Summary

piggyBac Transposon System Ændring af primære humane T-celler

Published: November 05, 2012
doi:

Summary

Vi beskriver en fremgangsmåde til genetisk at modificere primære humane T-celler med et transgen hjælp af ikke-virale<em> PiggyBac</em> Transposon system. T-celler modificeret til anvendelse af<em> PiggyBac</em> Transposon-system udviser stabil transgenekspression.

Abstract

The piggyBac transposon system er naturligt aktive, oprindeligt afledt af kålmålerlarve moth 1,2. Denne ikke-viral system er plasmidet baseret, mest almindeligt at anvende to plasmider med en udtrykker piggyBac transposase-enzym og en transposon plasmid, gen (er) af interesse mellem inverterede gentagne elementer, som er nødvendige for gen-overførsel-aktivitet. PiggyBac medierer genoverførsel gennem a "cut and paste"-mekanisme, hvorved transposase integrerer transposonet segmentet i genomet af målcellen (erne) af interesse. PiggyBac har vist effektiv genadministration aktivitet i en lang række forskellige insekt 1,2, pattedyr 3-5, og human cells6 herunder primære humane T-celler 7,8. For nylig blev en hyperaktiv transposase piggyBac genereret forbedring genoverførselseffektivitet 9,10.

Humane T-lymfocytter er klinisk interest til adoptiv immunterapi af kræft 11. Af note, er det første kliniske forsøg med transposon modifikation af humane T-celler ved hjælp af Tornerose transposon systemet blevet godkendt 12. Vi har tidligere undersøgt anvendeligheden af piggyBac som en ikke-viral metode til genetisk modificering af humane T-celler. Vi fandt piggyBac at være effektiv til genetisk modifikation af humane T-celler med et reportergen og en ikke-immunogen inducerbar selvmordsgen 7. Analyse af genomiske integrationssteder afslørede en mangel på præference for integration i eller nær kendte proto-onkogener 13. Vi anvendte piggyBac til gen-modificere cytotoksiske T-lymfocytter til at bære et kimært antigen receptor rettet mod tumorantigen HER2, og fandt, at gen-modificerede T-celler medieret målrettet drab af HER2-positive tumorceller in vitro og in vivo i en orthotopisk musemodel 14. Vi har også anvendt piggyBacat generere humane T-celler resistente over for rapamycin, som skulle være nyttige i cancerbehandling, hvor rapamycin anvendes 15.

Heri, beskriver vi en fremgangsmåde til anvendelse piggyBac at gensplejse primære humane T-celler. Dette omfatter isolering af perifere mononukleære blodceller (PBMC'er) fra humant blod efterfulgt af dyrkning, genetiske modifikation, og aktivering af T-celler. Med henblik på denne rapport blev T-celler modificeret med et reportergen (eGFP) til analyse og kvantificering af genekspression ved flowcytometri.

PiggyBac kan anvendes til at modificere humane T-celler med en række forskellige gener af interesse. Selv om vi har brugt piggyBac at dirigere T-celler til tumorantigener 14, har vi også anvendt piggyBac at tilføje en inducerbar sikkerhedsafbryder for at fjerne gen modificerede celler om nødvendigt 7. Den store lastekapacitet på piggyBac har også muliggjort gen overførsel afen stor rapamycin resistent mTOR-molekyle (15 kb) 15. Derfor præsenterer vi en ikke-viral metode til stabil gen-ændring af primære humane T-celler til en lang række formål.

Protocol

Dag 0 1. Isolering af PBMC'er fra humant blod Collect 20 ml frisk humant blod ved hjælp af venepunktur i Na-heparin vacutainerrør. Mix blod og Advanced RPMI 1640 i 1:1 (v / v)-forhold. Der tilsættes 20 ml Lymphoprep medium til et 50 ml centrifugerør (25 ° C). Langsomt lag 25-30 ml blod-RPMI 1640 blanding oven på lymphoprep. Centrifuger ved 400 xg i 40 min uden bremser. Saml både distinkte og fuzzy lag ved hjælp af en engangs pipette…

Representative Results

En skematisk viser trinene i en genetisk ændring humane T-lymfocytter med et reportergen (eGFP) er vist i figur 1.. Disse plasmider er tilgængelige efter anmodning fra forfatterne. En schemtic viser trinnene i genetisk modificerede humane T-lymfocytter med et reportergen (eGFP) er showin i fig. 2. Det er nødvendigt at aktivere T-celler for at få dem til at dele sig, udvide og udbreder sig i kultur. Modificerede humane T-celler blev derpå dyrket og analyseret ved hjælp af flowcytom…

