Summary

Hög upplösning Hela Mount<em> In Situ</em> Hybridisering inom Zebrafish embryon för att studera genuttryck och funktion

Published: October 19, 2013
doi:

Summary

Den zebrafisk, en liten tropisk fisk, har blivit en populär modell för att studera geners funktion under ryggradsdjur utveckling och sjukdom. Den temporala och spatiala uttrycket av målgener kan bestämmas genom<em> In situ</em> Hybridisering. Vår förbättrade protokoll tillåter detektion av låga rikliga transkript med låg icke-specifik bakgrundssignal.

Abstract

Denna artikel fokuserar på hel-mount in situ hybridisering (WISH) av zebrafisk embryon. Önskan teknik underlättar bedömningen av genuttryck både vad gäller fördelning till vävnader och utvecklingsstadiet. Protokoll beskrivs för användning av önskan zebrafisk embryon med antisense RNA-prober märkta med digoxigenin. Prober genereras genom införlivande av digoxigenin-kopplade nukleotider genom transkription in vitro av genprodukter mallar som har klonats och linjäriserad. De chorions av embryon skördas vid definierade utvecklingsstadier avlägsnas före inkubering med specifika prober. Genom att följa ett tvättningsförfarande för att avlägsna överskott sond, är embryon inkuberas med anti-digoxigenin-antikropp konjugerad med alkaliskt fosfatas. Genom att använda ett kromogent substrat för alkaliskt fosfatas, kan specifikt genuttryck bedömas. Beroende på graden av genuttryck hela förfarandet kan slutföras inom 2-3 dagar.

Introduction

Den zebrafisk (Danio rerio) har framträtt som ett kraftfullt djurmodell för studier av ryggradsdjur utveckling, sjukdom, beteende, och i-drug screening 1-3. Zebrafish embryon kan erhållas i stort antal från en enda passage. Befruktning och utveckling sker ex utero och optiskt klara embryona utvecklas snabbt. Kritiska utvecklingsmässiga händelser inträffar under de första 48 timmar efter befruktning (HPF). Detta inkluderar utseende orgel primordia och inledandet av cytodifferentiation. Knockdown eller över-uttryck av proteiner kan åstadkommas genom mikroinjektion av embryon med antisens morfolino (MO) oligonukleotider eller mRNA respektive vid en eller två cell stadium (0,75 hpf).

Önskan zebrafiskembryon underlättar studiet av tid och rum uttryck av specifika gener av intresse. Tillämpning av WISH tekniken efter mikroinjektion av embryon med mRNA eller MO till över-uttrESS eller knockdown specifika nivåer protein avslöjar differentiell reglering av andra gener.

Förändringar i genexpressionsmönster kan korreleras med fenotypiska förändringar och avslöja funktionen av målgener under tidig organogenesen. Eftersom prober kan framställas och lagras i förväg, kan den ISH teknik kunna användas för att avslöja genexpressionsmönster minst 20 gener i taget med sex-brunnar och skräddarsydda korgar.

Protocol

Ett. Hela montering in situ hybridisering av Zebrafish embryon 1.1 Beredning av embryon Samla embryon vid de erforderliga utvecklingsstadier. Vänligen se Kimmel et al. 5 för linda beskrivning. Ta chorions manuellt med pincett (Dumont urmakare pincett nej. 5). Fix embryon i en 4% lösning av paraformaldehyd (PFA) tillverkad i PBS (fosfatbuffrad saltlösning) över natten vid 4 ° C. Tvätta embryon…

Representative Results

Använda protokoll med 50 embryon per korg (per gen / per experimentell betingelse) uttrycket mönster av denna gen kan uppnås i ett experiment. Nästan alla embryon visar liknande uttrycksmönster för en särskild gen. Representativa exempel på in situ hybridisering färgning visas i Figurerna 3-6. Både sense och antisense riboprober syntetiserades från cDNA: n som motsvarar PC5.1, PC5.2 6, SCL/tal-1 7, gata-1 8,9, FLK / kdrl <…

Discussion

Vi har utvecklat bättre metoder för att visualisera RNA med hög upplösning. In situ hybridiserings-försök utförs med hjälp av enkla skräddarsydda korgar med porösa bottnar (figur 1). Embryon bearbetas med RNase-fria lösningar i 6-brunnars plattor vid rumstemperatur under sterila betingelser.

