Summary

Høy oppløsning Whole Mount<em> In Situ</em> Hybridisering innenfor sebrafisk embryoer å studere Gene Expression og funksjon

Published: October 19, 2013
doi:

Summary

Sebrafisk, en liten tropisk fisk, har blitt en populær modell for å studere gen-funksjon i løpet av virveldyr utvikling og sykdom. Den tidsmessige og romlige ekspresjon av målgener kan bestemmes ved<em> In situ</em> Hybridisering. Vår forbedrede Protokollen tillater påvisning av lave rikelig transkripter med lav ikke-spesifikk bakgrunn signal.

Abstract

Denne artikkelen fokuserer på hel-mount in situ hybridisering (WISH) av sebrafisk embryoer. Den WISH-teknologi forenkler vurderingen av genuttrykk både i form av vev distribusjon og utviklingsstadiet. Protokoller er beskrevet for bruk av WISH av sebrafisk embryoer ved hjelp av antisense-RNA-prober merket med Digoxigenin. Prober blir generert ved å innlemme Digoxigenin-bundne nukleotider gjennom in vitro transkripsjon av genet maler som er klonet og lineært. De chorions av embryoer høstes ved definerte utviklingsstadier er fjernet før inkubasjon med spesifikke prober. Ved å følge en prosedyre vasking for å fjerne overskudd sonde, blir embryoene ble inkubert med anti-Digoxigenin-antistoff konjugert med alkalisk fosfatase. Ved å ansette en kromogent substrat for alkalisk fosfatase, kan spesifikk genekspresjon bli vurdert. Avhengig av nivået av genuttrykk hele prosedyren kan gjennomføres innen 2-3 dager.

Introduction

Sebrafisk (Danio rerio) har dukket opp som en kraftig dyremodell for studier av virveldyr utvikling, sykdom, atferd, og i narkotika screening 1-3. Sebrafisk embryoer kan fås i store tall fra en enkelt kryss. Befruktning og utvikling skjer ex utero og optisk klare embryoer utvikler seg raskt. Kritiske utviklingsmessige hendelser inntreffer i løpet av første 48 timer etter befruktning (HPF). Dette inkluderer utseendet på orgel primordia og initiering av cytodifferentiation. Knockdown eller over-ekspresjon av proteiner kan oppnås ved mikroinjeksjon av embryoene med antisense-morfolino (MO) oligonukleotider eller mRNA på henholdsvis ett eller to cellestadiet (0.75 HPF).

Den WISH av sebrafisk embryo letter studiet av spatio-tidsbaserte uttrykk av spesifikke gener av interesse. Bruk av WISH teknikken etter mikroinjeksjon av befruktede egg med mRNA eller MO å over-uttress eller knockdown spesifikke protein nivåer avslører differensial regulering av andre gener.

Endringer i genuttrykk mønstre kan være korrelert med fenotypiske endringer og avdekke funksjon av målet gener under tidlig organogenesis. Siden prober kan være forberedt og lagret på forhånd, kan det ISH teknikk brukes for å avdekke genuttrykksmønster i minst 20 gener på en gang ved hjelp av seks-brønners plater og skreddersydde kurver.

Protocol

En. Hel-mount In Situ Hybridisering av sebrafisk embryoer 1.1 Utarbeidelse av embryo Samle embryoer på de nødvendige utviklingsstadier. Vennligst se Kimmel et al. 5 for fosterstadiet beskrivelse. Fjern chorions manuelt ved hjelp av tang (Dumont Urmakere Forceps no. 5). Fix embryoer i en 4% løsning av paraformaldehyd (PFA) gjort opp i PBS (fosfatbufret saltvann) over natten ved 4 ° C. Vask embryo…

Representative Results

Hjelp av protokollen med 50 embryoer per kurv (per genet / per eksperimentell tilstand) uttrykket mønster av det genet kan oppnås i ett eksperiment. Nesten alle embryoene viser lignende uttrykk mønstre for et bestemt gen. Representative eksempler på den in situ hybridisering farging er vist på figurene 3-6. Både fornuft og anti-sense riboprobes ble syntetisert fra cDNAs tilsvarende PC5.1, PC5.2 6, SCL/tal-1 7, gata-en 8,9, FLK …

Discussion

Vi har utviklet forbedrede fremgangsmåter for å visualisere RNA med høy oppløsning. Den in situ hybridisering prosedyrer blir utført ved hjelp av enkle skreddersydde kurver med porøse bottoms (figur 1). Embryoer behandlet ved hjelp av RNase-frie løsninger i 6-brønners plater ved romtemperatur under sterile betingelser.

