Summary

एक फूरियर पर मैट्रिक्स असिस्टेड लेजर Desorption / आयनीकरण इमेजिंग के लिए एक मैट्रिक्स के रूप में Dithranol आयन साइक्लोट्रॉन गूंज मास स्पेक्ट्रोमीटर रूपांतरण

Published: November 26, 2013
doi:

Summary

Dithranol (डीटी, 1,8-dihydroxy-9 ,10-dihydroanthracen-9-एक) पहले से छोटे अणुओं के ऊतक इमेजिंग के लिए एक MALDI मैट्रिक्स के रूप में बताया गया है, पर अंतर्जात लिपिड की MALDI इमेजिंग के लिए डीटी के इस्तेमाल के लिए प्रोटोकॉल एक ultrahigh संकल्प quadrupole-FTICR साधन पर सकारात्मक आयन MALDI एमएस द्वारा ऊतक वर्गों की सतह यहाँ प्रदान की जाती हैं.

Abstract

मास स्पेक्ट्रोमेट्री इमेजिंग (एमएसआई) मुख्य रूप से MALDI (मैट्रिक्स सहायता प्रदान की लेजर desorption / आयनीकरण) आधारित विश्लेषणात्मक तकनीकों का उपयोग करते हुए, एक ऊतक अनुभाग की सतह पर यौगिकों के स्थानिक स्थानीयकरण और वितरण पैटर्न को निर्धारित करता है. कम आणविक वजन (मेगावाट) यौगिकों का विश्लेषण सुधार कर सकते हैं जो छोटे अणु MSI के लिए नई matrices, जरूरत है. MALDI पृष्ठभूमि संकेतों की कटौती करते हुए इन matrices वृद्धि analyte संकेत प्रदान करना चाहिए. इसके अलावा, इस तरह के फूरियर के रूप में ultrahigh संकल्प उपकरणों का उपयोग आयन साइक्लोट्रॉन प्रतिध्वनि (FTICR) मास स्पेक्ट्रोमीटर, बदलना मैट्रिक्स संकेतों से analyte संकेतों को हल करने की क्षमता है, और यह आंशिक रूप से पृष्ठभूमि MALDI से होने के साथ जुड़े कई समस्याओं को दूर कर सकते हैं मैट्रिक्स. FTICR एमएस द्वारा metastable मैट्रिक्स समूहों की तीव्रता में कमी भी अन्य उपकरणों पर मैट्रिक्स चोटियों के साथ जुड़े हस्तक्षेप से कुछ दूर करने में मदद कर सकते हैं. उच्च संकल्पअभी भी रासायनिक पहचान में आत्मविश्वास प्रदान करते हुए वे एक साथ कई यौगिकों का वितरण पैटर्न का उत्पादन कर सकते हैं जैसे FTICR मास स्पेक्ट्रोमीटर के रूप में उपकरणों फायदेमंद हैं. Dithranol (डीटी, 1,8-dihydroxy-9 ,10-dihydroanthracen-9-एक) पहले से ऊतक इमेजिंग के लिए एक MALDI मैट्रिक्स के रूप में सूचित कर दिया गया है. इस काम में, सकारात्मक आयन MALDI एमएस द्वारा स्तनधारी ऊतक वर्गों की सतहों से अंतर्जात लिपिड की MALDI इमेजिंग, के लिए डीटी के उपयोग के लिए एक प्रोटोकॉल, एक ultrahigh संकल्प संकर quadrupole पर FTICR साधन उपलब्ध कराई गई है.

