Summary

Mäta tillväxt och Gene Dynamics Expression av tumör-Targeted<em> S. Typhimurium</em> Bakterier

Published: July 06, 2013
doi:

Summary

Målet med dessa försök är att generera kvantitativa tidsförlopp uppgifter om tillväxt och Gene dynamik uttryck av försvagad<em> S. typhimurium</em> Bakteriekolonier växer inuti tumörer. Denna video behandlar tumörcellen förberedelse och implantation, bakterier förberedelse och injicering, hel-djur luminiscens bildbehandling, tumör excision, och bakteriell koloniräkning.

Abstract

Målet med dessa försök är att generera kvantitativa tidsförlopp uppgifter om tillväxt och Gene dynamik uttryck av försvagad S. typhimurium kolonier växer inuti tumörer.

Vi genererade tumörer modell xenograft hos möss genom subkutan injektion av en human äggstockscancer cellinje, OVCAR-8 (NCI DCTD Tumör Repository, Frederick, MD).

Vi förvandlas försvagade stammar av S. typhimurium bakterier (ELH430: SL1344 phoPQ-1) med en konstitutivt uttryckt luciferas (luxCDABE) plasmid för visualisering 2. Dessa stammar kolonisera specifikt tumörer medan resterande väsentligen icke-virulent för musen 1.

När mätbara tumörer etablerades, var bakterier injicerades intravenöst via svansvenen med varierande dosering. Tumör-lokaliserad, var bakteriell genexpression övervakas i realtid under loppet av 60 timmar med användning av enin vivo imaging system (IVIS). Vid varje tidpunkt, var tumörerna skars ut, homogeniserades och ströks för att kvantifiera bakteriella kolonier för korrelation med data genuttryck.

Tillsammans ger dessa data ett kvantitativt mått på in vivo tillväxt och Gene dynamik uttryck av bakterier växer inuti tumörer.

Introduction

Syntetisk biologi har utvecklats snabbt under det senaste decenniet och är nu positionerade för att påverka viktiga problem inom energi och hälsa. Dock har expansion i kliniska arenan har saktat av oro för säkerheten och en frånvaro av att utveckla specifika kriterier för in vivo genetiska kretsar. Accelerera stor genomslagskraft medicinska tillämpningar kommer att kräva användning av förfaranden som har gränssnitt direkt med medicinsk infrastruktur, genetiska kretsar som fungerar utanför den kontrollerade labb miljö, samt säkra och kliniskt accepterade värdar mikrobiella.

Ett antal stammar har undersökts för cancerterapi på grund av deras förmåga att växa preferentiellt i tumörer. Dessa har inkluderat C. novyi, E. coli, V. cholorae, B. longum, och S. typhimurium 3-8. S. typhimurium har genererat särskilt intresse eftersom de har ställt säkerhet och tolerans i ett antal kliniska prövningar 9-12. Dessa bacteri en ursprungligen visats skapa antitumöreffekter genom stimulering av värdens immunsystem och genom utarmning av näringsämnen som krävs för cancer cellernas ämnesomsättning. Produktionen av terapeutisk last senare tillkommit genom genetiska modifieringar. Även om dessa studier utgör viktiga framsteg i användningen av bakterier för tumörläkemedel, har majoriteten av befintliga insatser förlitat sig på hög nivå uttryck som oftast resulterar i leverans av höga doser, off-target effekter och utveckling av värdresistens 13-16 .

Nu kan syntetisk biologi lägga programmerbar last produktionen genom att utnyttja beräkningsmässigt utformade genetiska kretsar som kan utföra avancerade sensorer och leverans 17-20. Dessa kretsar kan utformas för att fungera som leveranssystem som känner tumör-specifika stimuli och självreglering last produktion som behövs. Emellertid har studera funktionen av dessa kretsar i vivo hittills varit utmanande.

ve_content "> Eftersom plasmider är den gemensamma ramen för syntetiska kretsar, beskriver vi en metod för att karaktärisera dynamiken i plasmid-baserad genuttryck in vivo med hjälp av en musmodell. Dessa metoder utnyttjar time-lapse luminiscens bildbehandling och kvantitativ mätning av biofördelningen. Tillsammans Dessa metoder ger en ram för att studera plasmid-baserade nätverk in vivo för kliniska tillämpningar.

Protocol

Ett. Cellberedning Passage cellinjer med användning av standardtekniker för cellodling. I detta experiment använde vi OVCAR-8 celler (NCI DCTD Tumör Repository, Frederick, MD). Odla celler till ett mål konfluens av 80 – 100%. Inkubera cellerna med 5 ml trypsin under 5 minuter, tillsätt sedan 5 ml RPMI medium + FBS att inaktivera trypsin. Harvest och räkna cellerna på en hemocytometer. Resuspendera i fenolrött-fritt DMEM vid en målkoncentration av 5 x 10 7 celler / ml, …

Representative Results

Med hjälp av detta protokoll, kan vi ta fram data om in vivo-tillväxt och Gene dynamik uttryck av Tumor Targeted bakterier. Den övergripande arbetsflödet sammanfattas i Figur 1. I det första steget, injicera vi bakterier (grön) och image djuret med IVIS att mäta genuttryck med luminiscens (blått) som en reporter. Sedan, i det andra steget, vi punktskatter, homogenisera och platta tumörer för kolonier att bestämma antalet bakte…

Discussion

Med hjälp av denna procedur, kan vi generera tidsförlopp för tillväxt och Gene dynamik uttryck av bakterier koloniserar tumörer. Medan dessa mätningar rutinmässigt in vitro i satsvis odling eller mikrofluidik-enheter, de är mycket svårare att utföra in vivo.