Å skille embryoer kurver er laget av forskjellige fargede Eppendorf-rør. Kurver med eller uten felg brukes for enkel orientering, og for å…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Taq Polymerase Invitrogen 10342053
TopoTA Cloning Kit- Dual Promoter pCRII-TOPO Invitrogen K4650-01
HQ Mini Plasmid Purification Kit Invitrogen K2100-01
Agarose Roche 11 685 660 001
Not1 and HindIII Restriction Enzymes Invitrogen 15441-025, 15207-012
Buffer Saturated Phenol, ultrapure Invitrogen 15513039 Store at 4 °C. Eyes, skin, and respiratory tract irritant and suspected carcinogen. Care should be taken while handling.
Chloroform Fisher C607-1 Toxic and suspected carcinogen. Work under fume hood.
RNase-free DNAse I Roche 4716728001 Prepare small aliquots and store at -20°C.
DIG-RNA Labeling Mix with Sp6, T7 and T3 RNA Polymerase Roche 11277073910
RNase Inhibitor Roche 10777-019
3.0 M Sodium Acetate (pH 5.5) Fisher 50-751-7355
100% Ethanol Commercial alcohols
Diethyl Pyrocarbonate (DEPC) Sigma 40718-25ML DEPC is an eye, skin, and respiratory irritant. Avoid contact with skin and eyes. Use safety glasses, gloves, and mask.
NaOH Fisher SS255-1
EDTA 0.5 M (pH 8.0) Fisher 50-751-7404
Instant Ocean Salt Aquarium Systems N/A
Phosphate Buffered Saline (PBS) Fisher FL-03-0900
Paraformaldehyde (PFA) Sigma P6148-1KG Prepare and store at -20°C as 40 ml aliquots for later use. PFA is toxic. Use safety glasses, gloves, and dust mask.
Phenylthiocarbomide (PTC) Sigma P7629-25G PTC is highly toxic. Use safety glasses, gloves, and dust mask.
Methanol Fisher A947-4
Dumont (Watchmaker’s) Forceps pattern no. 5 Fine Science Tools
Six-well Cell Culture Cluster Sarstedt 83.1839
Baskets are made of nylon mesh and Eppendorf tubes In-house preparation To make the baskets, cut Eppendorf tubes (1.5 ml) with or without rims to remove the conical end. Cut nylon mesh into small pieces corresponding to the size of the cut ends of the Eppendorf tubes. Place tubes with the nylon mesh covering the cut end on an electrical hot plate until both the tube and nylon mesh stick together (carry out in fume hood). Cut off the excess mesh from the baskets and store them in 100% methanol until used.
Polyoxyethylenesorbitan Monolaurate (Tween 20) Sigma P1379-500ML
Proteinase K Fermentas EO0491
Acetic Anhydride Sigma 242845
Triethanolamine Sigma 90279-100ML
Formamide, high purity grade Sigma F9037
AG501-X8 Resin Bio Rad 142-6424
Citric Acid monohydrate Sigma C0706-500G
Heparin Sodium Salt Sigma H3393-25KU
Saline-sodium Citrate Buffer (SSC) Sigma S6639
tRNA from bakers yeast type X Sigma R5636-1ML
NaCl Fisher S640-500
Tris-HCl Fisher BP153-1
MgCl2 Fisher S25403
Levamisole Hydrochloride Sigma 31742
N,N-Dimethylformamide
anhydrous (DMF)
Sigma 227056 Irritant, toxic, combustible, and suspected teratogen. Handle with proper safety attire including gloves and goggles.
5-Bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate (BCIP) Sigma N6639 Protect this solution from light.
Nitroblue tetrazolium (NBT) Sigma 840W Protect this solution from light.
Albumin from Bovine Serum, purified fraction V (BSA) Sigma A8806
Sheep Anti-digoxigenin-AP Fab Fragments Roche 1093274910
Glycerol Sigma G5516-500ML
96-well cell culture plates Sarstedt 83.1835
Tg(mnx1:GFP)ml2/Tg(hb9:GFP)ml2 ZIRC Tg(mnx1:GFP)ml2
Instant Ocean Aquarium Systems N/A

