Summary

Modificação genética e recombinação de culturas de órgãos de glândula salivar

Published: January 28, 2013
doi:

Summary

Uma técnica para manipular geneticamente as células epiteliais no quadro da totalidade<em> Ex vivo</em> Cultivadas glândulas embrionárias de camundongos submandibulares (SMGs) utilizando transferência de gene viral é descrito. Este método tira vantagem da capacidade inata de SMG epitélio e mesênquima para recombinar-se espontaneamente, após a separação e a infecção de rudimentos epiteliais com vectores adenovirais.

Abstract

Ramificação morfogénese ocorre durante o desenvolvimento de muitos órgãos, e a glândula submandibular embrionário de rato (GSM) é um modelo clássico para o estudo da ramificação morfogénese. No desenvolvimento de SMG, este processo envolve passos iterativos de broto epitelial e formação de condutas, para finalmente dar origem a uma rede complexa ramificada de ácinos e ductos, que servem para produzir e modificar / transportar a saliva, respectivamente, para dentro da cavidade oral 1 – 3. A membrana basal epitelial associada e aspectos do compartimento mesenquimal, incluindo as células do mesênquima, factores de crescimento e da matriz extracelular, produzida por estas células, são essenciais para o mecanismo de ramificação, embora como os eventos celulares e moleculares são coordenadas permanece pouco compreendido 4 . O estudo dos mecanismos moleculares condução avanços morfogênese epiteliais nossa compreensão de mecanismos de desenvolvimento e fornece insights sobre Regener possívelAtive abordagens da medicina. Estes estudos têm sido dificultados pela falta de métodos eficazes de manipulação genética do epitélio salivar. Atualmente, a transdução adenoviral representa o método mais eficaz para os células epiteliais nas glândulas adultos in vivo 5. No entanto, em explantes de embriões, mesênquima densa e a membrana basal que envolve as células epiteliais viral impede o acesso às células epiteliais. Se o mesênquima é removida, o epitélio pode ser transfectado utilizando adenovírus, e rudimentos epiteliais pode retomar a morfogénese ramificação na presença de Matrigel ou laminina-111 6,7. Mesênquima livre de crescimento epitelial rudimento também requer suplementação adicional com factores de crescimento solúveis e não totalmente recapitular morfogénese de ramificação tal como ocorre nas glândulas intactas 8. Aqui descrevemos uma técnica que facilita a transdução adenoviral de células epiteliais e cultura do e transfectadaspithelium com mesênquima associado. Após microdissecção dos SMGs embrionárias, a remoção do mesênquima e infecção viral do epitélio com um adenovírus contendo GFP, vamos mostrar que o epitélio espontaneamente recombina com mesênquima não infectado, recapitulando estrutura intacta SMG glandular ea ramificação morfogênese. A população de células geneticamente modificadas epitelial pode ser facilmente controlada por meio de métodos padrão de microscopia de fluorescência, se fluorescentemente marcado com construções adenovirais são utilizados. O método de recombinação tecido aqui descrito é actualmente o método mais eficaz e acessível para a transfecção de células epiteliais com um vector do tipo selvagem ou mutante no interior uma estrutura de tecido complexo 3D que não requer a geração de animais transgénicos.

Protocol

O protocolo contém quatro etapas principais, conforme representado na Figura 1. Todos os passos são descritos em pormenor. Construção do adenovírus e purificação viral deve ser realizada antes da colheita de órgãos para utilização na transdução genética das dissecados rudimentos epiteliais. Todos os padrões de precauções BSL-2 de segurança devem ser seguidas quando se trabalha com adenovírus. 1. Embrionárias de camundongos glândula submandibular colheita (…

Representative Results

O fluxo dos principais passos experimentais é apresentada na Figura 1. Um exemplo de um SMG intacto, um rudimento isolado epitelial, e sua mesênquima correspondente são mostrados na Figura 2. As imagens de campo claro de SMGs recombinadas, que continuam a sofrer de ramificação morfogénese quando cultivadas ex vivo para os tempos indicados, são mostrados na Figura 3. Glândulas recombinados cultivadas durante 48 horas expressando GFP epitelial são mostra…

