En teknikk for å genetisk manipulere epitelceller i hele<em> Ex vivo</em> Kulturperler embryonale mus submandibular kjertler (maskingeværer) ved hjelp av viral genoverføring er beskrevet. Denne metoden tar fordel av medfødt evne SMG epitel og mesenchyme å spontant rekombinerer etter separasjon og infeksjon epiteliale barnelærdom med adenovirale vektorer.
Forgrening morphogenesis oppstår under utviklingen av mange organer, og embryonale mus submandibular kjertel (SMG) er en klassisk modell for studiet av forgrening morphogenesis. I utviklingsland SMG, innebærer denne prosessen iterative trinn epitelisk knopp og kanalsystem formasjon, til slutt gir opphav til et komplekst forgrenet nettverk av acini og kanaler, som tjener til å produsere og modifisere / transportere spytt, henholdsvis inn i munnhulen 1 – 3. Epiteliale-assosiert basalmembran og aspekter ved mesenchymale kupeen, inkludert mesenchyme cellene, vekstfaktorer og den ekstracellulære matrix, produsert av disse celler, er avgjørende for den forgrenede mekanismen, selv hvor de cellulære og molekylære hendelser koordineres forblir dårlig forstått 4 . Studiet av de molekylære mekanismene kjører epiteliale morphogenesis fremskritt vår forståelse av utviklingsmessige mekanismer og gir innsikt i mulige regenerativAtive medisin tilnærminger. Slike studier har blitt hemmet på grunn av mangel på effektive metoder for genetisk manipulasjon av salivary epitel. For tiden representerer adenoviral transduksjon den mest effektive metoden for målretting epitelceller i voksen kjertler in vivo 5. Imidlertid i embryonale eksplanter, hemmer tett mesenchyme og basalmembran omgir epitelceller viral tilgang til epitelceller. Dersom mesenchyme er fjernet, kan epitelet bli transfektert med adenovirus, og epiteliale rudimenter kan gjenoppta branching morphogenesis i nærvær av Matrigel eller laminin-111 6,7. Mesenchyme-free epitelial rudiment vekst krever også ekstra tilskudd med oppløselige vekstfaktorer og ikke fullt rekapitulere forgrening morphogenesis som det skjer i intakte kjertler 8. Her beskriver vi en teknikk som letter adenovirale transduksjon av epitelceller og kultur av transfekterte epithelium med tilhørende mesenchyme. Etter mikrodisseksjon av embryonale maskingeværer, fjerning av mesenchyme, og viral infeksjon i epitelet med en GFP-holdig adenovirus, viser vi at epitelet spontant recombines med infisert mesenchyme, rekapitulere intakt SMG glandular struktur og forgrening morphogenesis. Den genmodifiserte epitelcelleopprinnelse befolkningen kan lett overvåkes ved hjelp av standard fluorescens mikroskopi metoder, hvis fluorescently-merket adenovirale konstruerer brukes. Vevet rekombinasjon metoden beskrevet her er for tiden den mest effektive og tilgjengelige metode for transfeksjon av epitelceller med en vill-type eller mutert vektor i en kompleks 3D vev konstruere som ikke krever generering av transgene dyr.
Den tidligere vivo epitelial-mesenchymale rekombinasjon teknikken ble først publisert for submandibular spyttkjertler i 1981 16. I denne protokollen, utvider vi på den opprinnelige metoden med adenoviral infeksjon å manipulere epitelcelleopprinnelse genuttrykk innenfor rammen av en rekombinert kjertel. Vi viser at en prosentandel av epitelcellene er infisert med adenovirus, mens prosentandelen av celler som er infisert avhenger egenskapene til viral promotor, viral titer, og viral renhet. Vi har f…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne ønsker å takke dr. Deirdre Nelson for nyttige kommentarer og for kritisk lesning av manuskriptet. Dette arbeidet ble finansiert av NIH tilskudd DE019244, DE019197, og DE021841 til ML, F32DE02098001 til SJS, og C06 RR015464 til Universitetet i Albany, SUNY.
Name of the Reagent | Company | Catalog Number | Comments |
DMEM/Ham’s F12 Medium without phenol red | Life Technologies | 21041-025 | |
Penicillin and Streptomycin | Life Technologies | 15070-163 | 10X stock |
Dispase | Life Technologies | 17105-041 | Freeze single use aliquots at -20C |
BSA | Sigma | A2934-100G | Fraction V, low endotoxin |
Adeno-X-GFP | BD Biosciences | 8138-1 | Should be high titer (1×1010 pfu/ml). CsCl purified viruses are more effective than column-purified viruses in this assay. |
16% Paraformaldehyde | Electron Microscopy Sciences | 15710 | Diluted to 2% in PBS with 5% sucrose (w/v) |
1X Phosphate-buffered saline (PBS) | Life Technologies | 70011-044 | Prepared from 10X stock |
Hank’s Balanced Salt Solution | Life Technologies | 14175095 | no Calcium, no Magnesium, no Phenol Red |
Transferrin | Sigma | T8158 | 25 mg/ml stock solution in DMEM/F12 media. Freeze single-use aliquots at -20C |
L- Ascorbic acid (Vitamin C) | Sigma | A4403 | 75 mg/ml stock solution in DMEM/F12 media.Freeze single-use aliquots at -20C |
Table 1. List of reagents required for SMG recombination protocol. | |||
10 cm sterile plastic dishes | Corning | 430167 | Non-tissue culture-treated plates can also be used. |
Stereo dissecting microscope with transmitted light base | Nikon | SMZ645 | Any stereo dissecting microscope can be used that has a transmitted light base. |
35 mm tissue culture dishes | Falcon | 353001 | Non-tissue culture-treated plates can also be used. |
50 mm diameter microwell dishes | MatTek Corporation | P50-G-1.5-14F | |
Nuclepore Track-Etch membrane filters | Whatman | 110405 | 13 mm diameter, 0.1 mm pore size |
Widefield fluorescence microscope | Carl Zeiss, USA | Axio Observer Z1 | Any fluorescence microscope (upright, inverted or stereo dissecting microscope) can be used to monitor GFP expression at low magnification with an attached digital camera. |
Confocal microscope | Leica Microsystems | TCS SP5 | Confocal microscopy is necessary to see detailed cell structures. Any confocal microscope can be used. |
Timed-pregnant female mice, strain CD-1 or ICR | Charles River Labs | Embryos are harvested on day 13 (with day of plug discovery designated as day 0). | |
Scalpel blade #11 | Fine Science Tools | 10011-00 | |
Scalpel handle #3 | Fine Science Tools | 10003-12 | |
Dumont #5 forceps inox alloy, 0.05mm X 0.02mm | Fine Science Tools | 11252-20 | Ideal for harvesting glands from embryos |
Dumont #5 forceps dumostar alloy, 0.05mm X 0.01mm | Fine Science Tools | 11295-20 | Fine tips are required for removing mesenchyme from epithelium. Tungsten needles can also be used. |
Table 2. Equipment used in SMG recombination protocol. |