Summary

Manuell Isolering av Fett-härledda stamceller från mänskliga Lipoaspirates

Published: September 26, 2013
doi:

Summary

År 2001, forskare vid UCLA beskrev isoleringen av en population av stamceller från vuxna, benämnd Fett-derived stamceller eller ASCs, från fettvävnad. Den här artikeln beskriver isolering av ASCs från lipoaspirates med en manuell, enzymatisk spjälkning protokollet använder kollagenas.

Abstract

År 2001, forskare vid University of California, Los Angeles, beskrev isoleringen av en ny population av adulta stamceller från fettsugning fettvävnad att de initialt kallas Bearbetade Lipoaspirate Celler eller PLA-celler. Sedan dess har dessa stamceller döpts som Fett-härledda stamceller eller ASCs och har gått vidare till att bli en av de mest populära vuxna stamceller populationer inom områdena stamcellsforskning och regenerativ medicin. Tusentals artiklar beskrivs nu användningen av ASC: er i en mängd olika regenerativa djurmodeller, inklusive benregenerering, perifer nervreparation och hjärt-engineering. Nya artiklar har börjat för att beskriva den mängd olika användningsområden för ASCs i kliniken. Det protokoll som visas i den här artikeln beskriver den grundläggande proceduren för manuell och enzymatiskt isolera ASCs från stora mängder lipoaspirates erhållits från kosmetiska behandlingar. Detta protokoll kan enkelt skalas upp eller ner för att accommodåt volymen lipoaspirate och kan anpassas för att isolera DSKer från fettvävnad erhållna genom abdominoplasties och liknande förfaranden.

Introduction

År 2001 var en förmodad befolkning på multipotenta stamceller från fettvävnad som beskrivs i tidskriften Tissue Engineering 1. Dessa celler fick namnet Bearbetade Lipoaspirate eller PLA-celler på grund av deras härledning från bearbetad lipoaspirate vävnad som erhållits genom plastikkirurgi. Isoleringen metod som beskrivs i den här artikeln byggde på befintliga enzymatiska strategier för isolering av stromaceller vaskulära fraktion (SVF) från fettvävnad 2. Den SVF har definierats som ett minimalt bearbetade population av röda blodceller, fibroblaster, endotelceller, glatta muskelceller, pericyter och pre-adipocyter som ännu inte hålla sig till en vävnadsodlingssubstrat 2, 3. Odling av denna SVF över tiden har föreslagits för att eliminera många av dessa kontaminerande cellpopulationer och resulterar i en vidhäftande, fibroblastisk befolkning. Dessa fibroblaster har identifierats i litteraturen för de senaste 40 åren som är pre-adipocyter. Men vår forskargrupp visat att dessa celler hade mesodermal multipotency och döptes den vidhäftande SVF befolkningen som PLA-celler. Efterföljande studier av ett stort antal andra forskargrupper har lagt till denna potential, vilket tyder både endodermalt och ektodermala potentialer (för översikt se 4). Sedan dess har ett flertal ytterligare termer för dessa celler föreföll i litteraturen. För att ge någon typ av konsensus, blev termen Adipose-härledda stamceller eller ASCs antogs vid den 2: a årliga konferens IFATS. Som sådan kommer termen ASC användas i den här artikeln.

Protokollet beskrivs i denna artikel är en relativt enkel procedur som kräver standard laboratorieutrustning och använder enkla reagenser såsom fosfor-saltlösning, standardvävnadsodlingsmedier reagenser och kollagenas. Den kan producera ett stort antal DSKer beroende på mängden av utgångs fettvävnad volym och efterföljande cKULTUR tid. Emellertid kan behandling av en sådan stor mängd av fettvävnad presentera några fysiska problem som kan minskas till en grad med hjälp av detta protokoll. Dessutom går detta protokoll kräver sterilt odlingsanläggningar och godkända biosäkerhet huvor, vilket nödvändiggör användning av en godkänd vävnadskultur anläggning. Detta krav kan också minska nyttan av ASC populationen i kliniska tillämpningar, om de är isolerade i god tillverkningssed (GMP)-godkända anläggningar avsedda för isolering och expansion av material för klinisk användning. Som ett alternativ, skulle automatiserade system som kan isolera ASCs i ett slutet system i operationssalen undvika denna viktiga fråga och möjliggöra omedelbar användning av ASCs utan behov av efterföljande in vitro expansion. Till dags dato finns det sex automatiserade system som är kommersiellt tillgängliga för isolering av celler från human vävnad. Dessa system kan göra det möjligt att isolera enbetydande antal ASCs från stora mängder fettvävnad omedelbart efter sin skörd. Dessa ASCs kan sedan återinföras i patienten för olika regenerativa ändamål utan patienten någonsin behöva lämna operationssalen. Utöver detta protokoll beskriver manuell isolering av DSK: er, är ett protokoll för automatiserad isolering av DSK: er med hjälp av Celution systemet också i en kamrat artikel.

