Summary

<sub> 1</sub> F<sub> O</sub> ATPase Vesikkel Forberedelse og teknikk for utøvende Patch Clamp Innspillinger av Submitochondrial vesikkelmikrosomer Membraner

Published: May 04, 2013
doi:

Summary

En metode for å isolere submitochondrial blemmer beriket i F1FO ATP syntase komplekser fra rotte hjernen er beskrevet. Disse vesikler tillate undersøkelse av aktiviteten av ATPase F1FO kompleks og dens modulasjon ved fremgangsmåten ifølge patch clamp opptak.

Abstract

Mitokondriene er involvert i mange viktige cellulære funksjoner, inkludert metabolisme, overlevelse ett, utvikling og, kalsium signalisering to. To av de viktigste funksjonene mitokondrielle er relatert til effektiv produksjon av ATP, energiverdi av cellen, ved oksidativ fosforylering, og formidling av signaler for programmert celledød 3..

Enzymet primært ansvarlig for produksjon av ATP er den F1FO-ATP syntase, også kalt ATP syntase 4-5. I de senere årene har rollen som mitokondriene i apoptotiske og nekrotiske celledød fått stor oppmerksomhet. I celledød ved apoptose, BCL-2 familien proteiner som Bax inn mitokondrie ytre membran, oligomerize og permeabilize ytre membran, slippe pro-apoptotiske faktorer inn i cytosol seks. I klassisk nekrotisk celledød, slik som den som produseres av iskemi eller eksitotoksisitet i neuroner, en støre, dårlig regulert økning av matrise kalsium bidrar til åpningen av en indre membran pore, mitokondrie permeabilitet overgang pore eller MPTP. Dette depolarizes den indre membran og fører osmotiske skift, bidrar til ytre membran ruptur, frigjøring av pro-apoptotiske faktorer, og metabolsk dysfunksjon. Mange proteiner inkludert BCL-XL 7 samhandle med F1FO ATP syntase, modulerende sin funksjon. BCL-XL samhandler direkte med beta subenhet av F1FO ATP syntase, og dette samspillet reduserer en lekkasje ledningsevne i F1FOATPasecomplex, øke netto transport av H + av F1FO under F1FO ATPase aktivitet åtte og dermed øke mitokondrie effektivitet. Å studere aktiviteten og modulering av ATP syntase, isolert vi fra gnager hjernen submitochondrial vesikler (SMVs) inneholder F1FO ATPase. De SMVs beholde den strukturelle og funksjonelle integritet av F1FO ATPase som vist i Alavian et al. Her beskriver vi en fremgangsmåteat vi har brukt med hell for isolering av SMVs fra rottehjerne og vi avgrense patch clamp teknikk for å analysere aktiviteten på kanalen (ion lekkasje konduktans) av SMVs.

Protocol

En. Brain Mitokondrie Isolasjon (Tilpasset fra Brown MR et al. 9) Ofre rotte hjelp av metoder som er godkjent av Institutional Animal Care og bruk Committee (IACUC). Kutt hodet av dyret ved halshogging, kutt i huden og avsløre skallen. Åpne skallen forsiktig ved å skjære med en saks eller rongeur. Fjern hjernen. Finhakk fint hjernen uten lillehjernen i Isolation Buffer (se tabell 1) og overføre den til et 5 ml glass / teflon homogenisator…

Representative Results

Det første trinn i vår protokoll tillater isolering av renset mitokondrier som vist ved Western blot i figur 1.. I figur 2 er vist et eksempel på et hjerne-avledet submitochondrial vesikkel lapp opptak. Bruke innsiden ut patch konfigurasjonen vi demonstrere kanal aktivitet modulert av ATP. Kontrollen (CTL) opptak (til venstre) viser multi-konduktans kanal aktivitet med en topp ledningsevne på 600 pS i gjennomsnitt. som straks ble redusert ved tilsetning av 1 mM ATP til badekaret. De…

