Summary

Embriyonik ön beyin gelen Endotel Hücreleri İzolasyon ve Kültürü

Published: January 23, 2014
doi:

Summary

Bu video 10-12 gün içinde embriyonik ön beyin endotel hücreleri saf kültürlerin hazırlanması için kolay ve güvenilir bir strateji gösterir ve serebral damar birçok açıdan odaklanmış araştırma için yararlı olacaktır.

Abstract

Embriyonik beyin endotel hücreleri anjiyogenez ve nörovasküler gelişim ve etkileşim çalışmasında önemli bir araç olarak hizmet edebilir. Embriyonik ön beyin, PIAL ve periventriküler iki damar ağları, mekansal farklı ve farklı kökenleri ve büyüme desenler var. Pial ve periventriküler damar ağlarından endotel hücreleri benzersiz gen ekspresyon profillerini ve işlevleri vardır. Burada embriyonik ön beyin (telencephalon) periventriküler damar ağı (PVECs) endotel hücrelerinin saf popülasyonlarının izolasyonu, kültür ve doğrulama için bir adım adım protokol mevcut. Bu yaklaşımda, embriyonik gün 15 farenin elde pial membran yoksun telencephalon, doğrandı kolajenaz / dispaz ile sindirilir ve tek bir hücre süspansiyonu içine mekanik olarak dağıtılabilir. PVECs güçlü bir manyetik kullanılarak mikro, konjüge anti-CD-31/PECAM-1 antikoru ile pozitif seçim kullanılarak hücre süspansiyonundan saflaştınlırayırma yöntemi. Bunlar birbirine karıştırılmış ve bundan başka, alt-kültürlenmiş olana kadar saflaştırılmış hücreler, endotelyal hücre kültür ortamı içinde 1 kollajen kaplı kültür tabakları üzerinde kültürlenmiştir. Faz-kontrast ışık mikroskobu ve floresan mikroskobu ile görüntülenmiştir gibi PVECs, bu protokol sergi parkelerde ve iğ biçimli fenotipleri ile elde. PVEC kültürlerin saflığı endotel hücre belirleyicileri ile kurulmuştur. Bizim ellerde, bu yöntem güvenilir ve tutarlı PVECs saf popülasyonları verir. Bu protokol, ön beyin anjiyojenezde içine mekanik bakış açısı kazanıyor PVEC etkileşimleri ve nöronal hücre tipleri ile çapraz görüşmeleri anlayış ve terapötik anjiyogenez için muazzam bir potansiyele sahiptir hedefleyen çalışmaları yararlanacaktır.

Introduction

Anjiyogenezis, nöron ve nöronal göç merkezi sinir sistemi (MSS) geliştirme, onarım ve rejenerasyon kritik olaylar. Çeşitli çalışmalar, zarif, endotel hücreleri, çözünebilir faktörleri serbest bırakılması yoluyla ve doğrudan temas ile nöronal proliferasyonu ve tersi uyardığını göstermiştir. Biz meraklı nöronal progenitorlar / nöral kök hücre, embriyonik beyninden izole ise bu çalışmaların çoğunda 1-3, bunlar yetişkin beyin, diğer yetişkin doku kaynakları, veya endotelyal hücre hatları ile endotel hücreleri ile kültürlenmiş olduğu bulundu. Bu kısmen embriyonik beyin endotel hücreleri popülasyonları saf izole edilmesi ve kültür ile ilgili teknik zorluklar nedeniyle olabilir. Ancak, anjiyogenez, nöron oluşumu, ve nöronal migrasyon, normal erişkin beyinde daha embriyonik beyinde daha sağlam büyüklükte emir meydana gelen eşzamanlı olaylardır. Embryoni ait periventriküler damar ağıc ön beyin (telencephalon) bazal ganglia primordiumunun içinde yer alan bir kaptan kaynaklanan ve embriyonik gün 11 (E11) 4,5 ile telencephalon dorsal ventral gelen düzenli bir gradyan şeklinde gelişir. Periventriküler damar ağı damarlarının Bu pleksus kökenleri, anatomik konumu, büyüme modelleri ve gelişim düzenlemesi 4,5 dayalı Pial gemiler farklıdır. Periventriküler anjiyogenez degrade yayılma yönü telencephalic enine nörogenetik degrade eşleşir. Telencephalon içinde, periventriküler anjiyogenez degrade ve göç GABA nöron degrade teğet yanı sıra mekansal 6 çakışıyor. Zamanlama ile ilgili olarak, anjiyojenez gradyan yaklaşık bir gün ile nörogenetik gradyanı ve GABA nöron gradyanı önceden olduğu. Böylece, periventriküler endotel hücreleri mekansal ve zamansal iyi telencephalic nörogenezi desteklemek için kritik ipuçları sağlamak için konumlandırılmış venöronal migrasyon 4,6. Bu nedenle, nöronal soylarının ve / veya nöronlarla kokültürü deneylerde embriyonik periventriküler endotel hücrelerinin kullanımı nörovasküler etkileşimlerin incelenmesinde ve nörodejeneratif hastalık veya iskemik / travmatik beyin hasarı tedavisi için yeni yollar geliştirmek için daha uygun bir modeli sağlayacaktır.

