Summary

I ovo Electroporation av miRNA-baserte Plasmids i Utvikling Neural Tube og vurdering av fenotyper av Dii Injeksjon i åpen bok Forberedelser

Published: October 16, 2012
doi:

Summary

En metode som genekspresjon i nevralrøret kan være downregulated i en celletype-spesifikk, sporbar måte er beskrevet. Vi viser hvordan<em> I ovo</em> Electroporation av mikroRNA-baserte plasmider som framprovosere spatiotemporally kontrollert RNA-interferens kan brukes til å undersøke fugedannende axon veiledning i utviklingsland nevralrøret.

Abstract

Fugedannende DI1 nevroner har blitt grundig studert for å belyse mekanismene bak axon veiledning under utvikling 1,2. Disse nevronene ligger i dorsal ryggmargen og sender sine axoner langs stereotype baner. Fugedannende axons utgangspunktet projisere ventrally mot og deretter over gulvplaten. Etter å ha krysset midtlinjen, disse axons gjøre en skarp rostral sving og prosjekt lengderetningen mot hjernen. Hvert av disse trinnene er regulert av koordinerte aktiviteter attraktive og frastøtende veiledning signaler. Den riktige tolkningen av disse stikkordene er avgjørende for veiledning av axoner langs deres avgrensede veien. Således er den fysiologiske bidraget av en bestemt molekyl å fugedannende axon veiledning ideell undersøkt i sammenheng med den levende embryo. Følgelig må genet knockdown in vivo kontrolleres nøyaktig for å nøye skille axon veiledning aktiviteter av gener som kan spille flereroller under utvikling.

Her beskriver vi en metode for å knockdown genuttrykk i kylling nevralrøret i en celle type-spesifikke, sporbar måte. Vi bruker romanen plasmidvektorer 3 harboring celletype-spesifikke promotorer / Forsterker som driver ekspresjon av en fluorescerende protein markør, fulgt direkte av en miR30-RNAi transkript 4 (som befinner seg innenfor 3'-UTR av cDNA som koder for den fluorescerende protein) ( Figur 1). Når electroporated i utvikling nevralrøret, disse vektorer lokke fram effektiv nedregulering av genekspresjon og uttrykke lyse fluorescerende markørproteiner å muliggjøre direkte sporing av cellene opplever knockdown 3. Blande ulike RNAi vektorer før electroporation gjør samtidig knockdown av to eller flere gener i selvstendige regioner i ryggmargen. Dette tillater komplekse cellulære og molekylære interaksjoner som skal undersøkes i løpet av utviklingen, på en måte som er rask, sgjennomført, presis og billig. I kombinasjon med Dii tracing av fugedannende axon baner i åpen bok forberedelser 5, er denne metoden et nyttig verktøy for in vivo studier av cellulære og molekylære mekanismer for fugedannende axon vekst og veiledning. I prinsippet kan hvilken som helst promotor / enhancer brukes, potensielt gjør teknikken mer allment anvendelig for in vivo studier av gen-funksjon under utvikling 6.

Denne videoen viser først hvordan å håndtere og vindu egg, kan bruk av DNA plasmider inn nevralrøret og electroporation prosedyren. For å undersøke fugedannende axon veiledning, er ryggmargen fjernes fra embryoet som en åpen bok forberedelse, fast, og injisert med Dii å aktivere axon veier som skal spores. Ryggmargen er montert mellom dekkglass og visualisert ved hjelp konfokalmikroskopi.

Protocol

1. Utarbeidelse av RNAi Plasmid DNA for Cell typespesifikke Gene Slå av lyd Plasmider (Figur 1) er syntetisert ved hjelp av standard molekylære kloning teknikker, som tidligere beskrevet i detalj 3,4. 1.1 Kloning inn i vektorer: oligonucelotide utforming Vi bruker de samme universelle oligonukleotider og kloning protokoller som er beskrevet i produktinformasjonen som følger med pRFPRNAiC vektor 4 (ARK-Genomics). <…

Discussion

Denne enkle, vektorbasert kunstig miRNA uttrykk strategien kan brukes til knockdown endogene genekspresjon i kylling nevralrøret. Disse funksjonelle verktøy tilbyr flere genet stanse, temporal kontroll og celle-type spesifisitet, for å lette klarlegging av komplekse utviklingsforstyrrelser veier. Spesielt har vi demonstrert nytten av disse plasmider i fugedannende axon veiledning, siden plasmidene kan brukes til å knockdown distinkte gener i fugedannende neuroner eller i deres mellomliggende mål, gulvplaten 3….