References

  1. Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nat. Rev. Genet. 8, 353-367 (2007).
  2. Wolman, M., Granato, M. Behavioral genetics in larval zebrafish: learning from the young. Dev. Neurobiol. 72, 366-372 (2010).
  3. Lawson, N. D., Wolfe, S. A. Forward and reverse genetic approaches for the analysis of vertebrate development in the zebrafish. Dev. Cell. 21, 48-64 (2011).
  4. Arkhipova, V., et al. Characterization and regulation of the hb9/mnx1 beta-cell progenitor specific enhancer in zebrafish. Dev. Biol. 365, 290-302 (2012).
  5. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev. Dyn. 203, 253-310 (1995).
  6. Chitramuthu, B. P., et al. Molecular cloning and embryonic expression of zebrafish PCSK5 co-orthologues: functional assessment during lateral line development. Dev. Dyn. 239, 2933-2946 (2010).
  7. Liao, E. C., et al. SCL/Tal-1 transcription factor acts downstream of cloche to specify hematopoietic and vascular progenitors in zebrafish. Genes Dev. 12, 621-626 (1998).
  8. Stainier, D. Y., Weinstein, B. M., Detrich, H. W., Zon, L. I., Fishman, M. C. Cloche, an early acting zebrafish gene, is required by both the endothelial and hematopoietic lineages. Development. 121, 3141-3150 (1995).
  9. Detrich, H. W., et al. Intraembryonic hematopoietic cell migration during vertebrate development. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92, 10713-10717 (1995).
  10. Liao, W., et al. The zebrafish gene cloche acts upstream of a flk-1 homologue to regulate endothelial cell differentiation. Development. , 124-381 (1997).
  11. Krauss, S., Concordet, J. P., Ingham, P. W. A functionally conserved homolog of the Drosophila segment polarity gene hh is expressed in tissues with polarizing activity in zebrafish embryos. Cell. 75, 1431-1444 (1993).
  12. Akimenko, M. A., Ekker, M., Wegner, J., Lin, W., Westerfield, M. Combinatorial expression of three zebrafish genes related to distal-less: part of a homeobox gene code for the head. J. Neurosci. 14, 3475-3486 (1994).
  13. Alexander, J., Rothenberg, M., Henry, G. L., Stainier, D. Y. casanova plays an early and essential role in endoderm formation in zebrafish. Dev. Biol. 215, 343-357 (1999).
  14. Milewski, W. M., Duguay, S. J., Chan, S. J., Steiner, D. F. Conservation of PDX-1 structure, function, and expression in zebrafish. Endocrinology. 139, 1440-1449 (1998).
  15. Argenton, F., Walker, M. D., Colombo, L., Bortolussi, M. Functional characterization of the trout insulin promoter: implications for fish as a favorable model of pancreas development. FEBS Lett. 407, 191-196 (1997).
  16. Biemar, F., et al. Pancreas development in zebrafish: early dispersed appearance of endocrine hormone expressing cells and their convergence to form the definitive islet. Dev. Biol. 230, 189-203 (2001).
  17. Thisse, C., Thisse, B., Schilling, T. F., Postlethwait, J. H. Structure of the zebrafish snail1 gene and its expression in wild-type, spadetail and no tail mutant embryos. Development. 119, 1203-1215 (1993).
  18. Cadieux, B., Chitramuthu, B. P., Baranowski, D., Bennett, H. P. The zebrafish progranulin gene family and antisense transcripts. BMC Genomics. 6, 156 (2005).
  19. Chitramuthu, B. P., Bennett, H. P. Use of zebrafish and knockdown technology to define proprotein convertase activity. Methods Mol. Biol. 768, 273-296 (2011).
  20. Thisse, C., Thisse, B. High resolution in situ hybridization on whole-mount zebrafish embryo. Nat. Protoc. 3, 59-69 (2008).
check_url/kr/50644?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chitramuthu, B. P., Bennett, H. P. J. High Resolution Whole Mount In Situ Hybridization within Zebrafish Embryos to Study Gene Expression and Function. J. Vis. Exp. (80), e50644, doi:10.3791/50644 (2013).

View Video