Summary

En Murint Model of Cervical Spinal Cord Injury å studere Post-lesional Respiratory Neuroplasticity

Published: May 28, 2014
doi:

Summary

Respirasjonssvikt er den ledende dødsårsaken etter en cervical ryggmargsskade. Å ha en reproduserbar, kvantifiserbar, og pålitelig pre-kliniske dyremodell av respiratorisk svikt forårsaket av en delvis cervical skade vil hjelpe til å forstå den etterfølgende luftveiene og ikke-respiratoriske neuroplasticity og tillater å teste mulige reparasjons strategier.

Abstract

En cervical ryggmargsskade induserer permanent lammelse, og ofte fører til åndenød. Til dags dato har ingen effektive behandlingsformer er utviklet for å forbedre / forbedre den respirasjonssvikt følgende høy cervical ryggmargsskade (SCI). Her foreslår vi en murine pre-klinisk modell av høy SCI ved livmorhals 2 (K2) minimal metamerisme nivå for å studere diverse post-lesional åndedretts nevroplastisitet. Teknikken består av en kirurgisk delvis skade på C2-nivå, noe som vil fremkalle en hemiparalysis av membranen på grunn av en deafferentation av phrenic motoneurons fra luft sentre lokalisert i hjernestammen. Den kontralaterale side av skaden forblir intakt og tillater dyret utvinning. I motsetning til andre SCIS som påvirker bevegelsesfunksjonen (på thorax og lumbale nivå), vil ikke lungefunksjon krever ikke dyr motivasjon og kvantifisering av underskuddet / utvinning kan lett utføres (diafragma og phrenic nerve opptaks, hele kroppen ventilasjon). Denne pre-klinisk C2 SCI-modellen er en kraftig, nyttig og pålitelig pre-klinisk modell for å studere ulike luftveis og ikke-respiratoriske Neuroplasticity hendelser på ulike nivåer (molekylære til fysiologi) og å teste ulike antatte terapeutiske strategier som kan forbedre åndedrett i SCI pasienter.

Introduction

Ryggmargstraumer er en vanlig skade observeres i den menneskelige populasjonen med dramatiske forekomst, slik som permanent lammelse. Imidlertid, alvorligheten av skaden er avhengig av nivået og omfanget av den opprinnelige traumer. Respirasjonssvikt er den ledende årsaken til dødelighet følgende øvre cervical ryggmargsskade (SCI) en. For tiden, er den eneste terapeutiske behandlingen for å plassere pasienten i henhold til ventilasjonshjelp. Etter noen få pasienter kan avvent av ventilasjonshjelp 2, på grunn av spontan gjenvinning som oppstår med post-lesional forsinkelse, er det behov for å utvikle nye, innovative ikke-invasive terapeutika presser 3. Å ha en god standardisert preklinisk modell for å undersøke effekten av en cervikal SCI på respiratorisk insuffisiens, og derfor, for å studere anvendelsen av antatte terapeutiske strategier, er viktig.

I denne tekniske artikkelen beskriver vi en bestemt pre-klinisk murine modell of respiratorisk svekkelse forårsaket av en delvis cervical SCI på C2-nivå. Denne modellen er i dag brukt av flere laboratorier rundt om i verden (for anmeldelser: 4-13). Imidlertid kan observeres små forskjeller i den kirurgiske prosedyren mellom de forskjellige undersøkere for å generere denne spesielle cervical skade murine modellen. Effekten av en C2 SCI på luftutgangs ble først beskrevet i 1895 av Porter 14. En cervical hemisection induserer en deafferentation av phrenic motoneurons fra sin sentrale stasjonen (ligger i rVRG i hjernestammen, figur 1A) på ipsilaterale side av skade, som fører til en stille phrenic nerve aktivitet og den påfølgende membran lammelser. Den kontralaterale side forblir intakt og tillater dyret å overleve. I motsetning til forskjellige SCI plassert i en nedre rygg segment (for eksempel en contusive skade på C4 nivå 15), blir integriteten av phrenic motoneuron kjernen på begge sider bevart. Etter en cervical C2 skade, kan noen spontan aktivitet observeres på ipsilaterale side (phrenic og membran) på grunn av en aktivering av kontralaterale tause synaptiske trasé som krysset rygglinjen på segmentnivå C3-C6 (Crossed phrenic trasé, CPP, figur 1B) . Aktiveringen av CPP, som er, per definisjon, en C2 hemisection kombinert med en kontralateral phrenicotomy som induserer en ipsilaterale delvis phrenic nerve utvinning, kan oppstå fra timer til uker etter skade 16-18. Den virkelige fordelaktige effekten av dette CPP pathway på luft utvinning er begrenset 19 og videre undersøkelser, og behandlingen bør bli utviklet for å forbedre graden av spontan restaurering 3..

