Summary

Procedurer for identifikation Infectious Prioner efter passage gennem fordøjelsessystemet af en fugleart

Published: November 06, 2013
doi:

Summary

Skraldemanden har potentiale til at translokere smitsomme overførbar spongiform encephalopati prioner i deres afføring til sygdomsfrie områder. Vi detalje metoder, der anvendes til at afgøre, om muse-tilpassede scrapie prioner forblive infektiøse efter passage selvom fordøjelseskanalen af amerikanske krager (Corvus brachyrhynchos), en fælles forbruger af døde dyr.

Abstract

Smitsomme prion (PrP Res) materiale er sandsynligvis årsagen til dødelige, neurodegenerative overførbar spongiform encephalopati (TSE) sygdomme 1. Overførsel af TSE-sygdomme, såsom kronisk wasting disease (CWD), formodes at være fra dyr til dyr 2,3 samt fra miljømæssige kilder 4-6. Skraldemanden og kødædere har potentiale til at translokere PrP Res materiale gennem forbrug og udskillelse af CWD-forurenet ådsler. Nyligt arbejde har dokumenteret passage af PrP Res materiale gennem fordøjelsessystemet af amerikanske krager (Corvus brachyrhynchos), en fælles nordamerikansk ådselsæder 7.

Vi beskriver procedurer, der anvendes til at dokumentere passage af PrP Res materiale gennem amerikanske krager. Crows blev tvangsfodret med RML-stammen muse-tilpasset scrapie og deres afføring blev indsamlet 4 timer efter sondeernæring. Crow afføring blev derefter samlet og injiceret intraperitonealt iC57BL / 6 mus. Mus blev overvåget dagligt, indtil de udtrykte kliniske tegn på mus scrapie, og derefter blev aflivet. Asymptomatiske mus blev overvåget indtil 365 dage efter podning. Western blot-analyse blev udført for at bekræfte sygdomsstatus. Resultaterne viste, at prioner forblive infektiøse efter rejser gennem fordøjelsessystemet af krager og er til stede i fæces, der forårsager sygdom i test-mus.

Introduction

Overførbare spongiforme encephalopatier (TSE) er dødelige smitsomme neurodegenerative sygdomme, der påvirker dyrelivet, husdyr og mennesker. Den smitstof TSE-sygdomme synes at være fejlfoldede eller patogene isoformer (PrP Res) af prionproteiner 1. Animal TSE sygdomme omfatter chronic wasting disease (CWD) i mule deer (Odocoileus hemionus), hvid-tailed hjorte (Odocoileus virginianus), elg (Cervus elaphus) og elg (Alces alces), scrapie hos får og geder, BSE ( BSE) i indenlandske kvæg, overførbar minkencephalopati i mink, feline spongiform encephalopati hos katte, eksotiske hovdyr spongiform encephalopati i eksotisk zoo ruminates af familien Bovidae og spongiform encephalopati i ikke-humane primater 8. Den enkelt menneske TSE sygdom, variant Creutzfeldt-Jakobs sygdom, er sjælden og menes at være erhvervet ved at indtage PrP Res-contaminated mad 9. Ligeledes kan BSE smitte mennesker, hvis forurenet oksekød forbruges 10. Af alle de TSE-sygdomme, scrapie og CWD er de eneste to med selvopretholdende epidemier og kilder til infektion antages at være fra dyr til dyr 2,3,11 såvel som fra miljømæssige kilder 4-6. Forskning tyder på, at de fleste TSE-sygdomme kræver bemærkelsesværdige længere inkubationstid fra naturlige hændelser eksponering af PrP Res materiale manifestation af kliniske tegn 2-4,6,8 og tilsyneladende artsbarrierer minimere, men ikke udelukke muligheden for, interspecies transmission 12-14 .

Identifikation mekanismer for spredning af smitsomme prion (PrP Res) materiale er ekstremt vigtigt for at besvare spørgsmål om, hvordan TSE sygdomme bevæge sig hen over landskabet. Eksperimentelle undersøgelser har antydet, at insekter 15,16, fjerkræ og svin 17, og amerikanske krager (Corvus Brachyrhynchos) 7,18 er passive bærere eller dispergatorer af PrP Res materiale. Passage af PrP Res materiale gennem fordøjelsessystemet krager er for nylig blevet dokumenteret, viser den rolle, de kan spille i spredning af TSE-sygdomme 7. Disse resultater gør det plausibelt, at krager, en ådselsæder, kan støde på, forbruge og transportere infektiøst materiale via afføring deposition til sygdomsfrie områder.

De procedurer, vi demonstrerer her blev brugt til at dokumentere passage af PrP Res materiale gennem fordøjelsessystemet af krager og vil i høj grad lette anvendelsen af disse metoder til andre ådselsæder og kødædende arter-specifikke modeller i relaterede fremtidig forskning. I denne undersøgelse konventionelle metoder blev anvendt til at undersøge en utraditionel måde for menneskehandel PrP Res materiale, som vil kunne bidrage til udbredelsen og den samlede byrde af PrP Res materiale.