Protocol

Protokollet visas här beskriver manuell isolering av ASCs från lipoaspirates erhållits genom kosmetiska behandlingar med hjälp av enzymatisk nedbrytning och differentialcentrifugering. Detta protokoll publicerades först i tidskriften Tissue Engineering 2001 1, där de resulterande cellerna kallades Bearbetade Lipoaspirate celler eller PLA-celler på grund av deras isolering från lipoaspirates. Däremot har termen PLA cellen nu ersatts med begreppet Fett-derived stamceller eller ASCs att…

Representative Results

Protokollet kontur ovan beskriver en manuell, enzymatisk metod för isoleringen av en SVF från en stor volym lipoaspirate provet. Inom denna SVF finns många cellpopulationer, inklusive ASC. Ett flertal studier föreslår att odla denna SVF under standardvävnadsodlingsbetingelser kommer att välja för en vidhäftande fibroblast kan antas komma att i huvudsak bestå av typen ASC. I överensstämmelse med detta har vi visat, med användning av flödescytometri och immunofluorescens, att odlade SVF pellets bli väsentli…

Discussion

Fettvävnad för isolering av ASCs kan komma i många former: från fasta bitar av vävnad som framställts genom resektion eller lipoplasty till mindre bitar som erhållits genom antingen spruta extraktion eller sug-assisterad lipoplasty (dvs. fettsugning). Huruvida fler SVF celler (och därmed ASCs) kan erhållas från opererande eller aspirefettprover är oklart motstridiga studier har presente 16, 17. Det är möjligt att någon form av fettvävnad är mer än lämplig för isolering av SVF celle…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill erkänna och tacka de ytterligare forskningspersonal som bidragit till utvecklingen av den beskrivna protokollet och dess isolering av DSK: er, bland annat: Dr H. Peter Lorenz, MD, Dr Hiroshi Muzuno, MD, Dr Jerry Huang, MD , Dr Adam Katz, MD, Dr William Futrell, MD, Dr Rong Zhang, DDS, PhD, Dr Larissa Rodriguez, MD, Dr Zeni Alfonso, PhD, och Dr John Fraser, PhD. De resultat som presenteras finansierades delvis med forskningsanslag från National Institutes of Health, inklusive NIAMS och NIDCR institut.

Materials

      Reagent
DMEM (Dulbecco's Modification of Eagle's Medium) Mediatech Cellgro 10-013-CV with 4.5 g/ml glucose, L-glutamine, sodium pyruvate
Penicillin/Streptomycin Mediatech Cellgro 30-002-CI 10,000 IU/ml penicillin/10,000 μg/ml streptomycin
Amphotericin B Mediatech Cellgro 30-003-CF 250 μg/ml amphotericin B
10X PBS (Phospho-buffered Saline) Mediatech Cellgro 25-053-CI without calcium, without magnesium
Trypsin/EDTA Mediatech Cellgro 20-031-CV 0.25 % trypsin/2.21mM EDTA
Collagenase type IA (from Clostridium histolyticum) Sigma C2674 crude preparation; <125 collagen digestion units/mg solid
FBS (Fetal Bovine Serum) heat inactivated Gemini Bioproducts 100106 USDA source, heat inactivated
10 ml serological pipettes Genesee Scientific 12-104  
25 ml serological pipettes Genesee Scientific 12-106  
50 ml polypropylene centrifuge tubes Genesee Scientific 21-106  
100 mm tissue culture dishes Genesee Scientific 25-202  
150 mm tissue culture dishes Genesee Scientific 25-203  
500 ml Stericup Filter Units Millipore SCGPU05RE PES membrane, 0.22 μm pore
Cell strainers FisherBrand 22-363-549 100 μm nylon mesh
dexamethasone – water soluble Sigma D-2915  
L-ascorbic-acid 2 phosphate Sigma A-8960  
β-glycerophosphate disodium salt Sigma G-9422 also known as glycerophosphate
insulin Sigma I-6634 made from bovine pancreas
indomethacin Sigma I-7378  
apo-transferrin Sigma T-4382  
TGFβ1 R&D Systems 240-B-002 recombinant human
Oil Red O Sigma O-0625  
Alcian Blue Sigma A-5268  
Silver nitrate Sigma S-0319  
Hydrochloric acid Fisher Scientific A144  
Paraformaldehyde Fisher Scientific 30525-89-4 supplied as a 16 % stock
      [header]
      Equipment Needed
Class II A/B Biosafety hood Thermo Scientific   ensure hood has vacuum lines for aspiration
Benchtop centrifuge Hermle Labnet Z383 Swing-out rotor for 50 ml tubes required, capable of 1200 x g
Water bath Fisher Scientific Isotemp S52602Q 5-10L capacity, capable of 37 C
Automated Pipette Aids Drummond Pipette Aid XL 4-000-105  
CO2 Incubator Thermo Scientific Forma 310 direct heat or water jacketed

