Summary

Identificatie van een Muriene erytroblast subpopulatie verrijkt in Enucleating Events door Multi-spectrale Imaging flowcytometrie

Published: June 06, 2014
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft een nieuwe werkwijze voor het identificeren van een populatie van enucleating orthochromatische erytroblasten van multispectrale beeldvorming flowcytometrie, die een visualisering van de erytroblast enucleatie proces.

Abstract

Erytropoëse in zoogdieren wordt afgesloten met het dramatische proces van enucleatie dat resulteert in reticulocyten formatie. Het mechanisme van enucleatie is nog niet volledig opgehelderd. Een veelvoorkomend probleem bij het bestuderen van de lokalisatie van de belangrijkste eiwitten en structuren binnen enucleating erytroblasten microscopisch is de moeilijkheid om een ​​voldoende aantal cellen die enucleatie nemen. We hebben een nieuwe analyse protocol ontwikkeld met multiparameter high-speed cell imaging in flow (Multi-Spectral Imaging flowcytometrie), een methode die immunofluorescente microscopie gecombineerd met flowcytometrie, teneinde efficiënte manier een groot aantal enucleating gebeurtenissen die toelaat verkrijgen metingen en statistische analyses uit te voeren.

We beschrijven eerst hier twee in vitro erytropoëse cultuur methoden die worden gebruikt om muizen erytroblasten synchroniseren en verhogen de kans op het vastleggen van enucleatie bij The tijd van evaluatie. Vervolgens beschrijven we in detail de kleuring van erythroblasten na fixatie en permeabilisatie om de lokalisatie van intracellulaire eiwitten of lipide rafts bestudeerd worden enucleatie van multispectrale beeldvorming flowcytometrie. Samen met de grootte en DNA/Ter119 vlekken die worden gebruikt om de orthochromatische erytroblasten identificeren, maken we gebruik van de parameters "aspect ratio" van een cel in de bright-field kanaal dat helpt bij de erkenning van langgerekte cellen en "delta centroïde XY Ter119/Draq5 "waarmee de identificatie van cellulaire gebeurtenissen waar het centrum van Ter119 kleuring (ontluikende reticulocyten) is ver uit het centrum van Draq5 kleuring (nucleus ondergaan extrusie), hetgeen wijst op een cel over te ophelderen. De subset van de orthochromatische erythroblast bevolking met een hoge delta zwaartepunt en lage aspect ratio wordt sterk verrijkt in enucleating cellen.

Introduction

Terminale differentiatie in de erytroïde afstammingslijn bij zoogdieren eindigt met de dramatische proces van enucleatie, waardoor de orthochromatische erytroblast verdrijft het membraan omhulde kern (pyrenocyte) 1, het genereren van een reticulocyten 2. Het exacte mechanisme van deze werkwijze, die ook de snelheidsbeperkende stap van succesvolle, grootschalige productie van rode bloedcellen in vitro, is nog niet volledig opgehelderd. De lokalisatie van de belangrijkste eiwitten en structuren binnen enucleating erythroblasten gebaseerd op het gebruik van fluorescente en elektronenmicroscopie 3-5. Dit moeizaam proces resulteert typisch in de identificatie van een beperkt aantal enucleatie evenementen en niet altijd mogelijk zinvolle statistische analyse. Voortbouwend op een werkwijze erytroblast identificatie eerder beschreven door McGrath et al.. 6, hebben wij een nieuwe benadering voor het identificeren en bestuderen enucleatie gebeurtenissen door Multi-Spectral Ima ontwikkeldGing flowcytometrie (multiparameter snelle celweergave in flow, een methode die fluorescentiemicroscopie met flowcytometrie combineert) 7, dat een voldoende waarnemingen kan leveren uitvoeren van metingen en statistische analyse.

Hier beschrijven we eerst twee in vitro erytropoëse kweekmethoden gebruikt om erytroblasten synchroniseren en verhogen de kans op het vastleggen enucleatie bij de evaluatie. Vervolgens beschrijven we in detail de kleuring van erythroblasten na fixatie en permeabilisatie om de lokalisatie van intracellulaire eiwitten of lipide rafts bestudeerd worden enucleatie van multispectrale beeldvorming flowcytometrie.

