Summary

Genmodifisering og Rekombinasjon av spyttkjertel Organ kulturer

Published: January 28, 2013
doi:

Summary

En teknikk for å genetisk manipulere epitelceller i hele<em> Ex vivo</em> Kulturperler embryonale mus submandibular kjertler (maskingeværer) ved hjelp av viral genoverføring er beskrevet. Denne metoden tar fordel av medfødt evne SMG epitel og mesenchyme å spontant rekombinerer etter separasjon og infeksjon epiteliale barnelærdom med adenovirale vektorer.

Abstract

Forgrening morphogenesis oppstår under utviklingen av mange organer, og embryonale mus submandibular kjertel (SMG) er en klassisk modell for studiet av forgrening morphogenesis. I utviklingsland SMG, innebærer denne prosessen iterative trinn epitelisk knopp og kanalsystem formasjon, til slutt gir opphav til et komplekst forgrenet nettverk av acini og kanaler, som tjener til å produsere og modifisere / transportere spytt, henholdsvis inn i munnhulen 1 – 3. Epiteliale-assosiert basalmembran og aspekter ved mesenchymale kupeen, inkludert mesenchyme cellene, vekstfaktorer og den ekstracellulære matrix, produsert av disse celler, er avgjørende for den forgrenede mekanismen, selv hvor de cellulære og molekylære hendelser koordineres forblir dårlig forstått 4 . Studiet av de molekylære mekanismene kjører epiteliale morphogenesis fremskritt vår forståelse av utviklingsmessige mekanismer og gir innsikt i mulige regenerativAtive medisin tilnærminger. Slike studier har blitt hemmet på grunn av mangel på effektive metoder for genetisk manipulasjon av salivary epitel. For tiden representerer adenoviral transduksjon den mest effektive metoden for målretting epitelceller i voksen kjertler in vivo 5. Imidlertid i embryonale eksplanter, hemmer tett mesenchyme og basalmembran omgir epitelceller viral tilgang til epitelceller. Dersom mesenchyme er fjernet, kan epitelet bli transfektert med adenovirus, og epiteliale rudimenter kan gjenoppta branching morphogenesis i nærvær av Matrigel eller laminin-111 6,7. Mesenchyme-free epitelial rudiment vekst krever også ekstra tilskudd med oppløselige vekstfaktorer og ikke fullt rekapitulere forgrening morphogenesis som det skjer i intakte kjertler 8. Her beskriver vi en teknikk som letter adenovirale transduksjon av epitelceller og kultur av transfekterte epithelium med tilhørende mesenchyme. Etter mikrodisseksjon av embryonale maskingeværer, fjerning av mesenchyme, og viral infeksjon i epitelet med en GFP-holdig adenovirus, viser vi at epitelet spontant recombines med infisert mesenchyme, rekapitulere intakt SMG glandular struktur og forgrening morphogenesis. Den genmodifiserte epitelcelleopprinnelse befolkningen kan lett overvåkes ved hjelp av standard fluorescens mikroskopi metoder, hvis fluorescently-merket adenovirale konstruerer brukes. Vevet rekombinasjon metoden beskrevet her er for tiden den mest effektive og tilgjengelige metode for transfeksjon av epitelceller med en vill-type eller mutert vektor i en kompleks 3D vev konstruere som ikke krever generering av transgene dyr.

Protocol

Protokollen inneholder fire hovedtrinn, som avbildet i figur 1.. Alle trinn er beskrevet i detalj. Adenovirus konstruksjon og viral rensing bør utføres i forkant av organrøveri for bruk i den genetiske transduksjon av dissekert epiteliale rudimenter. Alle standard BSL-2 sikkerhetsregler bør følges når man jobber med adenoviruses. 1. Mus Embryonic submandibular kjertel (SMG) Høsting og mikrodisseksjon Avlive tidsstyrt gravide hunnmus (outbred stamme CD-en el…

Representative Results

Flyten av de store eksperimentelle trinnene er skissert i Figur 1. Et eksempel på en intakt SMG, en isolert epitelial rudiment, og dens tilhørende mesenchyme er vist i figur 2. Lysfelt bilder av rekombinerte maskingeværer, som fortsetter å gjennomgå forgrening morphogenesis når kultivert ex vivo for de angitte tider, er vist i figur 3. Rekombinerte kjertler dyrket i 48 timer uttrykker epitelial GFP er vist i figur 4. Confocal bilder av re…

