Summary

Cryosectioning Gjær Communities for å undersøke Fluorescens Patterns

Published: December 26, 2012
doi:

Summary

Vi presenterer en protokoll for frysing og cryosectioning gjær samfunn for å observere interne mønstre av fluorescerende celler. Metoden baserer seg på metanol-innfesting og OCT-innebygging for å bevare den romlige fordelingen av celler uten å inaktivere fluorescerende proteiner i et fellesskap.

Abstract

Mikrober vanligvis lever i lokalsamfunn. Den romlige organisering av celler innenfor et fellesskap antas å påvirke overlevelse og funksjon av fellesskap 1. Optiske seksjonering teknikker, inkludert confocal og to-foton mikroskopi, har vist seg nyttig for å observere romlige organiseringen av bakterie-og archaeal samfunn 2,3. En kombinasjon av confocal avbildning og fysisk seksjonering av gjær kolonier har avdekket interne organiseringen av celler 4. Imidlertid har direkte optisk seksjonering hjelp confocal eller to-foton mikroskopi vært bare i stand til å nå et par cellelagene dypt inn gjær koloniene. Denne begrensningen er sannsynlig på grunn av sterk spredning av lys fra gjærceller 4.

Her presenterer vi en metode basert på å fikse og cryosectioning å få romlige fordelingen av fluorescerende celler innenfor Saccharomyces cerevisiae lokalsamfunn. Vi bruker metanol som fiksativ middelå bevare den romlige fordelingen av celler. Faste samfunn er infiltrert med oktober sammensatte, frossen, og cryosectioned i en kryostaten. Fluorescens avbildning av seksjonene avslører den interne organiseringen av fluorescerende celler i samfunnet.

Eksempler på gjær samfunn bestående av stammer som uttrykker røde og grønne fluorescerende proteiner demonstrere mulighetene til cryosectioning metode for å avsløre den romlige fordelingen av fluorescerende celler samt at av genuttrykk i gjær koloniene 2,3. Selv om vårt fokus har vært på Saccharomyces cerevisiae lokalsamfunn, kan samme metode potensielt brukes til å undersøke andre mikrobielle samfunn.

Protocol

1. Fixing Gjær Communities Grow gjær samfunn på et membranfilter (f.eks Millipore MF membranfilter, figur 2A). Denne protokollen tilsvarer en typisk fellesskap av mindre enn 2×10 8 celler i et 6 mm-diameter membranfilter. Bruk et stykke Whatman 541 filterpapir til å dekke bunnen av en 1 cm diameter brønn (figur 2B). Dette Whatman papir vil bli brukt som en bærer for å overføre fellesskapet i senere faser. Tilsett 1 ml 100% metanol til br?…

Representative Results

Fluorescens bilder av vertikale tverrsnitt av gjær lokalsamfunn inneholdende rød-og grønn-tagget konkurransedyktige populasjoner 6 er vist i figur 3. Disse gruppene består av to prototrofe stammer av gjær og deres konkurranse for delte ressurser, inkludert plass, fører til søyleformede 7 mønstre, som vist i deres vertikale tverrsnitt. Oppløsninger ned til en enkelt celle kan løses i tverrsnitt. Figur 3 sammenligner tverrsnitt av gjentatte samfunn oppnådd…

Discussion

Prosedyren som presenteres her tilbyr en måte å inspisere den interne strukturen av gjær lokalsamfunn. Metanolen fikse trinnet gjør gjær kolonien stive 8 og bevarer integriteten av kolonien, men det fører også til krymping 8 som bør tas hensyn til i å tolke resultatene. Vi vanligvis ser rundt 30% svinn i høyden av gjær kolonier, sammenlignet med kolonier direkte innebygd i OCT uten å rette 9.

For å unngå svinn, er en alternativ tilnærming for c…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke Jonathan Cooper Lab ved Fred Hutchinson Cancer Research Center for tillatelse til å bruke deres kryostaten. Dette arbeidet ble støttet av NIH og WM Keck Foundation. BM er en Gordon og Betty Moore stipendiat of Life Science Research Foundation. Vi er takknemlige for Daniel Gottschling for å dele sin festing protokollen med oss.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
100% Methanol J.T. Baker 9070-01
Tissue-Tek O.C.T. Compound Andwin Scientific 4583
Whatman Grade No. 541 Quantitative Filter Paper Whatman 1541-047
Millipore-MF Membrane Filter Millipore HAWP04700
Cryostat Leica CM 1510 S

References

  1. Tolker-Nielsen, T., Molin, S. Spatial Organization of Microbial Biofilm Communities. Microbial Ecology. 40 (2), 75-84 (2000).
  2. Moller, S., et al. In Situ Gene Expression in Mixed-Culture Biofilms: Evidence of Metabolic Interactions between Community Members. Appl. Environ. Microbiol. 64 (2), 721-732 (1998).
  3. Lepp, P. W., et al. Methanogenic Archaea and human periodontal disease. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (16), 6176-6181 (2004).
  4. Váchová, L., et al. Architecture of developing multicellular yeast colony: spatio-temporal expression of Ato1p ammonium exporter. Environmental Microbiology. 11 (7), 1866-1877 (2009).
  5. Mináriková, L., et al. Differentiated Gene Expression in Cells within Yeast Colonies. Experimental Cell Research. 271 (2), 296-304 (2001).
  6. Shou, W., et al. Synthetic cooperation in engineered yeast populations. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 1877-1882 (2007).
  7. Momeni, B., et al. Cooperation generates a unique spatial signature in microbial communities. , (2012).
  8. Kiernan, J., ed, . Histological and Histochemical Methods: Theory and Practice. , 4 (2008).
  9. Piccirillo, S., et al. The Rim101p/PacC Pathway and Alkaline pH Regulate Pattern Formation in Yeast Colonies. 유전학. 184 (3), 707-716 (2010).
check_url/kr/50101?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Momeni, B., Shou, W. Cryosectioning Yeast Communities for Examining Fluorescence Patterns. J. Vis. Exp. (70), e50101, doi:10.3791/50101 (2012).

View Video