Introduction

मास स्पेक्ट्रोमेट्री इमेजिंग (एमएसआई) एक ऊतक अनुभाग 1,2 की सतह पर यौगिकों के स्थानिक स्थानीयकरण और वितरण पैटर्न को निर्धारित करने के लिए एक विश्लेषणात्मक तकनीक है. पेप्टाइड्स और प्रोटीन के विश्लेषण के लिए मैट्रिक्स सहायता प्रदान की लेजर desorption / आयनीकरण (MALDI) MSI एक दशक से अधिक के लिए इस्तेमाल किया गया है और नमूना तैयार करने, संवेदनशीलता का पता लगाने, स्थानिक संकल्प, reproducibility और डाटा प्रोसेसिंग 3,4 के लिए तरीकों में काफी सुधार किया गया है. Histologically दाग वर्गों और MSI प्रयोगों से जानकारी के संयोजन से, पैथोलॉजिस्ट pathophysiologically दिलचस्प सुविधाओं के साथ 5 विशेष यौगिकों का वितरण सहसंबंधी करने में सक्षम हैं.

एक्सोजेनस दवाओं 6,7 और उनके मेटाबोलाइट्स 8-10 सहित छोटे अणुओं का वितरण पैटर्न भी MALDI एमएस ऊतक इमेजिंग 11 से पूछताछ की गई है. लिपिड शायद सबसे व्यापक रूप से अध्ययन किया सीएलए हैंएमएस 12-17 और एमएस / एमएस 18 मोड में दोनों MALDI इमेजिंग के साथ यौगिकों, एस.एस.. छोटे अणु इमेजिंग के लिए MALDI एमएसआई का उपयोग कई कारकों द्वारा सीमित किया गया है: 1) MALDI matrices खुद को प्रचुर मात्रा में आयन संकेतों को उत्पन्न जो छोटे अणुओं (आमतौर मी / z <500), कर रहे हैं. ये प्रचुर संकेतों छोटे अणु analytes की आयनीकरण को दबाने और उनकी पहचान 19,20 के साथ हस्तक्षेप कर सकते हैं. विलायक मुक्त मैट्रिक्स कोटिंग 21, मैट्रिक्स बनाने की क्रिया 22, और MALDI एमएस 23 precoated मैट्रिक्स, दूसरों के बीच में, छोटे अणुओं की MSI सुधार करने के लिए विकसित किया गया है.

कम मेगावाट यौगिकों के विश्लेषण में सुधार कर सकते हैं कि नई matrices छोटे अणु MSI में बहुत रुचि के हैं. इन matrices कमी आई मैट्रिक्स संकेतों के साथ वृद्धि हुई analyte संकेत प्रदान करना चाहिए. सकारात्मक आयन मोड में, 2,5-dihydroxybenzoic एसिड (DHB) और α-cyano-4-hydroxycinnamic एसिड (CHCA) MSI 24 के लिए दो आमतौर पर इस्तेमाल किया MALDI एमएस matrices हैं </समर्थन>. analytes की स्थानिक स्थानीयकरण संरक्षित करने के लिए इतनी के रूप में आदर्श मैट्रिक्स, छोटे क्रिस्टल के रूप में होगा. DHB इसलिए उच्च बनाने की क्रिया का उपयोग मैट्रिक्स आंशिक रूप से इस समस्या को दूर करने के लिए विकसित किया गया है, और phospholipids 22,25 के संवेदनशील इमेजिंग के लिए इस मैट्रिक्स के उपयोग की अनुमति दी है लागू करने, बड़े क्रिस्टल प्रपत्र जाता है. 9 Aminoacridine सकारात्मक आयन मोड 26 में और नकारात्मक आयन मोड 26-29 में nucleotides और phospholipids के लिए प्रोटिक analytes की एमएसआई के लिए इस्तेमाल किया गया है. 2 Mercaptobenzothiazole लिपिड 30 के कुशल MALDI पता लगाने दे पाया गया है, और माउस मस्तिष्क के इमेजिंग 31 gangliosides के लिए इस्तेमाल किया गया है. फूरियर के ultrahigh संकल्प आयन साइक्लोट्रॉन प्रतिध्वनि (FTICR) को बदलने मास स्पेक्ट्रोमीटर कुछ हद तक मैट्रिक्स संकेतों 32 से analyte संकेतों को हल करके इस समस्या को कम कर सकते हैं. FTICR एमएस के उपयोग का एक और लाभ metastable मैट्रिक्स समूहों की तीव्रता reduc रहे हैंभी इन interferences 27 कम कर देता है जो एड 33,.