Protocol

Vores protokol tilpasset fra en vi tidligere offentliggjorte 7. Alle procedurer, der involverer dyr blev godkendt af Institutional Animal Care og brug Udvalg det amerikanske landbrugsministerium (USDA), Dyresundhed og Plantesundhed Inspection Service (APHIS), Wildlife Services (WS), National Wildlife Research Center (NWRC). 1.. Crow Gavaging Vurdere passage tid af 'pseudo hjerne materiale «gennem fordøjelseskanalen af ​​amerikanske krager. Bland 5 ml …

Representative Results

De anvendte procedurer viser, at fordøjelsessystemet krager ikke eliminerer PrP Res infektivitet 4 timer efter oral tvangsfodring af scrapie hjemehomogenat 7. Alle tyve krager, der blev tvangsfodret med PrP Res materiale efterfølgende videregives PrP Res materiale via afføring til mus. Syge mus blev identificeret ved manifestation af kliniske muse-scrapie skilte og bekræftelse sygdom blev afsluttet ved Western blot-analyse. Undersøgelse af ret…

Discussion

Vi demonstrerer en procedure til at dokumentere passage af PrP Res materiale gennem fordøjelsessystemet af krager. Vi brugte konventionelle metoder til at afgøre, om krager har evnen til at translokere PrP Res materiale sygdomsfrie geografiske områder. Andre har vurderet modstand PrP Res til drøvtyggere 19-21 og gnavere 22,23 fordøjelsesvæsker, som begge har undladt at fjerne det. Fremtidig anvendelse af disse teknikker bør anvendes på andre rovdyr 24,<…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke S. Werner for at levere de krager, der anvendes i denne undersøgelse, og USDA, APHIS, WS, NWRC dyrepleje personale til pasning af dyr og overvågning. Nævn eller brug af et produkt er ikke ensbetydende med USDA godkendelse. Finansieringen af ​​denne undersøgelse blev leveret af USDA, APHIS, Veterinary Services.

Materials

RML Chandler strain mouse-adapted scrapie Rocky Mountain Laboratories
RC57BL/6 mice Hilltop Lab Animals
American crows wild captured
Pen/Strep Invitrogen 15140-122
Phosphate buffered Saline Invitrogen 70011-044
Sonicator Misonix
Proteinase-K solution Roche 3115887001
Loading buffer Invitrogen NP0007 and 0009
Bis-tris SDS PAGE 12% gel Invitrogen NP0342
Immobilon PVDF membrane Millipore 1SEQ00010
Tween 20 Sigma Aldrich P2287
Bullet blender homogenizer Braintree Scientific BBX24B
2.3 mm Zirconia/silica beads BioSpec Products 11079125Z
Bar224 anti-PrP monoclonal antibody Cayman Chemical 10009035
Superblock Thermo Scientific 37517
chemiluminescent substrate Millipore WBKLS0500
G-box gel documentation system Syngene