Discussion

Den tidligere vivo epitelial-mesenchymale rekombinasjon teknikken ble først publisert for submandibular spyttkjertler i 1981 16. I denne protokollen, utvider vi på den opprinnelige metoden med adenoviral infeksjon å manipulere epitelcelleopprinnelse genuttrykk innenfor rammen av en rekombinert kjertel. Vi viser at en prosentandel av epitelcellene er infisert med adenovirus, mens prosentandelen av celler som er infisert avhenger egenskapene til viral promotor, viral titer, og viral renhet. Vi har f…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke dr. Deirdre Nelson for nyttige kommentarer og for kritisk lesning av manuskriptet. Dette arbeidet ble finansiert av NIH tilskudd DE019244, DE019197, og DE021841 til ML, F32DE02098001 til SJS, og C06 RR015464 til Universitetet i Albany, SUNY.

Materials

Name of the Reagent Company Catalog Number Comments
DMEM/Ham’s F12 Medium without phenol red Life Technologies 21041-025  
Penicillin and Streptomycin Life Technologies 15070-163 10X stock
Dispase Life Technologies 17105-041 Freeze single use aliquots at -20C
BSA Sigma A2934-100G Fraction V, low endotoxin
Adeno-X-GFP BD Biosciences 8138-1 Should be high titer (1×1010 pfu/ml). CsCl purified viruses are more effective than column-purified viruses in this assay.
16% Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 Diluted to 2% in PBS with 5% sucrose (w/v)
1X Phosphate-buffered saline (PBS) Life Technologies 70011-044 Prepared from 10X stock
Hank’s Balanced Salt Solution Life Technologies 14175095 no Calcium, no Magnesium, no Phenol Red
Transferrin Sigma T8158 25 mg/ml stock solution in DMEM/F12 media. Freeze single-use aliquots at -20C
L- Ascorbic acid (Vitamin C) Sigma A4403 75 mg/ml stock solution in DMEM/F12 media.Freeze single-use aliquots at -20C
      Table 1. List of reagents required for SMG recombination protocol.
       
10 cm sterile plastic dishes Corning 430167 Non-tissue culture-treated plates can also be used.
Stereo dissecting microscope with transmitted light base Nikon SMZ645 Any stereo dissecting microscope can be used that has a transmitted light base.
35 mm tissue culture dishes Falcon 353001 Non-tissue culture-treated plates can also be used.
50 mm diameter microwell dishes MatTek Corporation P50-G-1.5-14F  
Nuclepore Track-Etch membrane filters Whatman 110405 13 mm diameter, 0.1 mm pore size
Widefield fluorescence microscope Carl Zeiss, USA Axio Observer Z1 Any fluorescence microscope (upright, inverted or stereo dissecting microscope) can be used to monitor GFP expression at low magnification with an attached digital camera.
Confocal microscope Leica Microsystems TCS SP5 Confocal microscopy is necessary to see detailed cell structures. Any confocal microscope can be used.
Timed-pregnant female mice, strain CD-1 or ICR Charles River Labs   Embryos are harvested on day 13 (with day of plug discovery designated as day 0).
Scalpel blade #11 Fine Science Tools 10011-00  
Scalpel handle #3 Fine Science Tools 10003-12  
Dumont #5 forceps inox alloy, 0.05mm X 0.02mm Fine Science Tools 11252-20 Ideal for harvesting glands from embryos
Dumont #5 forceps dumostar alloy, 0.05mm X 0.01mm Fine Science Tools 11295-20 Fine tips are required for removing mesenchyme from epithelium. Tungsten needles can also be used.
      Table 2. Equipment used in SMG recombination protocol.

