Summary

Rutiner for å identifisere Smittsomme Prions Etter passasje gjennom fordøyelsessystemet til en fuglearter

Published: November 06, 2013
doi:

Summary

Åtseletere har potensial til å translocate smittsomme overførbare spongiforme encefalopati prioner i deres avføring til sykdomsfrie områder. Vi detalj metoder som brukes for å avgjøre om mus-tilpasset skrapesyke prioner forbli smittsomme etter passering om fordøyelseskanalen av amerikanske kråker (Corvus brachyrhynchos), en vanlig forbruker av døde dyr.

Abstract

Infeksiøs prion (PrP Res) materialet er sannsynligvis årsaken til dødelig, nevrodegenerativ overførbar spongiform encefalopati (TSE) sykdommer en. Overføring av TSE-sykdommer, slik som kronisk wasting sykdom (CWD), er antatt å være fra dyr til dyr 2,3, så vel som fra miljøkilder 4-6. Åtseletere og rovdyr har potensial til å translocate PrP Res materiale gjennom forbruk og utskillelse av CWD-forurenset åtsler. Nyere arbeider har dokumentert passering av PrP Res materiale gjennom fordøyelsessystemet av amerikanske kråker (Corvus brachyrhynchos), en felles nordamerikanske gatefeier 7.

Vi beskriver prosedyrer som brukes til å dokumentere passering av PrP Res materiale gjennom amerikanske kråker. Crows ble gavaged med RML-belastning mus-tilpasset skrapesyke og deres avføring ble samlet 4 hr innlegg sonde. Kråke avføring ble deretter samlet og injisert intraperitonealt innC57BL / 6 mus. Musene ble overvåket daglig inntil de uttrykte kliniske tegn på muse skrapesyke og ble deretter avlives. Asymptomatiske mus ble fulgt til 365 dager etter vaksinasjonen. Western blot-analyse ble utført for å bekrefte sykdomsstatus. Resultatene viste at prioner forbli smittefarlig etter reiser gjennom fordøyelsessystemet til kråker og er til stede i avføringen, forårsaker sykdom hos test mus.

Introduction

Overførbare spongiforme encefalopatier (TSE) er dødelige smittsomme nevrodegenerative lidelser som påvirker dyreliv, husdyr og mennesker. Smittestoffet av TSE sykdommer ser ut til å være misfolded eller patogene isoformer (PrP Res) av prionproteiner en. Animal TSE sykdommer inkluderer chronic wasting disease (CWD) i hjort (Odocoileus hemionus), white-tailed deer (Odocoileus virginianus), elg (Cervus elaphus), og elg (Alces alces), skrapesyke hos sau og geit, bovin spongiform encefalopati ( BSE) i husdyr; overfør mink encefalopati hos oppdretts mink; feline spongiform encefalopati hos katter; eksotisk hovdyr spongiform encefalopati i eksotiske dyrehagen ruminates av familien Bovidae, og spongiform encefalopati hos ikke-menneskelige primater åtte. Den eneste menneske TSE sykdom, variant Creutzfeldt-Jakobs sykdom, er sjeldne og tenkte å bli kjøpt opp av forbruker PrP Res-contaminrerte mat ni. På samme måte kan BSE smitte mennesker hvis forurenset biff er fortært 10. Av alle TSE sykdommer, skrapesyke og CWD er de to eneste med selvbærende epidemier og kilder for smitte antas å være fra dyr til dyr 2,3,11 samt fra miljø kilder 4-6. Forskning tyder på at de fleste TSE sykdommer krever bemerkelsesverdige lengre inkubasjonsperioder fra naturlige eksponerings hendelser av PrP Res materialet til manifestasjon av kliniske tegn 2-4,6,8 og åpenbare arter barrierer minimere, men ikke eliminere muligheten for, uspesifikt overføring 12-14 .

Identifisere mekanismer for spredning av smittsomme prion (PrP Res) materialet er ekstremt viktig for å svare på spørsmål om hvordan TSE sykdommer beveger seg over landskapet. Eksperimentelle undersøkelser har antydet at insekter 15,16, fjørfe og svin 17, og amerikanske kråker (Corvus Brachyrhynchos) 7,18 er passive bærere eller dispersers av PrP Res materiale. Passering av PrP Res materiale gjennom fordøyelsessystemet til kråker har nylig blitt dokumentert, viser hvilken rolle de kan spille i spredning av TSE sykdommer 7. Disse resultatene gjør det plausibelt at kråker, en gatefeier, kan støte på, forbruke, og transportere infeksiøst materiale via avføring deponering, til sykdomsfrie områder.

