Summary

Imagem Através do Pupal Caso de<em> Drosophila melanogaster</em

Published: January 23, 2014
doi:

Summary

Este trabalho demonstra o uso de um microscópio confocal de varredura rápida para o comportamento das células de imagem diretamente através do pupário. Ao deixar o caso de pupa intacto, este método permite a observação e medição de processos celulares dinâmicos numa fase de desenvolvimento de Drosophila que é difícil de estudar directamente.

Abstract

A utilização prolongada de Drosophila como modelo para a biologia celular e de desenvolvimento produziu um conjunto de ferramentas. Em conjunto, estas técnicas têm permitido a análise de células e biologia do desenvolvimento de uma variedade de ângulos metodológicas. Imagens ao vivo é um método emergente para a observação de processos celulares dinâmicos, como a divisão celular ou motilidade celular. Tendo mutações em proteínas isoladas do ciclo celular putativos descaracterizados se tornou essencial para observar a mitose in situ usando imagens ao vivo. A maioria dos estudos de imagem ao vivo em Drosophila têm-se centrado sobre os estágios embrionários que são acessíveis à manipulação e observação por causa de seu pequeno tamanho e claridade óptica. No entanto, nestas fases do ciclo celular é incomum em que falta uma ou ambas as fases gap. Em contraste, as células da asa pupal de Drosophila têm um ciclo celular comum e passam por um período de mitose rápido que mede cerca de 20 horas de desenvolvimento de pupas. É fácil de identify e isolar pupas do palco apropriado para pegar mitose in situ. Montagem pupas intactas a melhor combinação de tratabilidade e durabilidade durante o exame, permitindo experiências de correr por várias horas com um impacto mínimo sobre a viabilidade celular e animal. O método permite a observação de estruturas tão pequenas quanto, ou menor do que, cromossomas voar. Ajuste das definições de microscópio e os detalhes de montagem, permitiu extensão da preparação para visualizar a dinâmica da membrana de células adjacentes e as proteínas marcadas com fluorescência, tais como a tubulina. Este método funciona para todas as proteínas fluorescentes testados e podem captar recursos escala submicrométricas sobre uma variedade de escalas de tempo. Embora limitado ao exterior 20 mM de pupa com um microscópio confocal convencional, esta abordagem para observar proteína e dinâmica celular em tecidos pupa in vivo podem ser geralmente úteis para o estudo da biologia celular e de desenvolvimento nestes tecidos.

Introduction

A mosca do vinagre, Drosophila melanogaster, é um modelo bem estabelecido para o estudo de vários aspectos da biologia. Pesquisa Drosophila tem uma história rica de experiências genéticas que permite formas sofisticadas de manipulação genética, incluindo expressão, knockdown e mutação. Com o advento de rótulos de proteína fluorescente, este repertório foi expandido para incluir estudos de células e proteínas em animais vivos. O embrião da mosca é um excelente sistema para tais estudos, pois é pequeno e opticamente clara permitindo profunda, de alta resolução de imagem in vivo 1-3. Outros estágios de desenvolvimento da mosca provaram ser menos tratável, exigindo anestesia 4, dissecção e cultura de curto prazo de 5,6, ou a criação de janelas na cutícula para imagens 7,8. Estas manipulações geralmente comprometer o desenvolvimento dos animais no longo prazo ou afectar o animal de modo a limitar de imagem para períodos curtos.

ent "> Para estudar novas mutações em genes que se assemelham a reguladores do ciclo celular, é essencial para encontrar uma preparação adequada para estudar o tempo e a fidelidade do ciclo celular. Como a maioria dos ciclos de células embrionárias são truncados (SM ou S-G2-M) e os mutantes em estudo não apresentam defeitos, até estágios mais avançados, foi importante para observar o ciclo celular em tecidos fase de pupa. células epiteliais na pupa tem um ciclo mais típico celular G1-S-G2-M e pupas desta fase são não é capaz de movimentos musculares 9. O ponto de partida inicial para manipulações incluído todo intacta pupas expressando Histone2AV-GFP. Apesar da opacidade aparente do processo de pupa, esta preparação intacta mostrou ser excelente para a longo prazo in vivo de imagens. Essa técnica é simples o suficiente para que pesquisadores de graduação rotineiramente usá-lo para estudar aspectos da biologia celular e de desenvolvimento em Drosophila e ainda a resolução é bom o suficiente para permitir a discriminação de recursos em escala micrométrica. Com este método, as observações dos eventos mais horas, minutos ou segundos são possíveis simplesmente ajustando os parâmetros de séries temporais. Vídeos usando o azul, proteínas fluorescentes verde, amarelo, laranja e vermelho, ou combinações destes, foram feitas. Mais importante, se o cuidado de minimizar a intensidade do laser, mesmo a longo prazo de imagem não tem nenhum efeito sobre o desenvolvimento ou a viabilidade dos animais.

Protocol

1. Voar Trabalho Manter moscas em meio padrão fubá-ágar-melaço de levedura à temperatura ambiente 10. Para cruzes, isolar virgens dentro de 6 horas de eclosão. Depois de atravessar a machos do genótipo desejado, mudança voa para novos frascos a cada 3-4 dias. Nota: Para estas experiências, linha Gal4 A9 foi usado para conduzir a expressão de transgenes na asa. Fly ações podem ser obtidos a partir do centro de estoque em Bloomington. Ações u…

Representative Results

As células em epitélio pseudo, tais como o olho de Drosophila em desenvolvimento, ou a camada do ventrículo do sistema nervoso central em desenvolvimento de vertebrados, são submetidos a movimentos nucleares, denominado migração nuclear interkinetic, no tempo, com o ciclo celular. A replicação do ADN ocorre quando os núcleos são em ou perto da superfície da célula basal e introduzir a mitose quando os núcleos de atingir a superfície apical 15,16. As células asa pupa formar um epitélio…

Discussion

Para visualizar, medir e quantificar características de células em divisão, necessário o desenvolvimento de uma preparação simples para a observação de mitose na ala de pupa vivo de Drosophila por meio de análise confocal de His2AvGFP expressando células. Este método foi utilizado para demonstrar que o ciclo celular na asa de pupa tem semelhanças fortes para célula no epitélio pseudo ciclos em que se movem os núcleos para a superfície apical do epitélio, onde eles entram em mitose. Após telóf…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores gostariam de agradecer Akira Chiba para apoio intelectual, apoio material, e ações. Graças à Julia Dallman para comentários.