Biz, epitel hücre bulaşma sınırlamak için değil, aynı zamanda moleküler ve periventriküler damar ağı 4,6 (Pial EC'ler ayırmak adlandırılır PVECs) endotel hücrelerinden fonksiyonel olarak farklı olan Pial endotel hücreleri ayırmak için değil, sadece Pial membran kaldırma önemini vurgulamaktadır . Burada, biz rutin PVECs zengin ve saf verim elde etmek bizim laboratuvarımızda kullandığımız yöntem tarif. Bu endotel hücreleri, tek bir zaman ayarlı gebe fare izole edilmiş embriyonik forebrains hazırlanır. Onlar ileride kullanmak için başarılı bir şekilde, genişletilmiş alt kültürleri ve aşağı donmuş olabilir.

Protocol

1.. Reaktifler ve Çözümleri hazırlanması 35 mm kültür çanağı Kaplama: Kolajen Tip 1 çözeltisi, 20 mM asetik asit (~ 100 mg protein / şişe) içinde bir sulu çözelti olarak temin edilir. Steril doku kültürü dereceli su kullanarak,% 0.01 'lik bir konsantrasyona kadar çalışma kollajen çözeltisinin uygun bir hacmi ile seyreltilir. 1, oda sıcaklığında (RT) 3-4 saat boyunca kollajen çözeltisinin ml ya da 37 ° C arasında veya bir gece boyunca 2-8 ° C'de kaplayın yemekler Kapl…

Representative Results

Günde 1-12 dan PVECs fenotipik karakterizasyonu faz kontrast mikroskopisi ile (Şekil 2) ile gösterilir. Hücre bölünmesi (Şekil 2A) 1. gün gösteri morfolojisi karakteristik çanak bağlı hücreler. 5-8 gün arasında, taş taş PVECs geçiş endotel hücreleri ve (Şekil 2B ve 2C) ile in vivo duruma daha yakındır için tipik şekilli morfolojiye mili için. 12. günde kültür tarafından PVEC tam izdiham (Şekil 2B)…

Discussion

PVEC ait daha fazla fizyolojik olarak uygun nörovasküler etkileşimleri ilgili çalışma other doku kaynaklarından erişkin beyin endotel hücreleri ve EC 'den ve aynı zamanda tedavi edici potansiyele sahiptir. PVEC hazırlanması için, ölü hücrelerin CD31 mikro, için spesifik olmayan bağlamak olabilir çünkü iyi bir canlılığı elde etmek için hızlı çalışması için diseksiyon ile kritik bir başlangıçtır. Tek hücre süspansiyonu önce manyetik etiketleme aşamasından elde değilse, hücre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma Şizofreni Araştırmaları Ulusal İttifak ve Depresyon (NARSAD) Genç Araştırmacı Ödülü ve Ulusal Sağlık Enstitüleri AV R01NS073635 hibe tarafından desteklenmiştir.

