Summary

Identifiering av<em> Törnrosa</em> Transposoninsättningar i solida tumörer med Linker-medierad PCR

Published: February 01, 2013
doi:

Summary

En metod för att identifiera okända förare av karcinogenes användning av en opartisk tillvägagångssätt beskrivs. Metoden använder<em> Törnrosa</em> Transposon som en slumpmässig mutagen riktad till specifika vävnader. Genomisk kartläggning av transposoninsättningar som driver tumörbildning identifierar nya onkogener och tumörsuppressorgener

Abstract

Genomiska, proteomik, transcriptomic och epigenomic analyser av humana tumörer tyder på att det finns tusentals anomalier inom varje cancer genomet jämfört med matchade normal vävnad. Baserat på dessa analyser är det uppenbart att det finns många oupptäckta genetiska förare av cancer 1. Tyvärr dessa drivrutiner är dolda i ett mycket större antal passagerare avvikelser i genomet som inte direkt bidrar till tumörbildning. En annan aspekt av cancer genomet är att det finns en stor genetisk heterogenitet inom liknande tumörtyper. Varje tumör kan hysa olika mutationer som ger en selektiv fördel för tumörbildning 2. Utföra en opartisk framåt genetisk skärm i möss ger förutsättningar för att generera tumörer och analysera deras genetiska sammansättning, samtidigt som bakgrunden för passagerare mutationer. The Sleeping Beauty (SB) transposon system är en sådan metod 3. SB-systemet utnyttjar mobil vavskärmare (transposoner) som kan införas i hela genomet genom den transposas enzymet. Mutationer är begränsade till en specifik celltyp genom användning av en villkorlig transposas allel som aktiveras av Cre-rekombinas. Många muslinjer existerar som uttrycker Cre-rekombinas i specifika vävnader. Genom att korsa en av dessa linjer till den villkorade transposaset allelen (t.ex. Lox-stop-Lox-SB11) är SB-systemet aktiveras endast i celler som uttrycker Cre rekombinas. Cre rekombinas kommer punktskatt stopp kassett som blockerar uttrycket av transposas allelen, därigenom aktivera transposon mutagenes inom den angivna celltypen. En SB skärm initieras genom avel tre stammar av transgena möss så att de experimentella mössen bär en villkorlig transposas allel, en konkatamer av transposoner och en vävnadsspecifik Cre-rekombinas allel. Dessa möss får ålder tills tumörer form och de blir döende. Mössen är sedanobduceras och genomiskt DNA isoleras från tumörerna. Därefter är det genomiska DNA utsattes för linker-medierad-PCR (LM-PCR) som resulterar i amplifiering av genomiska loci innehållande en SB transposon. LM-PCR utförs på en enda tumör kommer att resultera i hundratals olika amplikoner representerar hundratals genomiska loci innehåller transposoninsättningar i en enda tumör 4. De transposoninsättningar i alla tumörer analyseras och gemensamma insertionsställen (CISS) identifieras med hjälp av en lämplig statistisk metod 5. Gener inom OSS är mycket sannolikt att onkogener eller tumörsuppressorgener, och anses kandidat cancer gener. Fördelarna med att använda SB-systemet för att identifiera gener kandidat cancer är: 1) transposonen kan lätt lokaliseras i genomet, eftersom dess sekvens är känd, 2) kan riktas till nästan alla celltyper och 3) transposonen kan införlivandet införa både vinst-och förlust-av-funktion mutationer 6. Den following-protokollet beskriver hur man utforma och genomföra en framåt genetisk skärmen med hjälp av SB transposonen för att identifiera gener kandidat cancer (figur 1).

Protocol

1. Avel och åldrande av transgena djur Välj stammar av transgena möss som är lämpliga för experimentet. Ett typiskt experiment kommer att använda tre transgena linjer, ett villkorat transposas mus, en mus hyser en konkatamer av transposoner, och en mus som uttrycker Cre rekombinas i cellerna tros vara cellerna ursprungsreglerna för önskad cancer. Om cancern som modelleras har en känd mutation i en stor andel av patienter kan det vara önskvärt att inkludera denna mutation vid starten. Exem…

Representative Results

Efter avel system har inrättats bör uppfödare producerar en kull var 19-21 dagar. Kullstorlek kommer att variera mellan 5 och 12 valpar, beroende på ålder uppfödare och den genetiska bakgrunden. Dessutom, se till att genotypen av kullen följer Mendels genetik som ett sätt att bekräfta att avel systemet är både korrekt och framgångsrikt. För experimentet ska lyckas, bör tumörincidens i försöksdjuren vara betydligt större än tumörincidensen i kontrolldjuren. Om inget "…

Discussion

En framåt genetisk skärmen med hjälp av Törnrosa transposonen systemet ger en metod för att identifiera mutationer som orsakar cancer. Genom att välja lämplig promotor för att styra Cre rekombinas utöver eventuella predisponerande mutationer kommer SB-skärmen identifiera kända och nya kandidatgener cancer.