Segregera embryon korgar är tillverkade av olika färgade Eppendorf-rör. Korgar med eller utan en kant används för enkel orientering och att identifiera de embryo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Taq Polymerase Invitrogen 10342053
TopoTA Cloning Kit- Dual Promoter pCRII-TOPO Invitrogen K4650-01
HQ Mini Plasmid Purification Kit Invitrogen K2100-01
Agarose Roche 11 685 660 001
Not1 and HindIII Restriction Enzymes Invitrogen 15441-025, 15207-012
Buffer Saturated Phenol, ultrapure Invitrogen 15513039 Store at 4 °C. Eyes, skin, and respiratory tract irritant and suspected carcinogen. Care should be taken while handling.
Chloroform Fisher C607-1 Toxic and suspected carcinogen. Work under fume hood.
RNase-free DNAse I Roche 4716728001 Prepare small aliquots and store at -20°C.
DIG-RNA Labeling Mix with Sp6, T7 and T3 RNA Polymerase Roche 11277073910
RNase Inhibitor Roche 10777-019
3.0 M Sodium Acetate (pH 5.5) Fisher 50-751-7355
100% Ethanol Commercial alcohols
Diethyl Pyrocarbonate (DEPC) Sigma 40718-25ML DEPC is an eye, skin, and respiratory irritant. Avoid contact with skin and eyes. Use safety glasses, gloves, and mask.
NaOH Fisher SS255-1
EDTA 0.5 M (pH 8.0) Fisher 50-751-7404
Instant Ocean Salt Aquarium Systems N/A
Phosphate Buffered Saline (PBS) Fisher FL-03-0900
Paraformaldehyde (PFA) Sigma P6148-1KG Prepare and store at -20°C as 40 ml aliquots for later use. PFA is toxic. Use safety glasses, gloves, and dust mask.
Phenylthiocarbomide (PTC) Sigma P7629-25G PTC is highly toxic. Use safety glasses, gloves, and dust mask.
Methanol Fisher A947-4
Dumont (Watchmaker’s) Forceps pattern no. 5 Fine Science Tools
Six-well Cell Culture Cluster Sarstedt 83.1839
Baskets are made of nylon mesh and Eppendorf tubes In-house preparation To make the baskets, cut Eppendorf tubes (1.5 ml) with or without rims to remove the conical end. Cut nylon mesh into small pieces corresponding to the size of the cut ends of the Eppendorf tubes. Place tubes with the nylon mesh covering the cut end on an electrical hot plate until both the tube and nylon mesh stick together (carry out in fume hood). Cut off the excess mesh from the baskets and store them in 100% methanol until used.
Polyoxyethylenesorbitan Monolaurate (Tween 20) Sigma P1379-500ML
Proteinase K Fermentas EO0491
Acetic Anhydride Sigma 242845
Triethanolamine Sigma 90279-100ML
Formamide, high purity grade Sigma F9037
AG501-X8 Resin Bio Rad 142-6424
Citric Acid monohydrate Sigma C0706-500G
Heparin Sodium Salt Sigma H3393-25KU
Saline-sodium Citrate Buffer (SSC) Sigma S6639
tRNA from bakers yeast type X Sigma R5636-1ML
NaCl Fisher S640-500
Tris-HCl Fisher BP153-1
MgCl2 Fisher S25403
Levamisole Hydrochloride Sigma 31742
N,N-Dimethylformamide
anhydrous (DMF)
Sigma 227056 Irritant, toxic, combustible, and suspected teratogen. Handle with proper safety attire including gloves and goggles.
5-Bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate (BCIP) Sigma N6639 Protect this solution from light.
Nitroblue tetrazolium (NBT) Sigma 840W Protect this solution from light.
Albumin from Bovine Serum, purified fraction V (BSA) Sigma A8806
Sheep Anti-digoxigenin-AP Fab Fragments Roche 1093274910
Glycerol Sigma G5516-500ML
96-well cell culture plates Sarstedt 83.1835
Tg(mnx1:GFP)ml2/Tg(hb9:GFP)ml2 ZIRC Tg(mnx1:GFP)ml2
Instant Ocean Aquarium Systems N/A