Materials

DNase I Sigma D-4527
Collagen, Type 1 solution from rat tail Sigma C3867
DPBS Quality Biologicals 114057-131
EDTA Fisher Scientific M4055
BSA Sigma A2058
MS column Miltenyi Biotech 130-042-201
CD31 microbeads Miltenyi Biotech 130-097-418
MACS separator Miltenyi Biotech 130-042-102
MACS multi stand Miltenyi Biotech 130-042-303
Cell strainer 70 µm BD Bioscience 352350
Antibiotic and antimycotic solution Sigma A5955
FBS Sigma F4135
Collagenase/Dispase Roche 10269638001
DMEM Lonza 12-604F
35 mm culture dish BD Bioscience 353001
15 ml falcon tube BD Bioscience 352097
50 ml falcon tube BD Bioscience 352098
ECCM kit BD Bioscience 355054 Kit Includes Endothelial cell growth supplement, EGF and Soybean Trypsin Inhibitor
Endothelial Cell Growth Supplement (ECGS) BD Bioscience 354006
RBECGM Cell applications R819-500
DMEM F12 Life Technologies 10565-018
glutamax Life Technologies 305050-061
tissue culture grade water Life Technologies 15230162
0.25% Trypsin Life Technologies 15050
Soyabean trypsin inhibitor BD Bioscience 5425
Matrigel BD Bioscience 354234
Qtracker 655 Cell Labeling Kit Life Technologies Q25021
CellLight Plasma Membrane-RFP, BacMam 2.0 Life Technologies C10608
Biotinylated Isolectin B4 antibody Sigma L2140
Anti-Von Willebrand factor Sigma F3520
Anti-CD31/PECAM-1 BD Pharmingen 550274
Vectashield Hardset Mounting media with DAPI Vector Laboratories H-1500
Ketamine Butler Schein Animal Health Supply 44028
Xylazine Lloyd Laboratories 1009
Stereomicroscope Motic SMZ-168
hemocytometer Fisher Scientific 267110
inverted microscope Olympus CK-40 CK-40
Flouroscent microscope Olympus FSX-100 FSX-100
Fine forceps Roboz surgical instrument 7 inox
Fine microtip scissors Roboz surgical instrument RS5611

References

  1. Shen, Q., S, G., et al. Endothelial cells stimulate self-renewal and expand neurogenesis of neural stem cells. Science. 304, 1338-1340 (2004).
  2. Milner, R. A novel three-dimensional system to study interactions between endothelial cells and neural cells of the developing central nervous system. BMC Neurosci. 8, 3 (2007).
  3. Rauch, M. F., Michaud, M., Xu, H., Madri, J. A., Lavik, E. B. Co-culture of primary neural progenitor and endothelial cells in a macroporous gel promotes stable vascular networks in vivo. 19, 1469-1485 (2008).
  4. Vasudevan, A., Long, J. E., Crandall, J. E., Rubenstein, J. L., Bhide, P. G. Compartment-specific transcription factors orchestrate angiogenesis gradients in the embryonic brain. Nat. Neurosci. 11, 429-439 (2008).
  5. Vasudevan, A., Bhide, P. G. Angiogenesis in the embryonic CNS: a new twist on an old tale. Cell Adh. Migr. 2, 167-169 (2008).
  6. Won, C. K., et al. Autonomous vascular networks synchronize GABA neuron migration in the embryonic forebrain. Nat. Commun. 4, 2149-2162 (2013).
  7. Dong, Q. G., et al. A general strategy for isolation of endothelial cells from murine tissues. Characterization of two endothelial cell lines from the murine lung and subcutaneous sponge implants. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 17, 1599-1604 (1997).
  8. Erblich, B., Zhu, L., Etgen, A. M., Dobrenis, K., Pollard, J. W. Absence of colony stimulation factor-1 receptor results in loss of microglia, disrupted brain development and olfactory deficits. PLoS One. 6, (2011).
  9. Wichterle, H., Garcia-Verdugo, J. M., Herrera, D. G., Alvarez-Buylla, A. Young neurons from medial ganglionic eminence disperse in adult and embryonic brain. 2, 461-466 (1999).
  10. Snapyan, M., et al. Vasculature guides migrating neuronal precursors in the adult mammalian forebrain via brain-derived neurotrophic factor signaling. J. Neurosci. 29, 4172-4188 (2009).
  11. Whitman, M. C., Fan, W., Rela, L., Rodriguez-Gil, D. J., Greer, C. A. Blood vessels form a migratory scaffold in the rostral migratory stream. J. Comp. Neurol. 516, 94-104 (2009).
check_url/kr/51021?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kumar T., P., Vasudevan, A. Isolation and Culture of Endothelial Cells from the Embryonic Forebrain. J. Vis. Exp. (83), e51021, doi:10.3791/51021 (2014).

View Video