En teknikk for å transplantere "Extreme Anterior Domain" ansikts vev mellom Xenopus laevis embryoer har blitt utviklet. Vev kan flyttes fra en genekspresjon bakgrunn inn i en annen, slik at undersøkelse av lokale krav til kraniofacial utvikling og for signalisering interaksjoner mellom ansikts regioner.
Kraniofaciale misdannelser oppstår hos 1 av hver 700 levendefødte, men etiologi er sjelden kjent på grunn av begrenset forståelse av kraniofaciale utvikling. For å identifisere hvor signalveier og vev opptre under fordelingen av utviklings ansiktet, har en "ansiktstransplantasjon" teknikken er utviklet i embryoer fra frosken Xenopus laevis. En region av presumptive ansiktsservietter (det "Extreme Anterior Domain" (EAD)) blir fjernet fra en donor embryo ved tailbud stadium, og transplanteres til en verts embryo av samme fase, hvorfra det tilsvarende region er blitt fjernet. Dette kan brukes til å generere et kimært ansikt der verten eller donorvev har en tap eller vinning av funksjon i et gen, og / eller omfatter en avstamning etikett. Etter at helbredelse er resultatet av utviklingen overvåkes, og indikerer rollene til signalveien inne i donor-eller liggende vertsvevet. Xenopus er et verdifullt modell for ansikts utvikling, idet ansikts-området er stort og lett enccessible for micromanipulation. Mange embryoer kan analyseres i løpet av en kort tidsperiode, siden utviklingen skjer raskt. Funn i frosken er relevant for menneskelig utvikling, siden kraniofaciale prosesser vises konservert mellom Xenopus og pattedyr.
For å forstå mekanismene bak kraniofaciale misdannelser 1-2, viktige vev og deres signal bidrag under kraniofaciale utvikling må identifiseres. I frosken Xenopus laevis, en del av ansiktet, inkludert munn og nesebor skjema fra "Extreme Anterior Domain" (EAD), hvor ektoderm og endoderm er direkte sammenstilt 3-4. Den EAD fungerer også som et signalsenter å påvirke omkringliggende vev, inkludert kranie neural crest, som danner kjevene og andre ansikts regioner fem. For å identifisere genene som bidrar til EAD funksjon, ble et "ansikt transplantasjon" teknikken utviklet, hvor vevet er transplantert fra en donor til en verts embryo, etter fjerning av de tilsvarende verts region. Etter transplantasjon, fører ansikts utvikling vurderes. Således er effekten av tap av funksjon (LOF) eller gevinst av funksjon (GOF) for et bestemt gen i EAD analysert lokalt, der resten av head og kropp er sammensatt av villtype vev. Den gjensidige transplantasjon kan utføres, hvor vill type vev er transplantert inn embryoer med global LOF eller GOF i bestemte gener. Transplantasjon har blitt hyppig brukt i Xenopus og dama studerer seks. For eksempel har Xenopus transplantasjon adressert homogenetic nevrale induksjon, linse og nevrale kompetanse, og neural crest migrasjon 7-10. Vaktel-chick kimert pode har analysert utviklingen av fremre nevrale plate, anterior neural rygg, neural crest, og kraniebein 11-14. Dette er den første transplantasjon teknikk for studier av kraniofaciale utvikling i Xenopus. Denne teknikken har vist en roman rolle for Wnt hemmere Frzb1 og Crescent i å regulere basalmembran formasjonen i presumptive munnen fem. Xenopus laevis er en ideell modell for studier av kraniofaciale utvikling som embryoer er store, utvikle eksternt, ennd ansiktet er lett synlig, slik at micromanipulation og avbildning av utvikling. Mekanismene bak ansikts utvikling vises bevart, noe som indikerer at funn som er gjort i frosken gi innsikt i menneskelig utvikling 4,15-16.
Kritiske trinn og begrensninger: Den EAD ansikt transplantasjon prosedyren er tid og arbeidsintensivt. Det krever øvelse, stødige hender, og fingerferdighet å perfeksjonere. Ansiktet transplantasjon protokollen er avhengig av forskerens evne til effektivt å fjerne og transplantasjon vev. Hvis man tar for lang tid å sette transplantasjon inn i vertens ansikt, vil verts ansiktet begynner å trekke seg sammen og helbrede. Tang kan brukes til å delikat utvide ansiktsregionen. Imidlertid, hvis større sår samme…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker Radek Sindelka for hans hjelp, og Cas Bresilla for å bistå med frosk driften og embryo forberedelse. Dette arbeidet ble finansiert av NIH via tilskuddet R01DE021109 til HLS Laura Jacox ble finansiert av Herschel Smith Graduate Fellowship ved Harvard University og en F30 individuell stipendet F30DE022989-01 gjennom NIDCR.
Pasteur pipette | VWR | 14672-400 | Lime Glass |
Size 5 3/4’’ | Cotton Plugged | ||
Disposable | |||
Graduated Transfer Pipette | VWR | 16001-180 | Disposable |
Polyethylene | |||
#5/45 forceps | Fine Science Tools by Dupont medical | 11251-35 | Angled 45 degrees |
Standard Pattern Forceps | Fine Science Tools | 11000-20 | Straight; serrated tip |
Stainless Steel; | |||
20cm long | |||
Capillary Tubing (for needles) | FHC | 30-30-1 | Borosil 1.0mm OD x 0.5mm ID/Fiber |
100mm each | |||
Cover slip | VWR | 48393 252 | 24x60mm |
micro cover glass | or | or | |
(for glass bridges) | 48393 230 | 24x40mm | |
No.1.5 | |||
Ficoll 400 | Sigma-Aldrich | F9378 | |
Needle Puller | Sutter Instrument Co | Needle Puller: discontinued Filament: FB300B | The most similar, currently available needle puller is the P-97. For filaments, use Sutter 3.00mm square box filaments, 3.0mm wide. |
Model P-80 | Flaming / Brown micropipette puller | ||
(discontinued) | |||
Stereomicroscope | Zeiss | ||
Zeiss Stemi 1000 | |||
Stereomicroscope Lighting by Fostec | Fostec | Use a light box with 2 fiberoptic arms. | |
Nickel Plated Pin Holder | Fine Science Tools | 26018-17 | Jaw Opening Diameter: 0 to 1mm |
Length: 17cm | |||
Moria Nickel Plated Pin Holder | Fine Science Tools | 26016-12 | Jaw opening Diameter: 0 to 1mm |
Length: 12cm | |||
Tungsten Needles | Fine Science Tools | 10130-05 | 0.125mm Rod diameter |
Van Aken Plastalina | Blick | #33268-2981 | |
Modeling Clay- white, red or yellow | |||
mMessage mMashine SP6 or T7 Kit | Ambion | AM1340 |