Monsters worden uitgevoerd op een imaging flowcytometer en de verzamelde cellen adequaat gated om orthochromatische erytroblasten 6 identificeren. Orthochromatische erythroblasten worden vervolgens geanalyseerd op basis van hun verhouding, gemeten helderveld imaGing, versus de waarde voor de parameter delta zwaartepunt XY Ter119-DNA, dat wordt gedefinieerd als de afstand tussen de middelpunten van de gebieden, respectievelijk gekleurd voor Ter119 en DNA. De populatie van cellen met een lage aspect ratio en een hoge delta centroïde XY Ter119/DNA is sterk verrijkt in enucleating cellen. Met behulp van wild-type (WT) erytroblasten versus erytroblasten met Mx-Cre-gemedieerde voorwaardelijke schrapping van Rac1 op Rac2 – / – of gecombineerd Rac2 – / -; RAC3 – / – genetische achtergrond en deze nieuwe analyse protocol van multispectrale beeldvorming flowcytometrie, we onlangs aangetoond dat enucleatie lijkt asymmetrische cytokinese en dat de vorming van een ring actomyosine gedeeltelijk gereguleerd door Rac GTPases is belangrijk voor enucleatie progressie 7.

Protocol

1. Lange termijn In vitro Erythropoiesis Cultuur (Ex vivo Erythroid Differentiatie Cultuur Protocol door Giarratana et al.. 8, gewijzigd en aangepast voor Mouse Cells) Dit is een 3-stap op lange termijn in vitro erytropoëse protocol. In de eerste stap (dagen 0-4) 2 x 10 5 cellen / ml worden in erytroblast groeimedium aangevuld met stamcelfactor (SCF), interleukine-3 (IL-3) en erythropoietine (Epo). In de tweede stap (5-6 dagen) worden …

Representative Results

Eerst worden de cellen geanalyseerd op basis van hun Brightfield Aspect Ratio (verhouding van de lengte van de kleine tegenover de hoofdas) en de helderveld Area (indicatie van hun grootte). Evenementen met een waarde Brightfield Area lager dan 20 en hoger dan 200 zijn meestal puin en mobiele aggregaten, respectievelijk, en zijn uitgesloten van de analyse (Figuur 2A). Enkele cellen (gate "R1") zijn vervolgens geanalyseerd op basis van hun waarde voor de parameter Gradient RMS, die de scherpte …

Discussion

De laatste jaren onderzoek erytroblast enucleatie heeft opgedaan toenemende momentum omdat het de stap van in vitro erytropoëse culturen die het meest moeilijk efficiënt reproduceren om succesvol grootschalige productie van rode bloedcellen ex vivo te bereiken. Tot voor kort, de studie van erythroblast enucleatie gebruikt voornamelijk fluorescentie microscopie en flowcytometrie methoden. Fluorescentiemicroscopiemethodes, zij nuttig bij het identificeren deelnemende moleculen vereisen dagen microscopi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs danken de Research Doorstroomcytometrie Core in Cincinnati Children's Hospital Research Foundation en Richard Demarco, Sherree vriend, en Scott Mordechai uit de Amnis Corporation (onderdeel van EMD Milllipore) voor deskundige technische ondersteuning. Dit werk werd ondersteund door de National Institutes of Health verleent K08HL088126 en R01HL116352 (TAK) en P30 DK090971 (YZ).

Materials

αMEM medium CellGro  15-012-CV
IMDM medium Hyclone (Thermo Scientific) SH30228.01
Stempro-34 SFM GIBCO (Life Tech) 10640
Stempro-34 nutrient supplement GIBCO (Life Tech) 10641-025
Fetal Bovine Serum (FBS) Atlanta Biologicals 512450
BIT9500 Stemcell Technologies 09500
Bovine Serum Albumin (BSA) Fisher Scientific BP-1600-100
Phosphate buffered saline (PBS) Hyclone (Thermo Scientific) SH30028.02
Penicillin/Streptomycin Hyclone (Thermo Scientific) SV30010
L-glutamine Hyclone (Thermo Scientific) SH30590.01
Isothesia (Isoflurane) Butler-Schein 029405
Histopaque 1.083mg/ml Sigma 10831
BD Pharmlyse (RBC lysis buffer) BD Biosciences 555899
Acetone Sigma-Aldrich 534064
Formaldehyde Fisher Scientific BP 531-500
Hydrocortisone Sigma H4001
Stem Cell Factor (SCF) Peprotech 250-03
Interleukin-3 (IL-3) Peprotech 213-13
EPOGEN Epoetin Alfa (Erythropoietin, EPO) AMGEN available by pharmacy
CD44-FITC antibody BD Pharmingen 553133
CD71-FITC antibody BD Pharmingen 553266
Ter119-PECy7 antibody BD Pharmingen 557853
Phalloidin-AF488 Invitrogen (Life Technologies) A12379
β-tubulin-AF488 antibody Cell Signaling #3623
anti-rabbit AF488-secondary antibody Invitrogen (Life Technologies) A11008
anti-rabbit AF555-secondary antibody Invitrogen (Life Technologies) A21428
AF594-cholera toxin B subunit Invitrogen (Life Technologies) C34777
pMRLC (Ser19) antibody Cell Signaling #3671
γ-tubulin antibody Sigma T-3559
Syto16 Invitrogen (Life Technologies) S7578
Draq5 Biostatus DR50200
Ferrous sulfate Sigma F7002
Ferric nitrate Sigma F3002
EDTA Fisher Scientific BP120500
15ml tubes BD Falcon 352099
50ml tubes BD Falcon 352098
6-well plates BD Falcon 353046
24-well plates BD Falcon 351147
Flow tubes BD Falcon 352008
Tuberculin syringe BD 309602
Insulin syringe BD 329461
Syringe needle 25G5/8 BD 305122
Capped flow tubes BD 352058
40μm cell strainer BD Falcon 352340
Scalpel (disposable) Feather 2975#21
FACS Canto Flow Cytometer BD
ImagestreamX Mark II Imaging Flow Cytometer AMNIS (EMD Millipore)
Image Data Exploration and Analysis Software (IDEAS) version 4.0 and up. AMNIS (EMD Millipore)
Hemavet 950 Cell Counter Drew Scientific CDC-9950-002
NAPCO series 8000WJ Incubator Thermo scientific
Allegra X-15R Centrifuge Beckman Coulter 392932
Mini Mouse Bench centrifuge Denville C0801