dithranol का उपयोग (डीटी, 1,8-dihydroxy-9 ,10-dihydroanthracen-9-एक) ऊतक इमेजिंग के लिए एक MALDI मैट्रिक्स पहले 34 सूचित किया गया है. इस काम में वर्तमान, एक विस्तृत प्रोटोकॉल सकारात्मक आयन मोड में, गोजातीय लेंस ऊतक वर्गों की सतहों पर अंतर्जात लिपिड MSI के लिए डीटी के उपयोग के लिए प्रदान की जाती है.

Protocol

1. ऊतक सेक्शनिंग , तरल नाइट्रोजन का उपयोग करते हुए, एक बार काटा मुद्दे नमूनों, फ्लैश फ्रीज (शिपिंग आवश्यक है, तो) सूखी बर्फ पर उन्हें जहाज, और ऊतक सेक्शनिंग जब तक -80 डिग्री सेल्सियस पर उन्हें दुकान. (वाणि?…

Representative Results

आईटीओ लेपित गिलास स्लाइड पर sectioned और पिघलना बढ़ रहे हैं कि ऊतक के नमूने दिखाई फाड़ के बिना, अक्षत होना चाहिए. कई ऊतकों के लिए, एक आईटीओ लेपित गिलास स्लाइड पर बढ़ते प्रत्यक्ष ऊतक पिघलना स्वीकार्य है. बढ़त…

Discussion

सफल MALDI MSI के लिए सबसे महत्वपूर्ण विचार कर रहे हैं: 1) ऊतक तैयारी, 2) मैट्रिक्स चुनाव, 3) मैट्रिक्स आवेदन, और 4) डेटा की व्याख्या और विश्लेषण. नमूना और मैट्रिक्स उचित तैयार कर रहे हैं, एमएस डाटा अधिग्रहण स्वचालित…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस लेखक मंच के वित्त पोषण, और समर्थन के लिए जीनोम कनाडा और जीनोम ब्रिटिश कोलंबिया स्वीकार करना चाहते हैं. हम भी पांडुलिपि और संपादन सहायता गंभीर की समीक्षा के लिए डॉ. कैरोल ई. पार्कर धन्यवाद. सीएचएल भी समर्थन के लिए धन्यवाद ब्रिटिश कोलंबिया प्रोटिओमिक्स नेटवर्क.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Rat Liver Pel-Freez Biologicals 56023-2
Bovine Calf Lens Pel-Freez Biologicals 57114-2 Sample should be decapsulated29 before use
Dithranol (DT) Sigma-Aldrich 10608 MALDI Matrix
α-Cyano-4-hydroxy-cinnamic Acid (CHCA) Sigma-Aldrich 70990 MALDI Matrix
2,5-Dihydroxybenzoic Acid (DHB) Sigma-Aldrich 85707 MALDI Matrix
Reserpine Sigma-Aldrich 83580
Terfenadine Sigma-Aldrich T9652
Formic Acid Sigma-Aldrich 14265
Ammonium Formate Sigma-Aldrich 14266
Ammonium Hydroxide Sigma-Aldrich 320145
Trifluoroacetic Acid (TFA) Sigma-Aldrich 302031
Water Sigma-Aldrich 39253
Methanol Sigma-Aldrich 34860
Acetonitrile Sigma-Aldrich 34967
Ethyl Acetate Sigma-Aldrich 34972
Isopropanol Sigma-Aldrich 34965
Chloroform Sigma-Aldrich 366927
Acetone Sigma-Aldrich 34850
Ethanol Commercial Alcohols 95%
ES Tuning Mix Agilent Technologies G2431A
ITO Coated Glass Slides Hudson Surface Technology PSI1207000 Ensure that samples are placed on the electrically conductive side
Wite-Out Shake-N-Squeeze Correction Pen Bic WOSQP11
Airbrush Sprayer Iwata Eclipse HP-CS
ImagePrep Bruker 249500-LS
MALDI adapter Bruker 235380