Discussion

Fremgangsmåtene beskrevet heri, muliggjøre isolering av ren mitokondrier ved slutten av trinn 1 og submitochondrial vesikler (SMVs) etter trinn 2 fra hel hjerne uten forskjell av celle phenotypes.SMVspurified ved denne fremgangsmåte er i det vesentlige fri for forurensning av andre subcellulære organeller som vist i Figur 1 og vår tidligere arbeid (Alavian KN et al. 8) og beholder sin strukturelle og funksjonelle integritet før frysing. Etter frysing og tining, isolerte mitokon…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Name Company Catalogue number
Potter-Elvehjem Tissue Grinder withPTFEPestle Krackeler Scientific, Inc. 1-7725T-5
Eppendorf Centrifuge 5424 Eppendorf 5424 000.410
4639 Cell Disruption Vessel Parr Instrument Company 4639
Ficoll Sigma-Aldrich F5415
Polycarbonate centrifuge tubes Beckman Coulter P20314
SW-50.1 rotor Beckman Coulter
L8-70M Ultracentrifuge Beckman Coulter
Digitonin Sigma-Aldrich D5628
Lubrol PX (C12E9) Calbiochem 205534
Axopatch 200B Axon Instruments
Digidata 1440A Molecular Device
pClamp10.0 Molecular Device
Manipulator Sutter Instrument
Borosilicate glass capillary World Precision Instruments 1308325
Flaming/Brown Micropipette Puller Model P-87 Sutter Instrument

References

  1. Cheng, W. C., Berman, S. B., Ivanovska, I., Jonas, E. A., Lee, S. J., Chen, Y., Kaczmarek, L. K., Pineda, F., Hardwick, J. M. Mitochondrial factors with dual roles in death and survival. Oncogene. 25, 4697-4705 (2006).
  2. Duchen, M. R., et al. Mitochondria and calcium in health and disease. Cell Calcium. 44, 1-5 (2008).
  3. Lemasters, J. J. Modulation of mitochondrial membrane permeability in pathogenesis, autophagy and control of metabolism. J. Gastroenterol. Hepatol. 22, S31-S37 (2007).
  4. Cox, G. B., Jans, D. A., Fimmel, A. L., Gibson, F., Hatch, L. Hypothesis. The mechanism of ATP synthase. Conformational change by rotation of the beta-subunit. Biochim. Biophys. Acta. 768, 201-208 (1984).
  5. Cox, G. B., Fimmel, A. L., Gibson, F., Hatch, L. The mechanism of ATP synthase: a reassessment of the functions of the b and a subunits. Biochim. Biophys. Acta. 849, 62-69 (1986).
  6. Cory, S., Huang, D. C., Adams, J. M. The Bcl-2 family: roles in cell survival and oncogenesis. Oncogene. 22, 8590-8607 (2003).
  7. Vander Heiden, M. G., Thompson, C. B. Bcl-2 proteins: regulators of apoptosis or of mitochondrial homeostasis. Nat. Cell Biol. 1, 209-216 (1999).
  8. Alavian, K. N., Li, H., Collis, L., Bonanni, L., Zeng, L., Sacchetti, S., Lazrove, E., Nabili, P., Flaherty, B., Graham, M., Chen, Y., Messerli, S. M., Mariggio, M. A., Rahner, C., McNay, E., Shore, G. C., Smith, P. J. S., Hardwick, J. M., Jonas, E. A. Bcl-xL regulates metabolic efficiency of neurons through interaction with the mitochondrial F1FO ATP synthase. Nat. Cell Biol. 13 (10), 1224-1233 (2011).
  9. Brown, M. R., Sullivan, P. G., Dorenbos, K. A., Modafferi, E. A., Geddes, J. W., Steward, O. Nitrogen disruption of synaptoneurosomes: an alternative method to isolate brain mitochondria. Journal of Neuroscience Methods. 137, 299-303 (2004).
  10. Chan, T. L., Greenawalt, J. W., Pedersen, P. L. Biochemical and ultrastructural properties of a mitochondrial inner membrane fraction deficient in outer membrane and matrix activities. J. Cell Biol. 45 (2), 291-305 (1970).
  11. Young, H. K. o., Delannoy, M., Hullihen, J., Chiu, W., Pedersen, P. L. Mitochondrial ATP Synthasomes. J. Biol. Chem. 278 (14), 12305-12309 (2003).
check_url/kr/4394?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sacchetti, S., Alavian, K. N., Lazrove, E., Jonas, E. A. F1FO ATPase Vesicle Preparation and Technique for Performing Patch Clamp Recordings of Submitochondrial Vesicle Membranes. J. Vis. Exp. (75), e4394, doi:10.3791/4394 (2013).

View Video