References

  1. Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nat. Rev. Genet. 8, 353-367 (2007).
  2. Wolman, M., Granato, M. Behavioral genetics in larval zebrafish: learning from the young. Dev. Neurobiol. 72, 366-372 (2010).
  3. Lawson, N. D., Wolfe, S. A. Forward and reverse genetic approaches for the analysis of vertebrate development in the zebrafish. Dev. Cell. 21, 48-64 (2011).
  4. Arkhipova, V., et al. Characterization and regulation of the hb9/mnx1 beta-cell progenitor specific enhancer in zebrafish. Dev. Biol. 365, 290-302 (2012).
  5. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev. Dyn. 203, 253-310 (1995).
  6. Chitramuthu, B. P., et al. Molecular cloning and embryonic expression of zebrafish PCSK5 co-orthologues: functional assessment during lateral line development. Dev. Dyn. 239, 2933-2946 (2010).
  7. Liao, E. C., et al. SCL/Tal-1 transcription factor acts downstream of cloche to specify hematopoietic and vascular progenitors in zebrafish. Genes Dev. 12, 621-626 (1998).
  8. Stainier, D. Y., Weinstein, B. M., Detrich, H. W., Zon, L. I., Fishman, M. C. Cloche, an early acting zebrafish gene, is required by both the endothelial and hematopoietic lineages. Development. 121, 3141-3150 (1995).
  9. Detrich, H. W., et al. Intraembryonic hematopoietic cell migration during vertebrate development. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92, 10713-10717 (1995).
  10. Liao, W., et al. The zebrafish gene cloche acts upstream of a flk-1 homologue to regulate endothelial cell differentiation. Development. , 124-381 (1997).
  11. Krauss, S., Concordet, J. P., Ingham, P. W. A functionally conserved homolog of the Drosophila segment polarity gene hh is expressed in tissues with polarizing activity in zebrafish embryos. Cell. 75, 1431-1444 (1993).
  12. Akimenko, M. A., Ekker, M., Wegner, J., Lin, W., Westerfield, M. Combinatorial expression of three zebrafish genes related to distal-less: part of a homeobox gene code for the head. J. Neurosci. 14, 3475-3486 (1994).
  13. Alexander, J., Rothenberg, M., Henry, G. L., Stainier, D. Y. casanova plays an early and essential role in endoderm formation in zebrafish. Dev. Biol. 215, 343-357 (1999).
  14. Milewski, W. M., Duguay, S. J., Chan, S. J., Steiner, D. F. Conservation of PDX-1 structure, function, and expression in zebrafish. Endocrinology. 139, 1440-1449 (1998).
  15. Argenton, F., Walker, M. D., Colombo, L., Bortolussi, M. Functional characterization of the trout insulin promoter: implications for fish as a favorable model of pancreas development. FEBS Lett. 407, 191-196 (1997).
  16. Biemar, F., et al. Pancreas development in zebrafish: early dispersed appearance of endocrine hormone expressing cells and their convergence to form the definitive islet. Dev. Biol. 230, 189-203 (2001).
  17. Thisse, C., Thisse, B., Schilling, T. F., Postlethwait, J. H. Structure of the zebrafish snail1 gene and its expression in wild-type, spadetail and no tail mutant embryos. Development. 119, 1203-1215 (1993).
  18. Cadieux, B., Chitramuthu, B. P., Baranowski, D., Bennett, H. P. The zebrafish progranulin gene family and antisense transcripts. BMC Genomics. 6, 156 (2005).
  19. Chitramuthu, B. P., Bennett, H. P. Use of zebrafish and knockdown technology to define proprotein convertase activity. Methods Mol. Biol. 768, 273-296 (2011).
  20. Thisse, C., Thisse, B. High resolution in situ hybridization on whole-mount zebrafish embryo. Nat. Protoc. 3, 59-69 (2008).
check_url/kr/50644?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chitramuthu, B. P., Bennett, H. P. J. High Resolution Whole Mount In Situ Hybridization within Zebrafish Embryos to Study Gene Expression and Function. J. Vis. Exp. (80), e50644, doi:10.3791/50644 (2013).

View Video