Denne protokollen gir en kraftig type pre-klinisk murine modell for å studere luftpost lesional plastisitet på ulike nivåer (åndedretts fysiologi fra før og phrenic motoneurons, interneurons, molekylær og mobilnettetr, bevegelse av den fremre ekstremiteten for eksempel), så vel som en modell for å teste invasive og ikke-invasive terapeutiske strategier rettet for å forbedre luftveis og lokomotorisk restitusjon etter C2 partialt cervical ryggmargsskade.

Protocol

Denne protokollen ble godkjent av Etisk komité av RBUCE-UP stol of Excellence (University of Paris Sud, tilskuddsavtalen nr. 246556) og Université de Versailles Saint-Quentin-en-Yvelines. En. Utarbeidelse av Sterilisert kirurgiske instrumenter Rengjør kirurgiske instrumenter med laboratorie vaskemiddel. Autoklav instrumentene før operasjonen. I en kirurgisk sesjon, sterilisere de verktøy ved å plassere spissene i en varm kule sterilisator i 10 min ved 180…

Representative Results

Skadene Suksessen og reproduserbarheten av denne bestemt eksperimentell modell, er avhengig av erfaringen til hver manipulator / kirurg. Den påfølgende mengde av respiratorisk utvinning (phrenic nerve-aktivitet og membranaktivitet) etter en C2 skade er korrelert med den gjenværende ventrolateral spart hvit substans 21.. Siden skaden er "håndlaget» og krever litt øvelse fra kirurgen, har omfanget av hver skade for å bli kontrollert av histologiske tekni…

Discussion

Tekniske problemer med å gjøre C2 Injury Model

C2 skade murine modellen er et interessant verktøy for å studere luftpost lesional nevroplastisitet. Imidlertid er fremgangsmåten for å produsere en reproduserbar og pålitelig modell er mange og hver av dem vil kunne påvirke resultatet av undersøkelsen. For eksempel under intubasjon prosessen, er ekstrem forsiktighet for å bli tatt ettersom orotracheal røret kan produsere en betennelse i luftrøret, noe som kan føre …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet er støttet av midler fra EU sjuende rammeprogram (FP7/2007-2013) i henhold til tildelingsavtale nr 246556 (europeisk prosjekt RBUCE-UP), HandiMedEx tildelt av den franske Public Investment Board. Marcel Bonay ble støttet av den Chancellerie des Universites de Paris (Legs Poix), den Fonds de Dotation Recherche en Santé Respiratoire, og Centre d'Assistance Respiratoire à Bosted d'Île de France (CARDIF)