Prosedyrene vi viser her ble brukt til å dokumentere passering av PrP Res materiale gjennom fordøyelsessystemet hos kråker, og vil i stor grad lette anvendelsen av disse metodene til andre åtseldyr og rovdyr-spesifikke modeller i relatert fremtidig forskning. I denne studien konvensjonelle metoder ble brukt for å undersøke en ukonvensjonelle midler for menneskehandel PrP Res materiale, som kan bidra til spredning og totale byrden av PrP Res materiale.

Protocol

Vår protokollen er tilpasset fra en vi tidligere utgitt syv. Alle prosedyrer som involverer dyr ble godkjent av Institutional Animal Care og bruk Committee of the United States Department of Agriculture (USDA), dyre-og plantehelse Inspection Service (APHIS), Wildlife Services (WS), National Wildlife Research Center (NWRC). En. Crow Gavaging Anslå passasjen tid av pseudohjernemateriale "gjennom fordøyelseskanalen av amerikanske kråker. Bland 5 ml tilber…

Representative Results

Fremgangsmåtene som benyttes demonstrere at fordøyelsessystemet kråke ikke eliminere PrP Res infectivity 4 timer etter oral gavage med skrapesyke hjerne homogenat 7.. Alle tjue kråker som ble gavaged med PrP Res materialet senere overført PrP Res materialet via avføring til mus. Syke mus ble identifisert av manifestasjon av kliniske mus-skrapesyke tegn og sykdom bekreftelse ble fullført av Western blot analyse. Undersøkelse av retensjonstid…

Discussion

Vi viser en prosedyre for å dokumentere passering av PrP Res materiale gjennom fordøyelsessystemet til kråkene. Vi har benyttet konvensjonelle fremgangsmåter for å bestemme om galer har evnen til å translocate PrP Res materialet til sykdomsfrie geografiske områder. Andre har evaluert motstand av PrP Res til drøvtyggere 19-21 og gnager 22,23 fordøyelsesvæsker, som begge klarte å eliminere den. Fremtidig bruk av disse teknikkene skal brukes til andre rovdyr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke S. Werner for å gi kråkene brukt i denne studien og USDA, APHIS, WS, NWRC dyr omsorg ansatte for dyr omsorg og oppfølging. Nevn eller bruk av et produkt innebærer ikke USDA påtegning. Finansiering for denne studien ble gitt av USDA, APHIS, Veterinary Services.

Materials

RML Chandler strain mouse-adapted scrapie Rocky Mountain Laboratories
RC57BL/6 mice Hilltop Lab Animals
American crows wild captured
Pen/Strep Invitrogen 15140-122
Phosphate buffered Saline Invitrogen 70011-044
Sonicator Misonix
Proteinase-K solution Roche 3115887001
Loading buffer Invitrogen NP0007 and 0009
Bis-tris SDS PAGE 12% gel Invitrogen NP0342
Immobilon PVDF membrane Millipore 1SEQ00010
Tween 20 Sigma Aldrich P2287
Bullet blender homogenizer Braintree Scientific BBX24B
2.3 mm Zirconia/silica beads BioSpec Products 11079125Z
Bar224 anti-PrP monoclonal antibody Cayman Chemical 10009035
Superblock Thermo Scientific 37517
chemiluminescent substrate Millipore WBKLS0500
G-box gel documentation system Syngene