Discussion

Den heri beskrevne fremgangsmåde giver stabil transgen ændring af primære humane T-lymfocytter. Vi har tidligere testet brugen af piggyBac transposon system til at modificere T-celler til at udtrykke et reportergen (for mere end 4 uger), en ikke-immunogen selvmordsgen, et kimært antigen receptor for adoptiv immunterapi (i mere end 100 dage), og at konstruere modstanden for immunosuppressive lægemidler 7,13-15. Ikke-viral modifikation af T-celler til adoptiv immunterapi og andre anvendelser være…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SS støttes delvis af HHMI Med ind Grad Training Grant gennem TBMM Program. MHW er delvist understøttet af en karriereudvikling pris fra Department of Veterans Affairs og den generøse støtte fra Dr. og Mrs Harold M. Selzman. Dette arbejde blev også delvist understøttet af NIH lymfom SPORE tilskud P50CA126752 og NIH R01 DK093660.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Lympholyte Cedarlane CL5015  
Advanced RPMI 1,640 LifeTechnologies 12633020  
Hyclone Fetal Bovine Serum Fisher Scientific SH3008803  
GlutaMAX-I Supplement LifeTechnologies 35050-061  
Human IL-15 Recombinant Protein eBioscience 14-8159  
EndoFree Plasmid Maxi Kit Qiagen 12362  
Amaxa Nucleofector Lonza AAD-1001S  
Human T Cell Nucleofector Kit Lonza VPA-1002  
CD8-APC Southern Biotech 9536-11  
Anti-Human CD3 eBioscience 16-0037-81  
Anti-Human CD28 BD Pharmingen 555725  
24 Well Tissue Culture Treated Plate BD Falcon 353047  
24 Well Non Tissue Culture Treated Plate BD Falcon 351147  
      Complete T cell media composition
1x Advanced RPMI 1,640
5% Heat Inactivated Fetal Bovine Serum
2 mM GlutamaxIM-I

References

  1. Cary, L. C. Transposon mutagenesis of baculoviruses: analysis of Trichoplusia ni transposon IFP2 insertions within the FP-locus of nuclear polyhedrosis viruses. Virology. 172 (1), 156 (1989).
  2. Fraser, M. J. Assay for movement of Lepidopteran transposon IFP2 in insect cells using a baculovirus genome as a target DNA. Virology. 211 (2), 397 (1995).
  3. Ding, S. Efficient transposition of the piggyBac (PB) transposon in mammalian cells and mice. Cell. 122 (3), 473 (2005).
  4. Saridey, S. K. PiggyBac transposon-based inducible gene expression in vivo after somatic cell gene transfer. Mol. Ther. 17 (12), 2115 (2009).
  5. Nakanishi, H. piggyBac transposon-mediated long-term gene expression in mice. Mol. Ther. 18 (4), 707 (2010).
  6. Wilson, M. H., Coates, C. J., George, A. L. PiggyBac Transposon-mediated Gene Transfer in Human Cells. Mol. Ther. 15 (1), 139 (2007).
  7. Nakazawa, Y. Optimization of the PiggyBac transposon system for the sustained genetic modification of human T lymphocytes. J. Immunother. 32 (8), 826 (2009).
  8. Raja Manuri, P. V. piggyBac transposon/transposase system to generate CD19-specific T cells for treatment of B-lineage malignancies. Hum. Gene Ther. 21 (4), 427 (2010).
  9. Doherty, J. E. Hyperactive piggyBac gene transfer in human cells and in vivo. Hum. Gene Ther. , (2011).
  10. Yusa, K. A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108 (4), 1531 (2011).
  11. Bonini, C. Genetic modification of T cells. Biol. Blood Marrow Transplant. 17, S15-S20 (2011).
  12. Hackett, P. B., Largaespada, D. A., Cooper, L. J. A transposon and transposase system for human application. Mol. Ther. 18 (4), 1531 (2010).
  13. Galvan, D. L. Genome-wide mapping of PiggyBac transposon integrations in primary human T cells. J. Immunother. 32 (8), 837 (2009).
  14. Nakazawa, Y. PiggyBac-Mediated Cancer Immunotherapy Using EBV-Specific Cytotoxic T-Cells Expressing HER2-Specific Chimeric Antigen Receptor. Mol. Ther. 19 (12), 2133 (2011).
  15. Huye, L. E. Combining mTor Inhibitors With Rapamycin-resistant T Cells: A Two-pronged Approach to Tumor Elimination. Mol. Ther. 19 (12), 2239 (2011).
  16. Vera, J. F. Accelerated production of antigen-specific T cells for preclinical and clinical applications using gas-permeable rapid expansion cultureware (G-Rex). J. Immunother. 33 (3), 305 (2010).
  17. Kahlig, K. M. Multiplexed transposon-mediated stable gene transfer in human cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (4), 1343 (2010).
check_url/kr/4235?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Saha, S., Nakazawa, Y., Huye, L. E., Doherty, J. E., Galvan, D. L., Rooney, C. M., Wilson, M. H. piggyBac Transposon System Modification of Primary Human T Cells. J. Vis. Exp. (69), e4235, doi:10.3791/4235 (2012).

View Video