References

  1. McGrath, K. E., Kingsley, P. D., Koniski, A. D., Porter, R. L., Bushnell, T. P., Palis, J. Enucleation of primitive erythroid cells generates a transient population of "pyrenocytes" in the mammalian fetus. Blood. 111, 2409-2417 (2008).
  2. Chasis, J. A., Mohandas, N. Erythroblastic islands: niches for erythropoiesis. Blood. 112, 470-478 (2008).
  3. Koury, S. T., Koury, M. J., Bondurant, M. C. Cytoskeletal distribution and function during the maturation and enucleation of mammalian erythroblasts. J Cell Biol. 109, 3005-3013 (1989).
  4. Ji, P., Jayapal, S. R., Lodish, H. F. Enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts requires Rac GTPases and mDia2. Nat Cell Biol. 10, 314-321 (2008).
  5. Keerthivasan, G., Small, S., Liu, H., Wickrema, A., Crispino, J. D. Vesicle trafficking plays a novel role in erythroblast enucleation. Blood. 116, 3331-3340 (2010).
  6. McGrath, K. E., Bushnell, T. P., Palis, J. Multispectral imaging of hematopoietic cells: where flow meets morphology. J Immunol Methods. 336, 91-97 (2008).
  7. Konstantinidis, D. G., et al. Signaling and cytoskeletal requirements in erythroblast enucleation. Blood. 119, 6118-6127 (2012).
  8. Giarratana, M. C., et al. Ex vivo generation of fully mature human red blood cells from hematopoietic stem cells. Nat Biotechnol. 23, 69-74 (2005).
  9. Chen, K., Liu, J., Heck, S., Chasis, J. A., An, X., Mohandas, N. Resolving the distinct stages in erythroid differentiation based on dynamic changes in membrane protein expression during erythropoiesis. Proc Natl Acad Sci U S A. , (2009).
  10. Kalfa, T. A., et al. Rac1 and Rac2 GTPases are necessary for early erythropoietic expansion in the bone marrow but not in the spleen. Haematologica. 95, 27-35 (2010).
  11. Koulnis, M., Pop, R., Porpiglia, E., Shearstone, J. R., Hidalgo, D., Socolovsky, M. Identification and analysis of mouse erythroid progenitors using the CD71/TER119 flow-cytometric assay. J Vis Exp. , (2011).
  12. Yoshida, H., Kawane, K., Koike, M., Mori, Y., Uchiyama, Y., Nagata, S. Phosphatidylserine-dependent engulfment by macrophages of nuclei from erythroid precursor cells. Nature. 437, 754-758 (2005).
  13. Ortyn, W. E., et al. Sensitivity measurement and compensation in spectral imaging. Cytometry A. 69, 852-862 (2006).
check_url/kr/50990?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Konstantinidis, D. G., Pushkaran, S., Giger, K., Manganaris, S., Zheng, Y., Kalfa, T. A. Identification of a Murine Erythroblast Subpopulation Enriched in Enucleating Events by Multi-spectral Imaging Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (88), e50990, doi:10.3791/50990 (2014).

View Video