References

  1. Tucker, A. S. Salivary gland development. Seminars in cell & developmental biology. 18, 237-244 (2007).
  2. Sakai, T., Onodera, T. Embryonic organ culture. Curr. Protoc. Cell Biol. Chapter 19, Unit 19 (2008).
  3. Patel, V. N., Rebustini, I. T., Hoffman, M. P. Salivary gland branching morphogenesis. Differentiation. 74, 349-364 (2006).
  4. Sequeira, S. J., Larsen, M., DeVine, T. Extracellular matrix and growth factors in salivary gland development. Frontiers of oral biology. 14, 48-77 (2010).
  5. Zheng, C., et al. Transient detection of E1-containing adenovirus in saliva after the delivery of a first-generation adenoviral vector to human parotid gland. J. Gene Med. 12, 3-10 (2010).
  6. Larsen, M., et al. Role of PI 3-kinase and PIP3 in submandibular gland branching morphogenesis. Developmental biology. 255, 178-191 (2003).
  7. Hoffman, M. P., et al. Gene expression profiles of mouse submandibular gland development: FGFR1 regulates branching morphogenesis in vitro through BMP- and FGF-dependent mechanisms. Development. 129, 5767-5778 (2002).
  8. Rebustini, I. T., Hoffman, M. P. ECM and FGF-dependent assay of embryonic SMG epithelial morphogenesis: investigating growth factor/matrix regulation of gene expression during submandibular gland development. Methods Mol. Biol. 522, 319-330 (2009).
  9. Partanen, A. M., Thesleff, I. Transferrin and tooth morphogenesis: retention of transferrin by mouse embryonic teeth in organ culture. Differentiation. 34, 25-31 (1987).
  10. Naka, T., et al. Modulation of branching morphogenesis of fetal mouse submandibular gland by sodium ascorbate and epigallocatechin gallate. In Vivo. 19, 883-888 (2005).
  11. Bornstein, P., Traub, W., Neurath, H., Hill, R. L. The chemistry and biology of collagen. The Proteins. 4, 412-632 (1979).
  12. Zhou, L., Higginbotham, E. J., Yue, B. Y. Effects of ascorbic acid on levels of fibronectin, laminin and collagen type 1 in bovine trabecular meshwork in organ culture. Curr. Eye Res. 17, 211-217 (1998).
  13. Daley, W. P., et al. ROCK1-directed basement membrane positioning coordinates epithelial tissue polarity. Development. 139, 411-422 (2012).
  14. Daley, W. P., Gulfo, K. M., Sequeira, S. J., Larsen, M. Identification of a mechanochemical checkpoint and negative feedback loop regulating branching morphogenesis. Developmental biology. 336, 169-182 (2009).
  15. Sequeira, S. J., et al. The regulation of focal adhesion complex formation and salivary gland epithelial cell organization by nanofibrous PLGA scaffolds. Biomaterials. 33, 3175-3186 (2012).
  16. Nogawa, H., Mizuno, T. Mesenchymal control over elongating and branching morphogenesis in salivary gland development. Journal of embryology and. 66, 209-221 (1981).
  17. Sakai, T., Larsen, M., Yamada, K. M. Fibronectin requirement in branching morphogenesis. Nature. 423, 876-881 (2003).
  18. Daley, W. P., Kohn, J. M., Larsen, M. A focal adhesion protein-based mechanochemical checkpoint regulates cleft progression during branching morphogenesis. Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists. 240, 2069-2083 (2011).
  19. Knox, S. M., et al. Parasympathetic innervation maintains epithelial progenitor cells during salivary organogenesis. Science. 329, 1645-1647 (2010).
  20. Larsen, M., Wei, C., Yamada, K. M. Cell and fibronectin dynamics during branching morphogenesis. J. Cell Sci. 119, 3376-3384 (2006).
  21. Wei, C., Larsen, M., Hoffman, M. P., Yamada, K. M. Self-organization and branching morphogenesis of primary salivary epithelial cells. Tissue Eng. 13, 721-735 (2007).
  22. Zheng, C., Baum, B. J. Evaluation of viral and mammalian promoters for use in gene delivery to salivary glands. Mol. Ther. 12, 528-536 (2005).
  23. Hsu, J. C., et al. Viral gene transfer to developing mouse salivary glands. J. Dent. Res. 91, 197-202 (2012).
check_url/kr/50060?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sequeira, S. J., Gervais, E. M., Ray, S., Larsen, M. Genetic Modification and Recombination of Salivary Gland Organ Cultures. J. Vis. Exp. (71), e50060, doi:10.3791/50060 (2013).

View Video