References

  1. Chaurand, P., Stoeckli, M., Caprioli, R. M. Direct Profiling of Proteins in Biological Tissue Sections by MALDI Mass Spectrometry. Anal. Chem. 71, 5263-5270 (1999).
  2. Caprioli, R. M., Farmer, T. B., Gile, J. Molecular Imaging of Biological Samples. Localization of Peptides and Proteins Using MALDI-TOF MS. Anal. Chem. 69, 4751-4760 (1997).
  3. Amstalden van Hove, E. R., Smith, D. F., Heeren, R. M. A. A concise review of mass spectrometry imaging. J. Chromatogr. A. 1217, 3946-3954 (2010).
  4. Norris, J. L., Caprioli, R. M. Analysis of Tissue Specimens by Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Imaging Mass Spectrometry in Biological and Clinical Research. Chem. Rev. Feb 11, (2013).
  5. Walch, A., Rauser, S., Deininger, S. -. O., Höfler, H. MALDI imaging mass spectrometry for direct tissue analysis: a new frontier for molecular histology. Histochem. Cell Biol. 130, 421-434 (2008).
  6. Hsieh, Y., et al. Matrix-assisted laser desorption/ionization imaging mass spectrometry for direct measurement of clozapine in rat brain tissue. Rapid Commun. Mass Spectrom. 20, 965-972 (2006).
  7. Trim, P. J., et al. Matrix-assisted laser desorption/ionization-ion mobility separation-mass spectrometry imaging of vinblastine in whole body tissue sections. Anal. Chem. 80, 8628-8634 (2008).
  8. Khatib-Shahidi, S., Andersson, M., Herman, J. L., Gillespie, T. A., Caprioli, R. M. Direct molecular analysis of whole-body animal tissue sections by imaging MALDI mass spectrometry. Anal. Chem. 78, 6448-6456 (2006).
  9. Atkinson, S. J., Loadman, P. M., Sutton, C., Patterson, L. H., Clench, M. R. Examination of the distribution of the bioreductive drug AQ4N and its active metabolite AQ4 in solid tumours by imaging matrix-assisted laser desorption/ionisation mass spectrometry. Rapid Commun. Mass Spectrom. 21, 1271-1276 (2007).
  10. Drexler, D. M., et al. Utility of imaging mass spectrometry (IMS) by matrix-assisted laser desorption ionization (MALDI) on an ion trap mass spectrometer in the analysis of drugs and metabolites in biological tissues. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 55, 279-288 (2007).
  11. Prideaux, B., Stoeckli, M. Mass spectrometry imaging for drug distribution studies. J. Proteomics. 75, 4999-5013 (2012).
  12. Sugiura, Y., Setou, M. Imaging Mass Spectrometry for Visualization of Drug and Endogenous Metabolite Distribution: Toward In Situ Pharmacometabolomes. J. Neuroimmune Pharmacol. 5, 31-43 (2009).
  13. Garrett, T. J., Yost, R. A. Analysis of intact tissue by intermediate-pressure MALDI on a linear ion trap mass spectrometer. Anal. Chem. 78, 2465-2469 (2006).
  14. Woods, A. S., Jackson, S. N. Brain tissue lipidomics: direct probing using matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry. AAPS J. 8, 391-395 (2006).
  15. Cha, S., Yeung, E. S. Colloidal graphite-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry and MSn of small molecules. 1. Imaging of cerebrosides directly from rat brain tissue. Anal. Chem. 79, 2373-2385 (2007).
  16. Burnum, K. E., et al. Spatial and temporal alterations of phospholipids determined by mass spectrometry during mouse embryo implantation. J. Lipid Res. 50, 2290-2298 (2009).
  17. Veloso, A., et al. Anatomical distribution of lipids in human brain cortex by imaging mass spectrometry. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 22, 329-338 (2011).