Framgången för en SB skärmen är till stor del beroende på de möss som valts för att skapa skärmen. För transposonen rekommenderar vi att du använder …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Branden Moriarity, David Largaespada, och Vincent Keng vid University of Minnesota, och Adam Dupuy vid universitetet i Iowa för deras hjälp med att utveckla protokollet beskrivet ovan.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Sure-Seal Induction Chamber Brain Tree Scientific EZ-177
Cryovial Bioexpress C-3355-2
10% Buffered Formalin Sigma Aldrich HT501128-4L
Protein Precipitation solution Qiagen 158910
Cell lysis buffer Qiagen 158906
Proteinase K Qiagen 158920
RNase A Qiagen 158924
TE Buffer Promega V6232
BfaI New England Biolabs R0568S
NlaIII New England Biolabs R0125S
MinElute 96 well plates Qiagen 28051
QIAvac 96 Vacuum manifold Qiagen 19504
Multi-MicroPlate Genie, 120V Scientific Industries, Inc. SI-4000
T4 DNA ligase with 5x ligation Buffer Invitrogen 15224-041
BamHI New England Biolabs R0136S
25mM dNTPs Bioexpress C-5014-200
Platinum Taq Invitrogen 10966-034
FastStart Taq DNA Polymerase Roche 12032929001
Agarose Promega V3121
TAE Buffer Promega V4271
TE Buffer Promega V6232
Ethidium bromide Promega H5041

References

  1. Fearon, E. R., Vogelstein, B., et al. A genetic model for colorectal tumorigenesis. Cell. 61, 759-767 (1990).
  2. Wood, L. D., et al. The Genomic Landscapes of Human Breast and Colorectal Cancers. Science. 318, 1108-1113 (2007).
  3. Ivics, Z., Hackett, P. B., Plasterk, R. H., Izsvák, Z. Molecular Reconstruction of Sleeping Beauty, a Tc1-like Transposon from Fish, and Its Transposition in Human Cells. Cell. 91, 501-510 (1997).
  4. Starr, T. K., Largaespada, D. A. Cancer gene discovery using the Sleeping Beauty transposon. Cell Cycle. 4, 1744-1748 (2005).
  5. Mueller, P. R., Wold, B. In Vivo Footprinting of a Muscle Specific Enhancer by Ligation Mediated PCR. Science. 246, 780-786 (1989).
  6. Bergemann, T. L., et al. New methods for finding common insertion sites and co-occurring common insertion sites in transposon- and virus-based genetic screens. Nucleic acids research. 40, 3822-3833 (2012).
  7. Copeland, N. G., Jenkins, N. A. Harnessing transposons for cancer gene discovery. Nature Reviews Cancer. 10, 696-706 (2010).
  8. Collier, L. S., Carlson, C. M., Ravimohan, S., Dupuy, A. J., Largaespada, D. A. Cancer gene discovery in solid tumours using transposon-based somatic mutagenesis in the mouse. Nature. 436, 272-276 (2005).
  9. Starr, T. K., et al. A transposon-based genetic screen in mice identifies genes altered in colorectal cancer. Science. 323, 1747-1750 (2009).
  10. Keng, V. W., et al. A conditional transposon-based insertional mutagenesis screen for genes associated with mouse hepatocellular carcinoma. Nature. 27, 264-274 (2009).
  11. Dupuy, A. J., Akagi, K., Largaespada, D. A., Copeland, N. G., Jenkins, N. A. Mammalian mutagenesis using a highly mobile somatic Sleeping Beauty transposon system. Nature. 436, 221-226 (2005).

Play Video

Cite This Article
Janik, C. L., Starr, T. K. Identification of Sleeping Beauty Transposon Insertions in Solid Tumors using Linker-mediated PCR. J. Vis. Exp. (72), e50156, doi:10.3791/50156 (2013).

View Video