Vi beskriver en super-opløsning billeddannelse metoden til undersøgelse af den strukturelle organisation af det bakterielle FtsZ-ring, en væsentlig apparat til celledeling. Denne metode er baseret på kvantitative analyser af fotoaktiverede lokalisering mikroskopi (PALM) billeder og kan anvendes på andre bakterielle cytoskeletproteiner.
Bakteriel celledeling kræver den koordinerede samling af mere end ti essentielle proteiner ved midcell 1,2. Centralt for denne proces er dannelsen af en ringlignende suprastructure (Z-ring) af FtsZ proteinet ved opdelingsplaner 3,4. Z-ring består af multiple enkeltstrengede FtsZ protofilamenter, og forståelse af arrangementet af protofilamenter inde i Z-ringen, vil give indsigt i mekanismen for Z-ringsamlingen og dets funktion som force generator 5,6. Denne information er forblevet undvigende grund af de nuværende begrænsninger i konventionelle fluorescens mikroskopi og elektronmikroskopi. Konventionel fluorescens-mikroskopi er i stand til at tilvejebringe et billede med høj opløsning af Z-ring på grund af diffraktion grænsen af lys (~ 200 nm). Electron cryotomographic billeddannelse har registreret spredt FtsZ protofilamenter i små C. crescentus celler 7, men er vanskelig at anvende til større celler, såsomE. coli eller B. subtilis. Her beskriver vi anvendelsen af en super-opløsning fluorescensmikroskopi metode, til fotoaktiveret Localization Microscopy (PALM), kvantitativt karakterisere den strukturelle organisering af E. coli Z-ring 8.
PALM billedbehandling tilbyder både høj rumlig opløsning (~ 35 nm) og særlig mærkning for at muliggøre entydig identifikation af target-proteiner. Vi mærkede FtsZ med den fotoaktiverbare fluorescerende protein mEos2, som skifter fra grøn fluorescens (excitation = 488 nm) til rød fluorescens (excitation = 561 nm) efter aktivering ved 405 nm 9. Under en PALM eksperiment, er enlige FtsZ-mEos2 molekyler stokastisk aktiveret og de tilsvarende centroid positioner af de enkelte molekyler bestemmes med <20 nm præcision. En super-opløsning billede af Z-ringen bliver så rekonstrueret ved at sammenføje det geometriske tyngdepunkt positioner for alle detekterede FtsZ-mEos2 molekyler.
<p class = "jove_content"> anvendelse af denne fremgangsmåde, har vi fundet, at Z-ringen har en fast bredde på ~ 100 nm og består af en løs bundt FtsZ protofilamenter der overlapper hinanden i tre dimensioner. Disse data giver et afsæt til yderligere undersøgelser af cellecyklus afhængige ændringer i Z-ringen 10 og kan anvendes på andre proteiner af interesse.PALM billeder indeholder information om molekyle tæller og positioner inden for en celle, hvilket tillader detaljeret analyse af fordelingen og placeringen af mål-proteinmolekyler, som er vanskeligt at opnå på anden måde. Nedenfor skitserer vi forholdsregler, der skal træffes for at udtrække præcis kvantitativ information og samtidig opretholde den biologiske relevans af PALM billeder. Vi har også udforske oplysninger, der kan bedst opnås ved anvendelse af levende vs faste celler. Endelig foreslår vi mu…
The authors have nothing to disclose.
Grant: 5RO1GM086447-02.
Name of Reagent/Material | Company | Catalogue Number | Comments |
50 x MEM Amino Acids | Sigma | M5550 | |
100 x MEM Vitamins | Sigma | M6895 | |
IPTG | Mediatech | 46-102-RF | |
16% Paraformaldehyde | Electron Micrsocopy Sciences | 15710-S | |
SeaPlaque GTG Agarose | Lonzo | 50111 | |
50 nm Gold Beads | Microspheres-Nanospheres | 790113-010 | |
FCS2 Imaging Chamber | Bioptechs | ||
Stage Adaptor | ASI | I-3017 | |
Inverted Microscope | Olympus | IX71 | |
1.45 NA, 60x Objective | Olympus | ||
IXON EMCCD Camera | Andor Technology | DU897E | |
488-nm Sapphire Laser | Coherent | ||
561-nm Sapphire Laser | Coherent | ||
405-nm CUBE Laser | Coherent |