  18. Tanaka, H., et al. Distribution of phospholipid molecular species in autogenous access grafts for hemodialysis analyzed using imaging mass spectrometry. Anal. Bioanalyt. Chem. 400, 1873-1880 (2011).
  19. Lou, X., van Dongen, J. L., Vekemans, J. A., Meijer, E. W. Matrix suppression and analyte suppression effects of quaternary ammonium salts in matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry: an investigation of suppression mechanism. Rapid Comm. Mass Spectrom. 23, 3077-3082 (2009).
  20. Knochenmuss, R., Karbach, V., Wiesli, U., Breuker, K., Zenobi, R. The matrix suppression effect in matrix-assisted laser desorption/ionization: application to negative ions and further characteristics. Rapid Commun. Mass Spectrom. 12, 529-534 (1998).
  21. Puolitaival, S. M., Burnum, K. E., Cornett, D. S., Caprioli, R. M. Solvent-free matrix dry-coating for MALDI imaging of phospholipids. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 19, 882-886 (2008).
  22. Hankin, J. A., Barkley, R. M., Murphy, R. C. Sublimation as a Method of Matrix Application for Mass Spectrometric Imaging. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 19, 1646-1652 (2007).
  23. Grove, K. J., Frappier, S. L., Caprioli, R. M. Matrix pre-coated MALDI MS targets for small molecule imaging in tissues. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 22, 192-195 (2011).
  24. Fuchs, B., Süss, R., Schiller, J. An update of MALDI-TOF mass spectrometry in lipid research. Prog. Lipid Res. 49, 450-475 (2010).
  25. Murphy, R. C., Hankin, J. A., Barkley, R. M., Zemski Berry, K. A. MALDI imaging of lipids after matrix sublimation/deposition. Biochim. Biophys. Acta. 1811, 970-975 (2011).
  26. Vermillion-Salsbury, R. L., Hercules, D. M. 9-Aminoacridine as a matrix for negative mode matrix-assisted laser desorption/ionization. Rapid Commun. Mass Spectrom. 16, 1575-1581 (2002).
  27. Hu, C., et al. Analytical strategies in lipidomics and applications in disease biomarker discovery. J. Chromatogr. B Analyt. Technol. Biomed. Life Sci. 877, 2836-2846 (2009).
  28. Miura, D., et al. Ultrahighly sensitive in situ metabolomic imaging for visualizing spatiotemporal metabolic behaviors. Anal. Chem. 82, 9789-9796 (2010).
  29. Cerruti, C. D., Benabdellah, F., Laprevote, O., Touboul, D., Brunelle, A. MALDI Imaging and Structural Analysis of Rat Brain Lipid Negative Ions with 9-Aminoacridine Matrix. Anal. Chem. 84, 2164-2171 (2012).
  30. Astigarraga, E., et al. Profiling and Imaging of Lipids on Brain and Liver Tissue by Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Mass Spectrometry Using 2-Mercaptobenzothiazole as a Matrix. Anal. Chem. 80, 9105-9114 (2008).
  31. Whitehead, S. N., et al. Imaging mass spectrometry detection of gangliosides species in the mouse brain following transient focal cerebral ischemia and long-term recovery. PloS one. 6, e20808 (2011).
  32. Cornett, D. S., Frappier, S. L., Caprioli, R. M. MALDI-FTICR imaging mass spectrometry of drugs and metabolites in tissue. Anal. Chem. 80, 5648-5653 (2008).
  33. Deininger, S. O., et al. Normalization in MALDI-TOF imaging datasets of proteins: practical considerations. Anal. Bioanalyt. Chem. 401, 167-181 (2011).
  34. Le, C. H., Han, J., Borchers, C. H. Dithranol as a MALDI matrix for tissue imaging of lipids by Fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometry. Anal. Chem. 84, 8391-8398 (2012).