References

  1. Prusiner, S. B. Novel proteinaceous infectious particles cause scrapie. Science. 216 (4542), 136-144 (1982).
  2. Miller, M. W., Williams, E. S., et al. Epizootiology of chronic wasting disease in free-ranging cervids in Colorado and Wyoming. Journal of Wildlife Diseases. 36 (4), 676-690 (2000).
  3. Miller, M. W., Williams, E. S. Horizontal prion transmission in mule deer. Nature. 425 (6953), 35-36 (2003).
  4. Sigurdson, C. J., Adriano, A. Chronic Wasting Disease. Biochimica et Biophysica Acta. 1772 (6), 610-618 (2007).
  5. Miller, M. W., Williams, E. S., Hobbs, N. T., Wolfe, L. L. Environmental sources of prion transmission in mule deer. Emerging Infectious Diseases. 10 (6), 1003-1006 (2004).
  6. Mathiason, C. K., Hays, S. A., et al. Infectious prions in pre-clinical deer and transmission of chronic wasting disease solely by environmental exposure. PLoS ONE. 4 (6), e5916 (2009).
  7. VerCauteren, K. C., Pilon, J. L., Nash, P. B., Phillips, G. E., Fischer, J. W. Prion remains infectious after passage through digestive system of American crows (Corvus crachyrhunchos). PLoS ONE. 7 (10), e45774 (2012).
  8. Imran, M., Mahmood, S. An overview of animal prion diseases. Virology Journal. 8 (493), (2011).
  9. Watts, J. C., Balachandran, A., Westaway, D. The expanding universe of prion disease. PLoS PATHOGENS. 2 (3), e26 (2006).
  10. Bruce, M. E., et al. Transmissions to mice indicate that ‘new variant’ CJD is caused by the BSE agent. Nature. 389 (6650), 498-501 (1997).
  11. Ryder, S., Dexter, G., Bellworty, S., Tongue, S. Demonstration of lateral transmission of scrapie between sheep kept under natural conditions using lymphoid tissue biopsy. Research in Veterinary Science. 76 (2004), 211-217 (2004).
  12. Collinge, J. The risk of prion zoonoses. Science. 335 (6067), 411-413 (2012).
  13. Beringue, V., Vilotte, J. L., Laude, H. Prion agent diversity and species barrier. Veterinary Research. 39 (47), (2008).
  14. Harrington, R. D., Baszler, T., et al. A species barrier limits transmission of chronic wasting disease to mink (Mustela vison). The Journal of General Virology. 89 (4), 1086-1096 (2008).
  15. Wisniewski, H. M., Sigurdarson, S., Rubenstein, R., Kascsak, R. J., Carp, R. I. Mites as vectors for scrapie. Lancet. 347 (9008), 1114 (1996).
  16. Post, K., Riesner, D., Walldorf, V., Mehlhorn, H. Fly larvae and pupae as vectors for scrapie. Lancet. 354 (9194), 1969-1970 (1999).
  17. Matthews, D., Cooke, B. C. The potential for transmissible spongiform encephalopathies in non-ruminant livestock and fish. Revue Scientifique Et Technique-Office International Des Epizooties. 22 (1), 283-296 (2003).
  18. Jennelle, C. S., Samuel, M. D., Nolden, C. A., Berkley EA, . Deer carcass decomposition and potential scavenger exposure to chronic wasting disease. Journal of Wildlife Management. 73 (5), 655-662 (2009).
  19. Scherbel, C., Pichner, R., et al. Degradation of scrapie associated prion protein (PrPSc) by the gastrointestinal microbiota of cattle. Veterinary Research. 37 (5), 695-703 (2006).
  20. Jeffrey, M., Gonzaález, L., et al. Transportation of prion protein across the intestinal mucosa of scrapie susceptible and scrapie-resistant sheep. Journal of Pathology. 209 (1), 4-14 (2006).
  21. Nicholson, E. M., Richt, J. A., Rasmussen, M. A., Hamir, A. N., Lebepe-Mazur, S., Horst, R. L. Exposure of sheep scrapie brain homogenate to rumen-simulating conditions does not result in a reduction of PrP(Sc) levels. Letters in Applied Microbiology. 44 (6), 631-636 (2007).
  22. Motes C, M. a. l. u. q. u. e. r. d. e., Grassi, J., et al. Excretion of BSE and scrapie prions in stools from murine models. Veterinary Microbiology. 131 (1-2), 205-211 (2008).
  23. Kruger, D., Thomzig, A., Lenz, G., Kampf, K., McBride, P., Beekes, M. Faecal shedding, alimentary clearance and intestinal spread of prions in hamsters fed with scrapie. Veterinary Research. 40 (1), 4 (2009).
  24. Mathiason, C. K., Nalls, A. V., et al. Susceptibility of domestic cats to chronic wasting disease. Journal of Virology. 87 (4), 1947-1956 (2013).
  25. Bjorndal, K. A. Flexibility of digestive responses in two generalist herbivores, the tortoises Geochelone carbonaria and Geochelone denticulate. Oecologia. 78 (3), 317-321 (1989).
  26. Clark, R. G., Gentle, G. C. Estimates of grain passage time in captive mallards. Canadian Journal of Zoology. 68 (11), 2275-2279 (1990).
  27. Dierenfeld, E. S., Koontz, F. W. Feed intake, digestion and passage of proboscis monkey (Nasalis larvatus) in captivity. Primates. 33 (3), 399-405 (1992).
  28. Thompson, A. K., Samuel, M. D., Van Deelen, T. R. Alternative feeding strategies and potential disease transmission in Wisconsin white-tailed deer. Journal of Wildlife Management. 72 (2), 416-421 (2008).
  29. Pulford, B., Spraker, T. A., et al. Detection of PrPCWD in feces from naturally exposed Rocky Mountain elk (Cervus elaphus nelsoni) using protein misfolding cyclic amplification. Journal of Wildlife Diseases. 48 (2), 425-433 (2012).
  30. Hicks, R. E. Guano deposition in an Oklahoma crow roost. Condor. 81 (3), 247-250 (1979).
  31. Aldous, S. E. Winter habits of crows in Oklahoma. Journal of Wildlife Management. 73 (4), 290-295 (1944).
check_url/kr/50853?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fischer, J. W., Nichols, T. A., Phillips, G. E., VerCauteren, K. C. Procedures for Identifying Infectious Prions After Passage Through the Digestive System of an Avian Species. J. Vis. Exp. (81), e50853, doi:10.3791/50853 (2013).

View Video