Materials

Animal
Male Sprague Dawley Rat Janvier 225-250g
Surgical Instruments
Student Dumont #5 forceps Fine Science Tool 91150-20
Student Standard Pattern Forceps Fine Science Tool 91100-12
Mayo-Stille Scissors Fine Science Tool 14013-15 Curved
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tool 91500-09 Straight
Spring Scissors – 8 mm Blades Fine Science Tool 15025-10 Straight Blunt/Blunt
Friedman Pearson Rongeur Fine Science Tool 16121-14 Curved
Dissecting Knife – Fine Tip Fine Science Tool 10055-12 Straight
Olsen-Hegar Needle Holder Fine Science Tool 12002-14 Serrated
Weitlaner-Locktite Retractor Fine Science Tool 17012-11 2×3 Blunt
Absorbable surgical sutures Centravet BYO001
Equipment
Hot Bead Steriliser Fine Science Tool 18000-45
Catheter  Centravet CAT188 16 gauge
Laryngoscope
Guide wire
Laryngeal mirror Centravet MIR011
Lactated Ringers Centravet RIN020
Syringe Centravet
Needle Centravet
O2 Air Liquid I1001M20R2A001
683 RodentT Ventilator 115/230V Havard Apparatus 55-0000
Stand-Alone Vaporizer WPI EZ-155
Thin line heated bed WPI EZ-211
Air canister WPI EZ-258
Drugs
Carprofen Centravet
Rimadyl Centravet RIM011
Buprenorphine Centravet BUP001
Baytril Centravet BAY001
Dexmedetomidine Centravet DEX010
Atipamezole Centravet ANT201
Betadine Solution Centravet VET002
Isoflurane Centravet VET066