  35. Han, J., Schey, K. L. MALDI Tissue Imaging of Ocular Lens α-Crystallin. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 47, 2990-2996 (2006).
  36. Schwartz, S. A., Reyzer, M. L., Caprioli, R. M. Direct tissue analysis using matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry: practical aspects of sample preparation. J. Mass Spectrom. 38, 699-708 (2003).
  37. Chen, Y., et al. Imaging MALDI mass spectrometry of sphingolipids using an oscillating capillary nebulizer matrix application system. Meth. Mol. Biology. 656, 131-146 (2010).
  38. Han, J., et al. Towards high throughput metabolomics using ultrahigh field Fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometry. Metabolomics. 4, 128-140 (2008).
  39. Smith, C. A., et al. METLIN: a metabolite mass spectral database. Ther. Drug Monit. 27, 747-751 (2005).
  40. Wishart, D. S., et al. HMDB: a knowledgebase for the human metabolome. Nucleic Acids Res. 37, D603-D610 (2009).
  41. Hoteling, A. J., Erb, W. J., Tyson, R. J., Owens, K. G. Exploring the importance of the relative solubility of matrix and analyte in MALDI sample preparation using HPLC. Anal. Chem. 76, 5157-5164 (2004).
  42. Hoteling, A. J., Mourey, T. H., Owens, K. G. Importance of solubility in the sample preparation of poly(ethylene terephthalate. for MALDI TOFMS. Anal. Chem. 77, 750-756 (2005).
  43. Shroff, R., Rulísek, L., Doubsky, J., Svatos, A. Acid-base-driven matrix-assisted mass spectrometry for targeted metabolomics. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 106, 10092-10096 (2009).
  44. Eikel, D., et al. Liquid extraction surface analysis mass spectrometry (LESA-MS) as a novel profiling tool for drug distribution and metabolism analysis: the terfenadine example. Rapid Comm. Mass Spectrom. 25, 3587-3596 (2011).
  45. Sadeghi, M., Vertes, A. Crystallite size dependence of volatilization in matrix-assisted laser desorption ionization. Appl. Surf. Sci. 127 – 129, 226-234 (1998).
  46. O’Connor, P. B., Costello, C. E. Internal Calibration on Adjacent Samples (InCAS) with Fourier Transform Mass Spectrometry. Anal. Chem. 72, 5881-5885 (2000).
  47. Jing, L., Amster, I. J. An improved calibration method for the matrix-assisted laser desorption/ionization-Fourier transform ion cyclotron resononance analysis of 15N-metabolically- labeled proteome digests using a mass difference approach. Eur. J. Mass Spectrom. 18, 269-277 (2012).
  48. Zhang, L. -. K., Rempel, D., Pramanik, B. N., Gross, M. L. Accurate mass measurements by Fourier transform mass spectrometry. Mass Spectrom. Rev. 24, 286-309 (2005).
  49. Clemis, E. J., et al. Quantitation of spatially-localized proteins in tissue samples using MALDI-MRM imaging. Anal. Chem. 84, 3514-3522 (2012).
  50. Schwamborn, K., Caprioli, R. M. Molecular imaging by mass spectrometry–looking beyond classical histology. Nat. Rev. Cancer. 10, 639-646 (2010).
  51. Oppenheimer, S. R., Mi, D., Sanders, M. E., Caprioli, R. M. Molecular analysis of tumor margins by MALDI mass spectrometry in renal carcinoma. J. Proteome Res. 9, 2182-2190 (2010).
check_url/kr/50733?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Le, C. H., Han, J., Borchers, C. H. Dithranol as a Matrix for Matrix Assisted Laser Desorption/Ionization Imaging on a Fourier Transform Ion Cyclotron Resonance Mass Spectrometer. J. Vis. Exp. (81), e50733, doi:10.3791/50733 (2013).

View Video