Det finns flera modifikationer som kan tillämpas på dessa metoder. Medan vi använde OVCAR-8 cellinje för att skapa våra musmodeller, kan ett antal andra cellinjer användas ekvivalent. Exempelvis kan luci…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar H. Fleming för kritisk läsning och redigering av manuskriptet. Detta arbete stöddes av en Misrock Postdoktorsstipendium (TD) och NDSEG examen gemenskap (AP). SNB är en HHMI utredare.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1 ml syringe BD Biosciences 309602
3/10 cc Insulin Syringe BD Biosciences 309301
PrecisionGlide Needle BD Biosciences 301629
RPMI Medium 1640 (1X), liquid, with L-glutamine Invitrogen 11875-119
Ampicillin Sigma Aldrich A0166-5G
LB Agar Broth Sigma Aldrich L2897
Luria-Bertani broth BD Biosciences 244610

References

  1. Hohmann, E. L., Oletta, C. A., Miller, S. I. Evaluation of a phoP/phoQ-deleted, aroA-deleted live oral Salmonella typhi vaccine strain in human volunteers. Vaccine. 14 (1), 19-24 (1996).
  2. Leschner, S., et al. Tumor Invasion of Salmonella enterica Serovar Typhimurium Is Accompanied by Strong Hemorrhage Promoted by TNF-alpha. Plos One. 4 (8), (2009).
  3. Min, J. J., et al. Quantitative bioluminescence imaging of tumor-targeting bacteria in living animals. Nat. Protoc. 3 (4), 629-636 (2008).
  4. Min, J. J., et al. Noninvasive real-time imaging of tumors and metastases using tumor-targeting light-emitting Escherichia coli. Mol. Imaging Biol. 10 (1), 54-61 (2008).
  5. Choy, G., et al. Comparison of noninvasive fluorescent and bioluminescent small animal optical imaging. Biotechniques. 35 (5), 1022-1033 (2003).
  6. Pawelek, J. M., Low, K. B., Bermudes, D. Tumor-targeted Salmonella as a novel anticancer vector. 암 연구학. 57 (20), 4537-4544 (1997).
  7. Fu, X., Hoffman, R. M. Human ovarian carcinoma metastatic models constructed in nude mice by orthotopic transplantation of histologically-intact patient specimens. Anticancer Res. 13 (2), 283-286 (1993).
  8. Ozbudak, E. M., et al. Regulation of noise in the expression of a single gene. Nat. Genet. 31 (1), 69-73 (2002).
  9. Elowitz, M. B., et al. Stochastic gene expression in a single cell. Science. 297 (5584), 1183-1186 (2002).
  10. Toso, J. F., et al. Phase I study of the intravenous administration of attenuated Salmonella typhimurium to patients with metastatic melanoma. J. Clin. Oncol. 20 (1), 142-152 (2002).
  11. Heimann, D. M., Rosenberg, S. A. Continuous intravenous administration of live genetically modified salmonella typhimurium in patients with metastatic melanoma. J. Immunother. 26 (2), 179-180 (2003).
  12. Forbes, N. S. Engineering the perfect (bacterial) cancer therapy. Nat. Rev. Cancer. 10 (11), 785-794 (2010).
  13. Guo, H., et al. Targeting tumor gene by shRNA-expressing Salmonella-mediated RNAi. Gene Ther. 18 (1), 95-105 (2011).
  14. Hoffman, R. M. Tumor-seeking Salmonella amino acid auxotrophs. Curr Opin Biotechnol. 22 (6), 917-923 (2011).
  15. Nguyen, V. H., et al. Genetically engineered Salmonella typhimurium as an imageable therapeutic probe for cancer. 암 연구학. 70 (1), 18-23 (2010).
  16. Zhao, M., et al. Targeted therapy with a Salmonella typhimurium leucine-arginine auxotroph cures orthotopic human breast tumors in nude mice. 암 연구학. 66 (15), 7647-7652 (2006).
  17. Danino, T., et al. A synchronized quorum of genetic clocks. Nature. 463 (7279), 326-330 (2010).
  18. Anderson, J. C., et al. Environmentally controlled invasion of cancer cells by engineered bacteria. J. Mol. Biol. 355 (4), 619-627 (2006).
  19. Hasty, J., McMillen, D., Collins, J. J. Engineered gene circuits. Nature. 420 (6912), 224-230 (2002).
  20. Prindle, A., et al. A sensing array of radically coupled genetic ‘biopixels’. Nature. 481 (7379), 39-44 (2012).
  21. Xu, D. Q., et al. Bacterial delivery of siRNAs: a new approach to solid tumor therapy. Methods Mol. Biol. 487, 161-187 (2009).
  22. Zheng, L. M., et al. Tumor amplified protein expression therapy: Salmonella as a tumor-selective protein delivery vector. Oncol. Res. 12 (3), 127-1235 (2000).
  23. Kim, K., et al. A novel balanced-lethal host-vector system based on glmS. Plos One. 8 (3), e60511 (2013).
  24. Prindle, A., et al. Genetic Circuits in Salmonella typhimurium. ACS Synthetic Biology. , (2012).
  25. Danino, T., et al. In vivo gene expression dynamics of tumor-targeted bacteria. ACS Synthetic Biology. , (2012).
  26. Zhao, M., et al. Spatial-temporal imaging of bacterial infection and antibiotic response in intact animals. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98 (17), 9814-9818 (2001).

Play Video

Cite This Article
Danino, T., Prindle, A., Hasty, J., Bhatia, S. Measuring Growth and Gene Expression Dynamics of Tumor-Targeted S. Typhimurium Bacteria. J. Vis. Exp. (77), e50540, doi:10.3791/50540 (2013).

View Video