (2010).
  5. Brotto, M. A. Defective maintenance of intracellular Ca2+ homeostasis is linked to increased muscle fatigability in the MG29 null mice. Cell Res. 14, 373-378 (2004).
  6. Florkin, M. Machina carnis. The Biochemistry of Muscular Contraction in its Historical Development. Med. Hist. 17, 316-317 (1973).
  7. Galvani, A., Aldini, J. De viribus electricitatis in motu musculari commentarius. ApudSocietatem Typographicam. , (1792).
  8. Fulton, J. F., Fulton, J. F., Wilson, L. G. . Selected Reading in the History of Physiology. , (1930).
  9. Piccolino, M. Luigi Galvani and animal electricity: two centuries after the foundation of electrophysiology. Trends Neurosci. 20, 443-448 (1997).
  10. Hodgkin, A. L. The Croonian Lecture: Ionic Movements and Electrical Activity in Giant Nerve Fibres. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 148, 1-37 (1958).
  11. Hodgkin, A. L. . The Sherrington Lectures VII the Conduction of the Nervous Impulse. , 71964 (1965).
  12. Ringer, S. A further contribution regarding the influence of the different constituents of the blood on the contraction of the heart. J. Physiol. 4, 29-42.3 .
  13. Ringer, S. Further experiments regarding the influence of small quantities of lime, and other salts on muscular tissue. J. Physiol. 7, 291-308 .
  14. Ringer, S., Buxton, D. W. Concerning the action of calcium, potassium and sodium salts upon the eel’s heart and upon the skeletal muscles of the frog. J. Physiol. 8, 15-19 .
  15. Ringer, S. Regarding the action of lime, potassium and sodium salts on skeletal muscle. J. Physiol. 8, 20-24 (1887).
  16. Campbell, A. K. . Intracellular Calcium its Universal Role as Regulator. , (1983).
  17. Mol, J. . Cell Cardiol. 16, ll3-ll6 (1984).
  18. Ridings, J. W., Barry, S. R., Faulkner, J. A. Aminophylline enhances contractility of frog skeletal muscle: an effect dependent on extracellular calcium. J. Appl. Physiol. 67, 671-676 (1989).
  19. Fitts, R. H. The cross-bridge cycle and skeletal muscle fatigue. J. Appl. Physiol. 104, 551-558 (2008).
  20. Kolbeck, R. C., Speir, W. A. Diaphragm contactility as related to cellular calcium metabolism: Influence of theophylline and fatigue. American Review of Respiratory Disease. 139, 495 (1989).
  21. Kolbeck, R. C., Nosek, T. M. Fatigue of rapid and slow onset in isolated perfused rat and mouse diaphragms. J. Appl. Physiol. 77, 1991-1998 (1994).
  22. Moore, B. J. Diaphragm atrophy and weakness in cortisone-treated rats. J. Appl. Physiol. 67, 2420-2426 (1989).
  23. Lannergren, J., Westerblad, H. Force decline due to fatigue and intracellular acidification in isolated fibres from mouse skeletal muscle. J. Physiol. 434, 307-322 (1991).
  24. Westerblad, H. Spatial gradients of intracellular calcium in skeletal muscle during fatigue. Pflugers Arch. 415, 734-740 (1990).
  25. Zhao, X. Enhanced resistance to fatigue and altered calcium handling properties of sarcalumenin knockout mice. Physiol. Genomics. 23, 72-78 (2005).
  26. Wang, X. Cardioprotection of ischemia/reperfusion injury by cholesterol-dependent MG53-mediated membrane repair. Circ. Res. 107, 76-83 (2010).
  27. Cai, C. MG53 nucleates assembly of cell membrane repair machinery. Nat. Cell Biol. 11, 56-64 (2009).
  28. Shen, J. Deficiency of MIP/MTMR14 phosphatase induces a muscle disorder by disrupting Ca(2+) homeostasis. Nat. Cell Biol. 11, 769-776 (2009).
  29. Romero-Suarez, S. Muscle-specific inositide phosphatase (MIP/MTMR14) is reduced with age and its loss accelerates skeletal muscle aging process by altering calcium homeostasis. Aging (Albany NY). 2, 504-513 (2010).
  30. Yazawa, M. TRIC channels are essential for Ca2+ handling in intracellular stores. Nature. 448, 78-82 (2007).
  31. Brotto, M. A., Nosek, T. M., Kolbeck, R. C. Influence of ageing on the fatigability of isolated mouse skeletal muscles from mature and aged mice. Exp. Physiol. 87, 77-82 (2002).
  32. Zhao, X. Compromised store-operated Ca2+ entry in aged skeletal muscle. Aging Cell. 7, 561-568 (2008).
  33. Pan, Z. Dysfunction of store-operated calcium channel in muscle cells lacking mg29. Nat. Cell Biol. 4, 379-383 (2002).
  34. Zhao, X. Azumolene inhibits a component of store-operated calcium entry coupled to the skeletal muscle ryanodine receptor. J. Biol. Chem. 281, 33477-33486 (2006).
  35. Renaud, J. M. Modulation of force development by Na+, K+, Na+ K+ pump and KATP channel during muscular activity. Can. J. Appl. Physiol. 27, 296-315 (2002).
  36. Brotto, M. A. Functional and biochemical modifications in skeletal muscles from malarial mice. Exp. Physiol. 90, 417-425 (2005).
  37. Brotto, M. A. Hypoxia and fatigue-induced modification of function and proteins in intact and skinned murine diaphragm muscle. Pflugers Arch. 440, 727-734 (2000).
  38. Smith, M. A., Reid, M. B. Redox modulation of contractile function in respiratory and limb skeletal muscle. Respir Physiol Neurobiol. 151, 229-241 (2006).
  39. Bagni, M. A., Cecchi, G., Colomo, F. Myofilament spacing and force generation in intact frog muscle fibres. J. Physiol. 430, 61-75 (1990).
check_url/kr/4198?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Park, K. H., Brotto, L., Lehoang, O., Brotto, M., Ma, J., Zhao, X. Ex Vivo Assessment of Contractility, Fatigability and Alternans in Isolated Skeletal Muscles. J. Vis. Exp. (69), e4198, doi:10.3791/4198 (2012).

View Video