 

References

  1. Zuk, P. A., et al. Multi-lineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Engineering. 7 (2), 211-226 (2001).
  2. Rodbell, M. Metabolism of isolated fat cells. J. Biol. Chem. 239, 375-380 (1964).
  3. Poznanski, W. J., Waheed, I., Human Van, R. fat cell precursors. Morphologic and metabolic differentiation in culture. Lab Invest. 29 (5), 570-576 (1973).
  4. Zuk, P. A. Adipose-derived Stem Cells in Tissue Regeneration: A Review. ISRN Stem Cells. , (2012).
  5. Zuk, P. A., et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Mol. Biol. Cell. 13, 4279-4295 (2002).
  6. Mitchell, J. B., et al. Immunophenotype of human adipose-derived cells: temporal changes in stromal-associated and stem cell-associated markers. Stem Cells. 24 (2), 376-385 (2006).
  7. Oedayrajsingh-Varma, M. J., et al. Phenotypical and functional characterization of freshly isolated adipose tissue-derived stem cells. Stem Cells Dev. 16 (1), 91-104 (2007).
  8. Yoshimura, K., et al. Characterization of freshly isolated and cultured cells derived from the fatty and fluid portions of liposuction aspirates. J Cell Physiol. 208 (1), 64-76 (2006).
  9. Zannettino, A. C., et al. Multipotential human adipose-derived stromal stem cells exhibit a perivascular phenotype in vitro and in vivo. J Cell Physiol. 214 (2), 413-421 (2008).
  10. Chung, M. T., et al. CD90 (Thy-1) Positive Selection Enhances Osteogenic Capacity of Human Adipose-Derived Stromal Cells. Tissue Eng Part A. , (2012).
  11. Li, H., et al. Adipogenic potential of adipose stem cell subpopulations. Plast Reconstr Surg. 128 (3), 663-672 (2011).
  12. Rada, T., Reis, R. L., Gomes, M. E. Distinct stem cells subpopulations isolated from human adipose tissue exhibit different chondrogenic and osteogenic differentiation potential. Stem Cell Rev. 7 (1), 64-76 (2011).
  13. Heydarkhan-Hagvall, S., et al. Human Adipose Stem Cells: A Potential Cell Source for Cardiovascular Tissue Engineering. Cells Tissues Organs. 187 (4), 263-274 (2008).
  14. Jack, G. S., et al. Processed lipoaspirate cells for tissue engineering of the lower urinary tract: implications for the treatment of stress urinary incontinence and bladder reconstruction. J Urol. 174 (5), 2041-2045 (2005).
  15. Banas, A., et al. Rapid hepatic fate specification of adipose-derived stem cells and their therapeutic potential for liver failure. J Gastroenterol Hepatol. 24 (1), 70-77 (2009).
  16. Schreml, S., et al. Harvesting human adipose tissue-derived adult stem cells: resection versus liposuction. Cytotherapy. 11 (7), 947-957 (2009).
  17. Oedayrajsingh-Varma, M. J., et al. Adipose tissue-derived mesenchymal stem cell yield and growth characteristics are affected by the tissue-harvesting procedure. Cytotherapy. 8 (2), 166-177 (2006).
  18. Ahmad, J., Eaves, F. F., Rohrich, R. J., Kenkel, J. M. The American Society for Aesthetic Plastic Surgery (ASAPS) survey: current trends in liposuction. Aesthet Surg J. 31 (2), 214-224 (2011).
  19. Tierney, E. P., Kouba, D. J., Hanke, C. W. Safety of tumescent and laser-assisted liposuction: review of the literature. J Drugs Dermatol. 10 (12), 1363-1369 (2012).
  20. Mojallal, A., Auxenfans, C., Lequeux, C., Braye, F., Damour, O. Influence of negative pressure when harvesting adipose tissue on cell yield of the stromal-vascular fraction. Biomed Mater Eng. 18 (4-5), 193-197 (2008).