References

  1. Frankel, H. L., et al. Long-term survival in spinal cord injury: a fifty year investigation. Spinal Cord. 36, 266-274 (1998).
  2. Ramer, M. S., Harper, G. P., Bradbury, E. J. Progress in spinal cord research – a refined strategy for the International Spinal Research Trust. Spinal Cord. 38, 449-472 (2000).
  3. Zimmer, M. B., Nantwi, K., Goshgarian, H. G. Effect of spinal cord injury on the respiratory system: basic research and current clinical treatment options. J Spinal Cord Med. 30, 319-330 (2007).
  4. Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Neuromuscular adaptations to respiratory muscle inactivity. Respir Physiol Neurobiol. 169, 133-140 (2009).
  5. Goshgarian, H. G. The crossed phrenic phenomenon and recovery of function following spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169, 85-93 (2009).
  6. Nantwi, K. D. Recovery of respiratory activity after C2 hemisection (C2HS): involvement of adenosinergic mechanisms. Respir Physiol Neurobiol. 169, 102-114 (2009).
  7. Sandhu, M. S., et al. Respiratory recovery following high cervical hemisection. Respir Physiol Neurobiol. 169, 94-101 (2009).
  8. Lane, M. A., Lee, K. Z., Fuller, D. D., Reier, P. J. Spinal circuitry and respiratory recovery following spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169, 123-132 (2009).
  9. Seeds, N. W., Akison, L., Minor, K. Role of plasminogen activator in spinal cord remodeling after spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169, 141-149 (2009).
  10. Alilain, W. J., Horn, K. P., Hu, H., Dick, T. E., Silver, J. Functional regeneration of respiratory pathways after spinal cord injury. Nature. 475, 196-200 (2011).
  11. Vinit, S. Cervical spinal cord injuries and respiratory insufficiency: a revolutionary treatment. Med Sci (Paris. 28, 33-36 (2012).
  12. Kastner, A., Gauthier, P. Are rodents an appropriate pre-clinical model for treating spinal cord injury? Examples from the respiratory system). Exp Neurol. 213, 249-256 (2008).
  13. Vinit, S., Lovett-Barr, M. R., Mitchell, G. S. Intermittent hypoxia induces functional recovery following cervical spinal injury. Physiol Neurobiol. 169, 210-217 (2009).
  14. Porter, W. T. The Path of the Respiratory Impulse from the Bulb to the Phrenic Nuclei. J Physiol. 17, 455-485 .
  15. Nicaise, C., et al. Phrenic motor neuron degeneration compromises phrenic axonal circuitry and diaphragm activity in a unilateral cervical contusion model of spinal cord injury. Exp Neurol. 235, 539-552 (2012).
  16. Goshgarian, H. G. The crossed phrenic phenomenon: a model for plasticity in the respiratory pathways following spinal cord injury. J Appl Physiol. 94, 795-810 (2003).
  17. Vinit, S., Gauthier, P., Stamegna, J. C., Kastner, A. High cervical lateral spinal cord injury results in long-term ipsilateral hemidiaphragm paralysis. J Neurotrauma. 23, 1137-1146 (2006).
  18. Fuller, D. D., Johnson, S. M., Johnson, R. A., Mitchell, G. S. Chronic cervical spinal sensory denervation reveals ineffective spinal pathways to phrenic motoneurons in the rat. Neurosci Lett. 323, 25-28 (2002).
  19. Dougherty, B. J., Lee, K. Z., Lane, M. A., Reier, P. J., Fuller, D. D. Contribution of the spontaneous crossed-phrenic phenomenon to inspiratory tidal volume in spontaneously breathing rats. J Appl Physiol. 112, 96-105 (2012).
  20. Jou, I. M., et al. Simplified rat intubation using a new oropharyngeal intubation wedge. J Appl Physiol. 89, 1766-1770 (2000).
  21. Fuller, D. D., et al. Graded unilateral cervical spinal cord injury and respiratory motor recovery. Respir Physiol Neurobiol. 165, 245-253 (2009).
  22. Vinit, S., Windelborn, J. A., Mitchell, G. S. Lipopolysaccharide attenuates phrenic long-term facilitation following acute intermittent hypoxia. Respir Physiol Neurobiol. 176, 130-135 (2011).
  23. Ahmad, F., Wang, M. Y., Levi, A. D. Hypothermia for Acute Spinal Cord Injury-A Review. World Neurosurg. , (2013).
  24. Lovett-Barr, M. R., et al. Repetitive intermittent hypoxia induces respiratory and somatic motor recovery after chronic cervical spinal injury. J Neurosci. 32, 3591-3600 (2012).
  25. Minor, K. H., Akison, L. K., Goshgarian, H. G., Seeds, N. W. Spinal cord injury-induced plasticity in the mouse–the crossed phrenic phenomenon. Exp Neurol. 200, 486-495 (2006).
  26. Baussart, B., Stamegna, J. C., Polentes, J., Tadie, M., Gauthier, P. A new model of upper cervical spinal contusion inducing a persistent unilateral diaphragmatic deficit in the adult rat. Neurobiol Dis. 22, 562-574 (2006).
  27. Golder, F. J., et al. Breathing patterns after mid-cervical spinal contusion in rats. Exp Neurol. 231, 97-103 (2011).
  28. Lane, M. A., et al. Respiratory function following bilateral mid-cervical contusion injury in the adult rat. Exp Neurol. 235, 197-210 (2012).
  29. Vinit, S., et al. Axotomized bulbospinal neurons express c-Jun after cervical spinal cord injury. Neuroreport. 16, 1535-1539 (2005).
  30. Guenther, C. H., Windelborn, J. A., Tubon, T. C., Yin, J. C., Mitchell, G. S. Increased atypical PKC expression and activity in the phrenic motor nucleus following cervical spinal injury. Exp Neurol. 234, 513-520 (2012).
  31. Mantilla, C. B., Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. Motoneuron BDNF/TrkB signaling enhances functional recovery after cervical spinal cord injury. Exp Neurol. 247, 101-109 (2013).
  32. Vinit, S., Darlot, F., Aoulaiche, H., Boulenguez, P., Kastner, A. Distinct expression of c-Jun and HSP27 in axotomized and spared bulbospinal neurons after cervical spinal cord injury. J Mol Neurosci. 45, 119-133 (2011).
  33. Windelborn, J. A., Mitchell, G. S. Glial activation in the spinal ventral horn caudal to cervical injury. Respir Physiol Neurobiol. 180, 61-68 (2012).
  34. Vinit, S., Stamegna, J. C., Boulenguez, P., Gauthier, P., Kastner, A. Restorative respiratory pathways after partial cervical spinal cord injury: role of ipsilateral phrenic afferents. Eur J Neurosci. 25, 3551-3560 (2007).
  35. Dougherty, B. J., et al. Recovery of inspiratory intercostal muscle activity following high cervical hemisection. Respir Physiol Neurobiol. 183, 186-192 (2012).
check_url/kr/51235?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Keomani, E., Deramaudt, T. B., Petitjean, M., Bonay, M., Lofaso, F., Vinit, S. A Murine Model of Cervical Spinal Cord Injury to Study Post-lesional Respiratory Neuroplasticity. J. Vis. Exp. (87), e51235, doi:10.3791/51235 (2014).

View Video