Discussion

O ex vivo técnica de recombinação epitelial-mesenquimal foi publicado em glândulas salivares submandibulares em 1981 16. Neste protocolo, expandir-se no método original, utilizando infecção adenoviral para manipular a expressão de genes das células epiteliais, no contexto de uma glândula recombinada. Mostra-se que a percentagem de células epiteliais infectadas com o adenovirus, enquanto que a percentagem de células que estão infectadas depende das propriedades do promotor viral, titulaç…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores gostariam de agradecer ao Dr. Nelson Deirdre pelos comentários úteis e para a leitura crítica do manuscrito. Este trabalho foi financiado pelo NIH DE019244, DE019197, e DE021841 a ML, F32DE02098001 a SJS, e C06 RR015464 para a Universidade de Albany, SUNY.

Materials

Name of the Reagent Company Catalog Number Comments
DMEM/Ham’s F12 Medium without phenol red Life Technologies 21041-025  
Penicillin and Streptomycin Life Technologies 15070-163 10X stock
Dispase Life Technologies 17105-041 Freeze single use aliquots at -20C
BSA Sigma A2934-100G Fraction V, low endotoxin
Adeno-X-GFP BD Biosciences 8138-1 Should be high titer (1×1010 pfu/ml). CsCl purified viruses are more effective than column-purified viruses in this assay.
16% Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 Diluted to 2% in PBS with 5% sucrose (w/v)
1X Phosphate-buffered saline (PBS) Life Technologies 70011-044 Prepared from 10X stock
Hank’s Balanced Salt Solution Life Technologies 14175095 no Calcium, no Magnesium, no Phenol Red
Transferrin Sigma T8158 25 mg/ml stock solution in DMEM/F12 media. Freeze single-use aliquots at -20C
L- Ascorbic acid (Vitamin C) Sigma A4403 75 mg/ml stock solution in DMEM/F12 media.Freeze single-use aliquots at -20C
      Table 1. List of reagents required for SMG recombination protocol.
       
10 cm sterile plastic dishes Corning 430167 Non-tissue culture-treated plates can also be used.
Stereo dissecting microscope with transmitted light base Nikon SMZ645 Any stereo dissecting microscope can be used that has a transmitted light base.
35 mm tissue culture dishes Falcon 353001 Non-tissue culture-treated plates can also be used.
50 mm diameter microwell dishes MatTek Corporation P50-G-1.5-14F  
Nuclepore Track-Etch membrane filters Whatman 110405 13 mm diameter, 0.1 mm pore size
Widefield fluorescence microscope Carl Zeiss, USA Axio Observer Z1 Any fluorescence microscope (upright, inverted or stereo dissecting microscope) can be used to monitor GFP expression at low magnification with an attached digital camera.
Confocal microscope Leica Microsystems TCS SP5 Confocal microscopy is necessary to see detailed cell structures. Any confocal microscope can be used.
Timed-pregnant female mice, strain CD-1 or ICR Charles River Labs   Embryos are harvested on day 13 (with day of plug discovery designated as day 0).
Scalpel blade #11 Fine Science Tools 10011-00  
Scalpel handle #3 Fine Science Tools 10003-12  
Dumont #5 forceps inox alloy, 0.05mm X 0.02mm Fine Science Tools 11252-20 Ideal for harvesting glands from embryos
Dumont #5 forceps dumostar alloy, 0.05mm X 0.01mm Fine Science Tools 11295-20 Fine tips are required for removing mesenchyme from epithelium. Tungsten needles can also be used.
      Table 2. Equipment used in SMG recombination protocol.

References

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Cite This Article
Sequeira, S. J., Gervais, E. M., Ray, S., Larsen, M. Genetic Modification and Recombination of Salivary Gland Organ Cultures. J. Vis. Exp. (71), e50060, doi:10.3791/50060 (2013).

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