  21. Matsumoto, D., et al. Influences of preservation at various temperatures on liposuction aspirates. Plast Reconstr Surg. 120 (6), 1510-1517 (2007).
  22. Francis, M. P., Sachs, P. C., Elmore, L. W., Holt, S. E. Isolating adipose-derived mesenchymal stem cells from lipoaspirate blood and saline fraction. Organogenesis. 6 (1), 11-14 (2010).
  23. Boquest, A. C., Shahdadfar, A., Brinchmann, J. E., Collas, P. Isolation of stromal stem cells from human adipose tissue. Methods Mol Biol. 325, 35-46 (2006).
  24. Bunnell, B. A., Flaat, M., Gagliardi, C., Patel, B., Ripoll, C. Adipose-derived stem cells: isolation, expansion and differentiation. Methods. 45 (2), 115-120 (2008).
  25. Dubois, S. G., et al. Isolation of human adipose-derived stem cells from biopsies and liposuction specimens. Methods Mol Biol. 449, 69-79 (2008).
  26. Mosna, F., Sensebe, L., Krampera, M. Human bone marrow and adipose tissue mesenchymal stem cells: a user’s guide. Stem Cells Dev. 19 (10), 1449-1470 (2010).
  27. Zachar, V., Rasmussen, J. G., Fink, T. Isolation and growth of adipose tissue-derived stem cells. Methods Mol Biol. 698, 37-49 (2011).
  28. Williams, S. K., McKenney, S., Jarrell, B. E. Collagenase lot selection and purification for adipose tissue digestion. Cell Transplant. 4 (3), 281-289 (1995).
  29. Wang, H., Van Blitterswijk, C. A., Bertrand-De Haas, M., Schuurman, A. H., Lamme, E. N. Improved enzymatic isolation of fibroblasts for the creation of autologous skin substitutes. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 40 (8-9), 268-277 (2004).
  30. Pilgaard, L., Lund, P., Rasmussen, J. G., Fink, T., Zachar, V. Comparative analysis of highly defined proteases for the isolation of adipose tissue-derived stem cells. Regen Med. 3 (5), 705-715 (2008).
  31. Kurita, M., et al. Influences of centrifugation on cells and tissues in liposuction aspirates: optimized centrifugation for lipotransfer and cell isolation. Plast Reconstr Surg. 121 (3), 1033-1041 (2008).
  32. Poloni, A., et al. Human dedifferentiated adipocytes show similar properties to bone marrow-derived mesenchymal stem cells. Stem Cells. 30 (5), 965-974 (2012).
  33. D’Andrea, F., et al. Large-scale production of human adipose tissue from stem cells: a new tool for regenerative medicine and tissue banking. Tissue Eng Part C Methods. 14 (3), 233-242 (2008).
  34. Tallone, T., et al. Adult human adipose tissue contains several types of multipotent cells. J Cardiovasc Transl Res. 4 (2), 200-210 (2011).
  35. De Francesco, F., et al. Human CD34/CD90 ASCs are capable of growing as sphere clusters, producing high levels of VEGF and forming capillaries. PLoS One. 4 (8), e6537 (2009).
  36. Haasters, F., et al. Morphological and immunocytochemical characteristics indicate the yield of early progenitors and represent a quality control for human mesenchymal stem cell culturing. J Anat. 214 (5), 759-767 (2009).
check_url/50585?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhu, M., Heydarkhan-Hagvall, S., Hedrick, M., Benhaim, P., Zuk, P. Manual Isolation of Adipose-derived Stem Cells from Human Lipoaspirates. J. Vis. Exp. (79), e50585, doi:10.3791/50585 (2013).

View Video