References

  1. Prusiner, S. B. Novel proteinaceous infectious particles cause scrapie. Science. 216 (4542), 136-144 (1982).
  2. Miller, M. W., Williams, E. S., et al. Epizootiology of chronic wasting disease in free-ranging cervids in Colorado and Wyoming. Journal of Wildlife Diseases. 36 (4), 676-690 (2000).
  3. Miller, M. W., Williams, E. S. Horizontal prion transmission in mule deer. Nature. 425 (6953), 35-36 (2003).
  4. Sigurdson, C. J., Adriano, A. Chronic Wasting Disease. Biochimica et Biophysica Acta. 1772 (6), 610-618 (2007).
  5. Miller, M. W., Williams, E. S., Hobbs, N. T., Wolfe, L. L. Environmental sources of prion transmission in mule deer. Emerging Infectious Diseases. 10 (6), 1003-1006 (2004).
  6. Mathiason, C. K., Hays, S. A., et al. Infectious prions in pre-clinical deer and transmission of chronic wasting disease solely by environmental exposure. PLoS ONE. 4 (6), e5916 (2009).
  7. VerCauteren, K. C., Pilon, J. L., Nash, P. B., Phillips, G. E., Fischer, J. W. Prion remains infectious after passage through digestive system of American crows (Corvus crachyrhunchos). PLoS ONE. 7 (10), e45774 (2012).
  8. Imran, M., Mahmood, S. An overview of animal prion diseases. Virology Journal. 8 (493), (2011).
  9. Watts, J. C., Balachandran, A., Westaway, D. The expanding universe of prion disease. PLoS PATHOGENS. 2 (3), e26 (2006).
  10. Bruce, M. E., et al. Transmissions to mice indicate that ‘new variant’ CJD is caused by the BSE agent. Nature. 389 (6650), 498-501 (1997).
  11. Ryder, S., Dexter, G., Bellworty, S., Tongue, S. Demonstration of lateral transmission of scrapie between sheep kept under natural conditions using lymphoid tissue biopsy. Research in Veterinary Science. 76 (2004), 211-217 (2004).
  12. Collinge, J. The risk of prion zoonoses. Science. 335 (6067), 411-413 (2012).
  13. Beringue, V., Vilotte, J. L., Laude, H. Prion agent diversity and species barrier. Veterinary Research. 39 (47), (2008).
  14. Harrington, R. D., Baszler, T., et al. A species barrier limits transmission of chronic wasting disease to mink (Mustela vison). The Journal of General Virology. 89 (4), 1086-1096 (2008).
  15. Wisniewski, H. M., Sigurdarson, S., Rubenstein, R., Kascsak, R. J., Carp, R. I. Mites as vectors for scrapie. Lancet. 347 (9008), 1114 (1996).
  16. Post, K., Riesner, D., Walldorf, V., Mehlhorn, H. Fly larvae and pupae as vectors for scrapie. Lancet. 354 (9194), 1969-1970 (1999).
  17. Matthews, D., Cooke, B. C. The potential for transmissible spongiform encephalopathies in non-ruminant livestock and fish. Revue Scientifique Et Technique-Office International Des Epizooties. 22 (1), 283-296 (2003).
  18. Jennelle, C. S., Samuel, M. D., Nolden, C. A., Berkley EA, . Deer carcass decomposition and potential scavenger exposure to chronic wasting disease. Journal of Wildlife Management. 73 (5), 655-662 (2009).
  19. Scherbel, C., Pichner, R., et al. Degradation of scrapie associated prion protein (PrPSc) by the gastrointestinal microbiota of cattle. Veterinary Research. 37 (5), 695-703 (2006).
  20. Jeffrey, M., Gonzaález, L., et al. Transportation of prion protein across the intestinal mucosa of scrapie susceptible and scrapie-resistant sheep. Journal of Pathology. 209 (1), 4-14 (2006).
  21. Nicholson, E. M., Richt, J. A., Rasmussen, M. A., Hamir, A. N., Lebepe-Mazur, S., Horst, R. L. Exposure of sheep scrapie brain homogenate to rumen-simulating conditions does not result in a reduction of PrP(Sc) levels. Letters in Applied Microbiology. 44 (6), 631-636 (2007).
  22. Motes C, M. a. l. u. q. u. e. r. d. e., Grassi, J., et al. Excretion of BSE and scrapie prions in stools from murine models. Veterinary Microbiology. 131 (1-2), 205-211 (2008).
  23. Kruger, D., Thomzig, A., Lenz, G., Kampf, K., McBride, P., Beekes, M. Faecal shedding, alimentary clearance and intestinal spread of prions in hamsters fed with scrapie. Veterinary Research. 40 (1), 4 (2009).
  24. Mathiason, C. K., Nalls, A. V., et al. Susceptibility of domestic cats to chronic wasting disease. Journal of Virology. 87 (4), 1947-1956 (2013).
  25. Bjorndal, K. A. Flexibility of digestive responses in two generalist herbivores, the tortoises Geochelone carbonaria and Geochelone denticulate. Oecologia. 78 (3), 317-321 (1989).
  26. Clark, R. G., Gentle, G. C. Estimates of grain passage time in captive mallards. Canadian Journal of Zoology. 68 (11), 2275-2279 (1990).
  27. Dierenfeld, E. S., Koontz, F. W. Feed intake, digestion and passage of proboscis monkey (Nasalis larvatus) in captivity. Primates. 33 (3), 399-405 (1992).
  28. Thompson, A. K., Samuel, M. D., Van Deelen, T. R. Alternative feeding strategies and potential disease transmission in Wisconsin white-tailed deer. Journal of Wildlife Management. 72 (2), 416-421 (2008).
  29. Pulford, B., Spraker, T. A., et al. Detection of PrPCWD in feces from naturally exposed Rocky Mountain elk (Cervus elaphus nelsoni) using protein misfolding cyclic amplification. Journal of Wildlife Diseases. 48 (2), 425-433 (2012).
  30. Hicks, R. E. Guano deposition in an Oklahoma crow roost. Condor. 81 (3), 247-250 (1979).
  31. Aldous, S. E. Winter habits of crows in Oklahoma. Journal of Wildlife Management. 73 (4), 290-295 (1944).
check_url/kr/50853?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fischer, J. W., Nichols, T. A., Phillips, G. E., VerCauteren, K. C. Procedures for Identifying Infectious Prions After Passage Through the Digestive System of an Avian Species. J. Vis. Exp. (81), e50853, doi:10.3791/50853 (2013).

View Video