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbeid i laboratoriet av ES er støttet av den sveitsiske National Science Foundation. Vi ønsker å takke dr. Beat Kunz for å få hjelp med filming.

Materials

Name of reagent Company Catalogue number
0.5 mm glass capillaries World Precision Instruments 1B120F-4
Glass needle puller Narishige PC-10
Electroporator BTX ECM 830
Sylgard silicone elastomer World Precision Instruments SYLG184
Tungsten wire, 0.075 mm World Precision Instruments TGW0325
Insect pins, 0.20 mm Fine Science Tools 26002-20
Insect pins, 0.10 mm Fine Science Tools 26002-10
Spring scissors Fine Science Tools 15003-08
Dumont #5 forceps Fine Science Tools 11252-20
Dumont #55 forceps Fine Science Tools 11255-20
Fast DiI Molecular Probes D-7756
Fluorescent microscopes Olympus SZX12, BX51

References

  1. Chédotal, A. Further tales of the midline. Current Opinion in Neurobiology. 21, 68-75 (2011).
  2. Avraham, O., Hadas, Y., Vald, L., Zisman, S., Schejter, A., Visel, A., Klar, A. Transcriptional control of axonal guidance and sorting in dorsal interneurons by the Lim-HD proteins Lhx9 and Lhx1. Neural Development. 4, 21 (2009).
  3. Wilson, N. H., Stoeckli, E. T. Cell type specific, traceable gene silencing for functional gene analysis during vertebrate neural development. Nucleic Acids Research. 39, e133 (2011).
  4. Das, R. M., van Hateren, N. J., Howell, G. R., Farrell, E. R., Bangs, F. K., Porteous, V. C. A robust system for RNA interference in the chicken using a modified microRNA operon. 발생학. 294, 554-563 (2006).
  5. Perrin, F. E., Stoeckli, E. T. Use of lipophilic dyes in studies of axonal pathfinding in vivo. Microscopy Research and Technique. 48, 25-31 (2000).
  6. Timmer, J., Johnson, J., Niswander, L. The use of in ovo electroporation for the rapid analysis of neural-specific murine enhancers. Genesis. 29, 123-132 (2001).
  7. Kieleczawa, J. Simple modifications of the standard DNA sequencing protocol allow for sequencing through siRNA hairpins and other repeats. Journal of Biomolecular Techniques. 16, 220-223 (2005).
  8. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88, 49-92 (1951).
  9. Boulland, J., Halasi, G., Kasumacic, N., Glover, J. C. Xenotransplantation of Human Stem Cells into the Chicken Embryo. J. Vis. Exp. (41), e2071 (2010).
  10. Kim, B. G., Dai, H. -. N., McAtee, M., Vicini, S., Bregman, B. S. Labeling of dendritic spines with the carbocyanine dye DiI for confocal microscopic imaging in lightly fixed cortical slices. Journal of Neuroscience Methods. 162, 237-243 (2007).
  11. Murphy, M. C., Fox, E. A. Anterograde tracing method using DiI to label vagal innervation of the embryonic and early postnatal mouse gastrointestinal tract. Journal of Neuroscience Methods. 163, 213-225 (2007).
  12. Helms, A. W., Abney, A. L., Ben-Arie, N., Zoghbi, H. Y., Johnson, J. E. Autoregulation and multiple enhancers control Math1 expression in the developing nervous system. Development. 127, 1185-1196 (2000).
  13. Li, X., Lufkin, T. Cre recombinase expression in the floorplate, notochord and gut epithelium in transgenic embryos driven by the Hoxa-1 enhancer III. Genesis. 26, 121-122 (2000).
  14. Mauti, O., Baeriswyl, T., Stoeckli, E. T. G. e. n. e. Silencing by Injection and Electroporation of dsRNA in Avian Embryos. Cold Spring Harbor Protocols. , (2008).
  15. Krull, C. E. A primer on using in ovo electroporation to analyze gene function. Developmental Dynamics. 229, 433-439 (2004).
  16. Cullen, B. R. Enhancing and confirming the specificity of RNAi experiments. Nature Methods. 3, 677-681 (2006).
check_url/kr/4384?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wilson, N. H., Stoeckli, E. T. In ovo Electroporation of miRNA-based Plasmids in the Developing Neural Tube and Assessment of Phenotypes by DiI Injection in Open-book Preparations. J. Vis. Exp. (68), e4384, doi:10.3791/4384 (2012).

View Video