Materials

Fly stuff fly pad Genesee scientific 59-114 for fly anesthetization
CO2 gas Airgas south CD50 For fly anesthetization
Regulator Airgas south CO2 regulator
Fly vials Genesee scientific 32-113RLBF Fly culture
Drosophila lines:A9-Gal4 (Bl#8761), His2Av-GFP (Bl#5941), Sco/CyO HsCre (Bl#1092), UAS-ChRFP-Tub (Bl#25773) Bloomington Stock center
Glass bottom dishes #1 1/2 WillCo Wells BV For microscopy
Thiodiethylene Glycol Fluka 88559 mountant
Modeling clay art supply store Support to position pupae against
Paintbrushes art supply store To manipulate flies
Fine Forceps, Inox #5 Fine science tools 11252-20 Dumont #5
computer any 8 Gb RAM for image/movie analysis
Fiji software Free ware http://fiji.sc/Fiji Image analysis software
Confocal microscope Any fast scanning confocal should be sufficient
20x dry, and 40x or 63x oil immersion lenses any For imaging tissue, cellular and subcellular features
Immersion oil (non fluorescent)
Stereo microscope any For fly manipulation

References

  1. Raff, J. W., Jeffers, K., Huang, J. Y. The roles of Fzy/Cdc20 and Fzr/Cdh1 in regulating the destruction of cyclin B in space and time. J. Cell Biol. 157, 1139-1149 (2002).
  2. Stramer, B., et al. Live imaging of wound inflammation in Drosophila embryos reveals key roles for small GTPases during in vivo cell migration. J. Cell Biol. 168, 567-573 (2005).
  3. Clark, I. B., Jarman, A. P., Finnegan, D. J. Live imaging of Drosophila gonad formation reveals roles for Six4 in regulating germline and somatic cell migration. BMC Dev. Biol. 7, 52 (2007).
  4. Fuger, P., Behrends, L. B., Mertel, S., Sigrist, S. J., Rasse, T. M. Live imaging of synapse development and measuring protein dynamics using two-color fluorescence recovery after photo-bleaching at Drosophila synapses. Nat. Protoc. 2, 3285-3298 (2007).
  5. Siller, K. H., Serr, M., Steward, R., Hays, T. S., Doe, C. Q. Live imaging of Drosophila brain neuroblasts reveals a role for Lis1/dynactin in spindle assembly and mitotic checkpoint control. Mol. Biol. Cell. 16, 5127-5140 (2005).
  6. Roy, S., Hsiung, F., Kornberg, T. B. Specificity of Drosophila cytonemes for distinct signaling pathways. Science. 332, 354-358 (2011).
  7. Gho, M., Bellaiche, Y., Schweisguth, F. Revisiting the Drosophila microchaete lineage: a novel intrinsically asymmetric cell division generates a glial cell. Development. 126, 3573-3584 (1999).
  8. Ninov, N., Martin-Blanco, E. Live imaging of epidermal morphogenesis during the development of the adult abdominal epidermis of Drosophila. Nat. Protoc. 2, 3074-3080 (2007).
  9. Edgar, B. A., Lehner, C. F. Developmental control of cell cycle regulators: a fly’s perspective. Science. 274, 1646-1652 (1996).
  10. Wirtz, R. A., Semey, H. G. The Drosophila kitchen: equipment, media preparation, and supplies. Drosophila Information Service. 58, 176-180 (1982).
  11. Boulina, M., Samarajeewa, H., Baker, J. D., Kim, M. D., Chiba, A. Live imaging of multicolor-labeled cells in Drosophila. Development. 140, 1605-1613 (2013).
  12. Bainbridge, S. P., Bownes, M. Staging the metamorphosis of Drosophila melanogaster. J. Embryol. Exp. Morphol. 66, 57-80 (1981).
  13. Staudt, T., Lang, M. C., Medda, R., Engelhardt, J., Hell, S. W. 2,2′-thiodiethanol: a new water soluble mounting medium for high resolution optical microscopy. Microsc. Res. Tech. 70, 1-9 (2007).
  14. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nat. Methods. 9, 676-682 (2012).
  15. Meyer, E. J., Ikmi, A., Gibson, M. C. Interkinetic nuclear migration is a broadly conserved feature of cell division in pseudostratified epithelia. Curr. Biol. 21, 485-491 (2011).
  16. Sauer, F. C. Mitosis in the neural tube. J. Comp. Neurol. 62, 377-405 (1935).
  17. Livet, J., et al. Transgenic strategies for combinatorial expression of fluorescent proteins in the nervous system. Nature. 450, 56-62 (2007).
check_url/kr/51239?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Keroles, M. B., Dusseault, S. K., Liu, C., Mohammed, M. R., Vadakkan, C. M., Amiel, J. H., Abel, S. N., Bensoussan, E. R., Russell, B. L., Baker, J. Imaging Through the Pupal Case of Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (83), e51239, doi:10.3791/51239 (2014).

View Video